Summary

मानव मेसेनकाइमल स्टेम कोशिकाओं से छोटे बाह्य पुटिकाओं को अलग करने के लिए एक सरल बेंचटॉप निस्पंदन विधि

Published: June 23, 2022
doi:

Summary

यह प्रोटोकॉल दर्शाता है कि एक सरल प्रयोगशाला-स्केल बेंचटॉप सेटिंग के साथ मानव गर्भनाल-व्युत्पन्न मेसेनकाइमल स्टेम कोशिकाओं के छोटे बाह्य पुटिकाओं (एचयूसी-एमएससी-एसईवी) को कैसे अलग किया जाए। पृथक एचयूसी-एमएससी-एसईवी के आकार वितरण, प्रोटीन एकाग्रता, एसईवी मार्कर और आकृति विज्ञान क्रमशः नैनोपार्टिकल ट्रैकिंग विश्लेषण, बीसीए प्रोटीन परख, पश्चिमी धब्बा और ट्रांसमिशन इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोप द्वारा विशेषता है।

Abstract

अल्ट्रासेंट्रीफ्यूजेशन-आधारित प्रक्रिया को छोटे बाह्य पुटिकाओं (एसईवी) अलगाव के लिए सामान्य विधि माना जाता है। हालांकि, इस अलगाव विधि से उपज अपेक्षाकृत कम है, और ये विधियां एसईवी उपप्रकारों को अलग करने में अक्षम हैं। यह अध्ययन मानव गर्भनाल-व्युत्पन्न एमएससी छोटे बाह्य पुटिकाओं (एचयूसी-एमएससी-एसईवी) को अलग करने के लिए एक सरल बेंचटॉप निस्पंदन विधि को प्रदर्शित करता है, जो एचयूसी-एमएससी के वातानुकूलित माध्यम से अल्ट्राफिल्ट्रेशन द्वारा सफलतापूर्वक अलग किया जाता है। आकार वितरण, प्रोटीन एकाग्रता, एक्सोसोमल मार्कर (सीडी 9, सीडी 81, टीएसजी 101), और पृथक एचयूसी-एमएससी-एसईवी की आकृति विज्ञान को क्रमशः नैनोपार्टिकल ट्रैकिंग विश्लेषण, बीसीए प्रोटीन परख, पश्चिमी धब्बा और ट्रांसमिशन इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोप के साथ चित्रित किया गया था। पृथक एचयूसी-एमएससी-एसईवी का आकार 30-200 एनएम था, जिसमें 7.75 × 10 10 कण / एमएल की कण एकाग्रता और80 μg / mL की प्रोटीन एकाग्रता थी। एक्सोसोमल मार्कर सीडी 9, सीडी 81 और टीएसजी 101 के लिए सकारात्मक बैंड देखे गए। इस अध्ययन से पता चला है कि एचयूसी-एमएससी-एसईवी को सफलतापूर्वक एचयूसी-एमएससी वातानुकूलित माध्यम से अलग किया गया था, और लक्षण वर्णन से पता चला है कि पृथक उत्पाद एक्स्ट्रासेल्युलर वेसिकल्स 2018 (एमआईएसईवी 2018) के अध्ययन के लिए न्यूनतम जानकारी द्वारा उल्लिखित मानदंडों को पूरा करता है।

Introduction

एमआईएसईवी 2018 के अनुसार, एसईवी गैर-प्रतिकृति लिपिड बाइलेयर कण हैं जिनमें कोई कार्यात्मक नाभिक मौजूद नहीं है, जिसका आकार 30-200 एनएम1 है। एमएससी-व्युत्पन्न एसईवी में महत्वपूर्ण सिग्नलिंग अणु होते हैं जो ऊतक पुनर्जनन में महत्वपूर्ण भूमिका निभाते हैं, जैसे कि माइक्रोआरएनए, साइटोकिन्स या प्रोटीन। वे पुनर्योजी चिकित्सा और सेल-मुक्त चिकित्सा में तेजी से एक शोध “हॉटस्पॉट” बन गए हैं। कई अध्ययनों से पता चला है कि एमएससी-व्युत्पन्न एसईवी विभिन्न स्थितियों के इलाज में एमएससी के रूप में प्रभावी हैं, जैसे कि इम्यूनोमॉड्यूलेशन 2,3,4,5, ओस्टियोजेनेसिस6 को बढ़ाना, मधुमेह मेलेटस 7,8, या संवहनी पुनर्जनन 9,10 जैसे-जैसे शुरुआती चरण के परीक्षण आगे बढ़ते हैं, एमएससी-ईवी के नैदानिक अनुवाद के संबंध में तीन मुख्य प्रमुख मुद्दों पर प्रकाश डाला गया है: ईवी की उपज, ईवी की शुद्धता (सेल मलबे और प्रोटीन और साइटोकिन्स जैसे अन्य जैविक दूषित पदार्थों से मुक्त), और अलगाव के बाद ईवी के फॉस्फोलिपिड बाइलेयर झिल्ली की अखंडता।

एसईवी11 के घनत्व, आकार, आकार और सतह प्रोटीन का दोहन करते हुए एसईवी को अलग करने के लिए विभिन्न तरीके विकसित किए गए हैं। एसईवी अलगाव में दो सबसे आम तरीके अल्ट्रासेंट्रीफ्यूजेशन-आधारित और अल्ट्राफिल्ट्रेशन-आधारित तकनीकहैं।

अल्ट्रासेंट्रीफ्यूजेशन-आधारित विधियों को एसईवी अलगाव में स्वर्ण मानक तरीके माना जाता है। आमतौर पर नियोजित दो प्रकार की अल्ट्रासेंट्रीफ्यूजेशन तकनीकें अंतर अल्ट्रासेंट्रीफ्यूजेशन और घनत्व ढाल अल्ट्रासेंट्रीफ्यूजेशन हैं। हालांकि, अल्ट्रासेंट्रीफ्यूजेशन विधियों के परिणामस्वरूप अक्सर कम उपज होती है और उच्च गति अल्ट्रासेंट्रीफ्यूज (100,000-200,000 × ग्राम) के लिए महंगे उपकरणों की आवश्यकता होती है। इसके अलावा, अल्ट्रासेंट्रीफ्यूजेशन तकनीक अकेले ईवी उपप्रकारों (एसईवी और बड़े ईवी) को अलग करने में अक्षम हैं, जिसके परिणामस्वरूप एक अशुद्ध तलछट परत11 होती है। अंत में, घनत्व ढाल अल्ट्रासेंट्रीफ्यूजेशन भी समय लेने वाला हो सकता है और त्वरण औरमंदी के चरणों के दौरान ढाल क्षति को रोकने के लिए सुक्रोज बफर एडिशन जैसे अतिरिक्त एहतियाती कदमों की आवश्यकता होती है। इसलिए, अल्ट्रासेंट्रीफ्यूजेशन आमतौर पर अपेक्षाकृत कम उपज की ओर जाता है और ईवी13 की विभिन्न आबादी के बीच भेदभाव करने में सक्षम नहीं है, जो बड़े पैमाने पर ईवी तैयारीके लिए इसके आवेदन को सीमित करता है।

ईवी अलगाव की दूसरी विधि अल्ट्राफिल्ट्रेशन के माध्यम से है, जो आकार निस्पंदन पर आधारित है। अल्ट्रासेंट्रीफ्यूजेशन की तुलना में अल्ट्राफिल्ट्रेशन अपेक्षाकृत समय और लागत प्रभावी है, क्योंकि इसमें महंगे उपकरण या लंबे प्रसंस्करण समयशामिल नहीं हैं। इसलिए, अल्ट्राफिल्ट्रेशन उपरोक्त दोनों अल्ट्रासेंट्रीफ्यूजेशन विधियों की तुलना में एक अधिक प्रभावी अलगाव तकनीक प्रतीत होती है। पृथक उत्पाद छिद्र आकार और उच्च उपजके आधार पर अधिक विशिष्ट हो सकते हैं। हालांकि, निस्पंदन प्रक्रिया के दौरान किए गए अतिरिक्त बल के परिणामस्वरूप ईवी16 का विरूपण या विस्फोट हो सकता है।

वर्तमान पेपर ने डाउनस्ट्रीम विश्लेषण और चिकित्सीय उद्देश्यों के लिए एमएससी-व्युत्पन्न एसईवी को अलग करने के लिए एक लागत और समय प्रभावी बेंचटॉप प्रोटोकॉल का प्रस्ताव दिया। इस पेपर में वर्णित विधि ने कण आकार विश्लेषण, बायोमार्कर परख और इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपिक इमेजिंग सहित डाउनस्ट्रीम विश्लेषण के लिए एचयूसी-एमएससी से उच्च उपज और अच्छी गुणवत्ता वाले ईवी को अलग करने के लिए बेंच टॉप सेंट्रीफ्यूजेशन के साथ एक सरल निस्पंदन विधि को जोड़ा।

Protocol

नोट: इस प्रोटोकॉल में उपयोग की जाने वाली सभी सामग्री, उपकरण और सॉफ़्टवेयर के बारे में विवरण के लिए सामग्री की तालिका देखें। 1. मानव गर्भनाल मेसेनकाइमल स्टेम सेल और संस्कृति ड?…

Representative Results

चित्र 2 से पता चलता है कि एचयूसी-एमएससी-एसईवी में 53 एनएम पर एक कण आकार मोड है, जबकि कण आकार की अन्य महत्वपूर्ण चोटियां 96 और 115 एनएम थीं। एनटीए द्वारा मापा गया एचयूसी-एमएससी-एसईवी की सांद्रता 7.75 × 10<s…

Discussion

ईवी एमएससी में स्राव के महत्वपूर्ण उपसमुच्चय में से एक हैं जो सामान्य और रोग प्रक्रियाओं के दौरान महत्वपूर्ण भूमिका निभाते हैं। हालांकि, 30 से 200 एनएम के बीच आकार सीमा वाले एसईवी, पिछले दशक में सेल-मुक्त ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस वीडियो के प्रकाशन को My CytoHealth Sdn. Bhd द्वारा समर्थित किया गया था।

Materials

40% acrylamide Nacalai Tesque 06121-95 Western blot
95% ethanol Nacalai Tesque 14710-25 Disinfectants
Absolute Methanol Chemiz 45081 To activate PVDF membrane (Western blot)
Accutase STEMCELL Technologies 7920 Cell dissociation enzyme
ammonium persulfate Chemiz 14475 catalyse the gel polymerisation (Gel electrophoresis
anti-CD 81 (B-11) Santa Cruz Biotechnology sc-166029 Antibody for sEVs marker
anti-TSG 101 (C-2) Santa Cruz Biotechnology sc-7964 Antibody for sEVs marker
Bovine serum albumin Nacalai Tesque 00653-31 PVDF membrane blocking
bromophenol blue Nacalai Tesque 05808-61 electrophoretic color marker
Centricon Plus-70 (100 kDa NMWL) Millipore UFC710008 sEVs isolation
ChemiLumi One L Nacalai Tesque 7880 chemiluminescence detection reagent
CryoStor Freezing Media Sigma-Aldrich C3124-100ML Cell cryopreserve
Dulbecco’s modified Eagle’s medium Nacalai Tesque 08458-45 Cell culture media
ExcelBand Enhanced 3-color High Range Protein Marker SMOBIO PM2610 Protein molecular weight markers
Extra thick blotting paper ATTO buffer reservior (Western blot)
Glycerol Merck G5516 Chemicals for western blot
Glycine 1st Base BIO-2085-500g Chemicals for buffer (Western Blot)
horseradish peroxidase-conjugated mouse IgG kappa binding protein (m-IgGκBP-HRP) Santa Cruz Biotechnology sc-516102 Secondary antibody (Western Blot)
Human Wharton’s Jelly derived Mesenchymal Stem Cells (MSCs) Centre for Tissue Engineering and Regenerative Medicine, Faculty of Medicine, The National University Malaysia
mouse antibodies anti-CD 9 (C-4) Santa Cruz Biotechnology  sc-13118 Antibody for sEVs marker
Nanosight NS300 equipped with a CMOS camera, a 20 × objective lens, a blue laser module (488 nm), and NTA software v3.2 Malvern Panalytical, UK
paraformaldehyde Nacalai Tesque 02890-45 Sample Fixation during TEM
penicillin–streptomycin Nacalai Tesque 26253-84 Antibiotic for media
phenylmethylsulfonyl fluoride Nacalai Tesque 27327-81 Inhibit proteases in the sEVs samples after adding lysis buffer
phosphate-buffered saline Gibco 10010023 Washing, sample dilution
polyvinylidene fluoride (PVDF) membrane with
0.45 mm pore size
ATTO To hold protein during protein transfer (Western blot)
protease inhibitor cocktail Nacalai Tesque 25955-11 Inhibit proteases in the sEVs samples after adding lysis buffer
Protein Assay Bicinchoninate Kit Nacalai Tesque 06385-00 Protein measurement
sample buffer solution with 2-ME Nacalai Tesque 30566-22 Reducing agent for western blot
sodium chloride Nacalai Tesque 15266-64 Chemicals for western blot
sodium dodecyl sulfate Nacalai Tesque 31606-62 ionic surfactant during gel electrophoresis
Tecnai G2 F20 S-TWIN transmission electron microscope FEI, USA
tetramethylethylenediamine Nacalai Tesque 33401-72 chemicals to prepare gel
tris-base 1st Base BIO-1400-500g Chemicals for buffer (Western Blot)
 Tween 20 GeneTex GTX30962 Chemicals for western blot
UVP (Ultra Vision Product) CCD imager CCD imager for western blot signal detection

References

  1. Théry, C., et al. Minimal information for studies of extracellular vesicles 2018 (MISEV2018): a position statement of the International Society for Extracellular Vesicles and update of the MISEV2014 guidelines. Journal of Extracellular Vesicles. 7 (1), 1535750 (2018).
  2. Jayabalan, N., et al. Cross talk between adipose tissue and placenta in obese and gestational diabetes mellitus pregnancies via exosomes. Frontiers in Endocrinology. 8, 239 (2017).
  3. Li, T., et al. Exosomes derived from human umbilical cord mesenchymal stem cells alleviate liver fibrosis. Stem Cells and Development. 22 (6), 845-854 (2013).
  4. Wang, C., et al. Mesenchymal stromal cell-derived small extracellular vesicles induce ischemic neuroprotection by modulating leukocytes and specifically neutrophils. Stroke. 51 (6), 1825-1834 (2020).
  5. Wei, Y., et al. MSC-derived sEVs enhance patency and inhibit calcification of synthetic vascular grafts by immunomodulation in a rat model of hyperlipidemia. Biomaterials. 204, 13-24 (2019).
  6. Liu, W., et al. MSC-derived small extracellular vesicles overexpressing miR-20a promoted the osteointegration of porous titanium alloy by enhancing osteogenesis via targeting BAMBI. Stem Cell Research and Therapy. 12 (1), 1-16 (2021).
  7. Li, F. X. Z., et al. The role of mesenchymal stromal cells-derived small extracellular vesicles in diabetes and its chronic complications. Frontiers in Endocrinology. 12, 1741 (2021).
  8. Jayabalan, N., et al. . Frontiers in Endocrinology. 8, (2017).
  9. Wei, Y., et al. . Biomaterials. 204, 13-24 (2019).
  10. Du, W., et al. Enhanced proangiogenic potential of mesenchymal stem cell-derived exosomes stimulated by a nitric oxide releasing polymer. Biomaterials. 133, 70-81 (2017).
  11. Li, P., Kaslan, M., Lee, S. H., Yao, J., Gao, Z. Progress in exosome isolation techniques. Theranostics. 7 (3), 789-804 (2017).
  12. Nicolas, R. H., Goodwin, G. H. Overview of extracellular vesicles, their origin, composition, purpose, and methods for exosome isolation and analysis. Cells. 8 (7), 727 (2019).
  13. Kowal, J., et al. Proteomic comparison defines novel markers to characterize heterogeneous populations of extracellular vesicle subtypes. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113 (8), 968-977 (2016).
  14. Zeringer, E., Barta, T., Li, M., Vlassov, A. V. Strategies for isolation of exosomes. Cold Spring Harbor Protocol. 2015 (4), 319-323 (2015).
  15. Kırbaş, O. K., et al. Optimized isolation of extracellular vesicles from various organic sources using aqueous two-phase system. Scientific Reports. 9 (1), 1-11 (2019).
  16. Ev, B., Ms, K. Using exosomes, naturally-equipped nanocarriers, for drug delivery. Journal of Controlled Release: Official Journal of the Controlled Release Society. 219, 396-405 (2015).
  17. Dragovic, R. A., et al. Isolation of syncytiotrophoblast microvesicles and exosomes and their characterisation by multicolour flow cytometry and fluorescence Nanoparticle Tracking Analysis. Methods. 87, 64-74 (2015).
  18. Tan, K. L., et al. Benchtop isolation and characterisation of small extracellular vesicles from human mesenchymal stem cells. Molecular Biotechnology. 63 (9), 780-791 (2021).
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Cite This Article
Koh, B., Tan, K. L., Chan, H. H., Daniel Looi, Q. H., Lim, M. N., How, C. W., Law, J. X., Foo, J. B. A Simple Benchtop Filtration Method to Isolate Small Extracellular Vesicles from Human Mesenchymal Stem Cells. J. Vis. Exp. (184), e64106, doi:10.3791/64106 (2022).

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