Summary

Optimalisering av transesophageal atriepacing for å vurdere atrieflimmer følsomhet hos mus

Published: June 29, 2022
doi:

Summary

Den nåværende protokollen beskriver optimalisering av eksperimentelle parametere ved bruk av transesophageal atrial pacing for å vurdere atrieflimmer følsomhet hos mus.

Abstract

Musemodeller av genetiske og ervervede risikofaktorer for atrieflimmer (AF) har vist seg verdifulle for å undersøke molekylære determinanter for AF. Programmert elektrisk stimulering kan utføres ved hjelp av transesophageal atrial pacing som en overlevelsesprosedyre, og muliggjør dermed seriell testing i samme dyr. Imidlertid finnes det mange pacing-protokoller, noe som kompliserer reproduserbarheten. Denne protokollen tar sikte på å gi en standardisert strategi for å utvikle modellspesifikke eksperimentelle parametere for å forbedre reproduserbarheten mellom studier. Foreløpige studier utføres for å optimalisere eksperimentelle metoder for den spesifikke modellen som undersøkes, inkludert alder på tidspunktet for studien, kjønn og parametere i pacing-protokollen (f.eks. Modus for pacing og definisjon av AF-følsomhet). Det er viktig at det tas hensyn til å unngå høye stimulusenergier, da dette kan forårsake stimulering av ganglionisk plexi med utilsiktet parasympatisk aktivering, manifestert av overdrevet atrioventrikulær (AV) blokk under pacing og ofte forbundet med kunstig AF-induksjon. Dyr som demonstrerer denne komplikasjonen må utelukkes fra analysen.

Introduction

Atrieflimmer (AF) representerer en endelig felles vei for flere ervervede og genetiske risikofaktorer. For studier som undersøker de patofysiologiske mekanismene til AF-substratet, er musemodeller fordelaktige gitt den enkle genetiske manipulasjonen og det faktum at de generelt reproduserer AF-følsomheten observert hos mennesker for forskjellige kliniske fenotyper 1,2,3. Imidlertid utvikler mus sjelden spontan AF4, noe som nødvendiggjør bruk av provoserende atrielle pacingstudier.

Programmert elektrisk stimulering (PES) kan utføres for å vurdere murine atriell elektrofysiologi og AF-følsomhet ved bruk av enten intrakardiell5 eller transesophageal6 pacing. Mens transesophageal tilnærming er spesielt fordelaktig som en overlevelsesprosedyre, er bruken komplisert av de mange publiserte eksperimentelle protokollene 7,8 og kilder til variabilitet som kan hindre reproduserbarhet9. Videre gjør begrensede rapporterte protokollsammenligninger det utfordrende å velge en passende pacing-protokoll.

Den nåværende protokollen tar sikte på å bruke en systematisk strategi for å utvikle modellspesifikke transesophageal PES-metoder for å vurdere murine AF-følsomhet for å øke reproduserbarheten. Det er viktig at innledende pilotstudier utføres for å optimalisere pacing-protokollen ved å ta hensyn til variasjon i alder, kjønn og pacing-modus, med pacing designet for å minimere utilsiktet parasympatisk stimulering som kan forvirre resultatene9.

Protocol

Denne prosedyren ble godkjent av Vanderbilt Institutional Animal Care and Use Committee og er i samsvar med veiledningen for pleie og bruk av forsøksdyr. Protokollen ble utviklet ved hjelp av både genetisk9 ogervervet 10 (f.eks hypertensjon) musemodeller av AF-følsomhet. Operatøren ble blindet for fenotypen til musen som ble studert. 1. Valg av dyr For genetiske modeller, utsett mus for annenhver uke (dvs. annenhver…

Representative Results

Transesophageal atrial pacing studier vurderer de elektrofysiologiske egenskapene til SA- og AV-nodene ved å bestemme SNRT og AVERP, samt AF-følsomhet6 (figur 1). EKG-registrering muliggjør målinger av P-bølgevarighet, PR-intervall, QRS-varighet og QT/QTc-intervaller. Kontinuerlig registrering av EKG under rask tempo kan gi følgende målinger av AF-sårbarhet: antall episoder indusert i løpet av studien, kumulativ og gjennomsnittlig varighet av episodene, og an…

Discussion

Transesophageal atrial pacing tillater ikke bare serielle studier i samme dyr, men varigheten er vanligvis kortere enn intrakardiale studier (~ 20 min), og minimerer dermed bedøvelsesbruk og dens effekter på elektrofysiologiske parametere.

Det er avgjørende å optimalisere metodene først for hver enkelt musemodell. Aldring øker AF-induserbarheten hos normale mus18,19, og individuelle genetiske modeller kan demonstrere AF-induserb…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Figur 2 ble opprettet med BioRender.com. Dette arbeidet ble støttet av tilskudd fra National Heart, Lung, and Blood Institute ved National Institutes of Health (HL096844 og HL133127); American Heart Association (2160035, 18SFRN34230125 og 903918 [MBM]); og National Center for Advancing Translational Sciences ved National Institute of Health (UL1 TR000445).

Materials

27 G ECG electrodes ADInstruments MLA1204
2-F octapolar electrode catheter NuMED CIBercath
Activated carbon canister VetEquip 931401
Analysis software ADInstruments LabChart v8.1.13
Biological amplifier ADInstruments FE231
Data acquisition hardware ADInstruments PowerLab 26T
Eye ointment MWI Veterinary NC1886507
Heating pad Braintree Scientific DPIP
Isoflurane Piramal 66794-017-25
Stimulator Bloom Associates DTU-210
Stimulus Isolator World Precision Instruments Model A365

References

  1. Sumitomo, N., et al. Association of atrial arrhythmia and sinus node dysfunction in patients with catecholaminergic polymorphic ventricular tachycardia. Circulation Journal. 71 (10), 1606-1609 (2007).
  2. Fukui, A., et al. Role of leptin signaling in the pathogenesis of angiotensin II-mediated atrial fibrosis and fibrillation. Circulation: Arrhythmia and Electrophysiology. 6 (2), 402-409 (2013).
  3. Schutter, D., et al. Animal models of atrial fibrillation. Circulation Research. 127 (1), 91-110 (2020).
  4. Li, N., et al. Ryanodine receptor-mediated calcium leak drives progressive development of an atrial fibrillation substrate in a transgenic mouse model. Circulation. 129 (12), 1276-1285 (2014).
  5. Wakimoto, H., et al. Induction of atrial tachycardia and fibrillation in the mouse heart. Cardiovascular Research. 50 (3), 463-473 (2001).
  6. Schrickel, J. W., et al. Induction of atrial fibrillation in mice by rapid transesophageal atrial pacing. Basic Research in Cardiology. 97 (6), 452-460 (2002).
  7. Verheule, S., et al. Increased vulnerability to atrial fibrillation in transgenic mice with selective atrial fibrosis caused by overexpression of TGF-beta1. Circulation Research. 94 (11), 1458-1465 (2004).
  8. Faggioni, M., et al. Suppression of spontaneous ca elevations prevents atrial fibrillation in calsequestrin 2-null hearts. Circulation: Arrhythmia and Electrophysiology. 7 (2), 313-320 (2014).
  9. Murphy, M. B., et al. Optimizing transesophageal atrial pacing in mice to detect atrial fibrillation. American Journal of Physiology – Heart and Circulatory Physiology. 332 (1), 36-43 (2022).
  10. Prinsen, J. K., et al. Highly reactive isolevuglandins promote atrial fibrillation caused by hypertension. JACC: Basic to Translational Science. 5 (6), 602-615 (2020).
  11. Aschar-Sobbi, R., et al. Increased atrial arrhythmia susceptibility induced by intense endurance exercise in mice requires TNFα. Nature Communications. 6, 6018 (2015).
  12. Bruegmann, T., et al. Optogenetic termination of atrial fibrillation in mice. Cardiovascular Research. 114 (5), 713-723 (2017).
  13. Matsushita, N., et al. IL-1β plays an important role in pressure overload-induced atrial fibrillation in mice. Biological and Pharmaceutical Bulletin. 42 (4), 543-546 (2019).
  14. Sato, S., et al. Cardiac overexpression of perilipin 2 induces atrial steatosis, connexin 43 remodeling, and atrial fibrillation in aged mice. American Journal of Physiology – Endocrinology and Metabolism. 317 (6), 1193-1204 (2019).
  15. Li, N., Wehrens, X. H. T. Programmed electrical stimulation in mice. Journal of Visualized Experiments. (39), e1730 (2010).
  16. Yao, C., et al. Enhanced cardiomyocyte NLRP3 inflammasome signaling promotes atrial fibrillation. Circulation. 138 (20), 2227-2242 (2018).
  17. Purohit, A., et al. Oxidized Ca2+/calmodulin-dependent protein kinase II triggers atrial fibrillation. Circulation. 128 (16), 1748-1757 (2013).
  18. Jansen, H. J., et al. Atrial fibrillation in aging and frail mice. Circulation: Arrhythmia and Electrophysiology. 14 (9), 01077 (2021).
  19. Luo, T., et al. Characterization of atrial histopathological and electrophysiological changes in a mouse model of aging. International Journal of Molecular Medicine. 31 (1), 138-146 (2013).
  20. McCauley, M. D., et al. Ion channel and structural remodeling in obesity-mediated atrial fibrillation. Circulation: Arrhythmia and Electrophysiology. 13 (8), 00896 (2020).
  21. Kato, M., et al. Spectral analysis of heart rate variability during isoflurane anesthesia. Anesthesiology. 77 (4), 669-674 (1992).
  22. Schmeckpeper, J., et al. Abstract 11402: Targeting RyR2 to suppress ventricular arrhythmias and improve left ventricular function in chronic ischemic heart disease. Circulation. 144, 11402 (2021).
  23. Kim, K., et al. Abstract B-PO01-017: RyR2 hyperactivity promotes susceptibility to ventricular tachycardia in structural heart disease. Heart Rhythm. 18, 57 (2021).
check_url/64168?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Murphy, M. B., Kim, K., Kannankeril, P. J., Murray, K. T. Optimization of Transesophageal Atrial Pacing to Assess Atrial Fibrillation Susceptibility in Mice. J. Vis. Exp. (184), e64168, doi:10.3791/64168 (2022).

View Video