Summary

En følsom visuel metode til påvisning af hydrogensulfidproducerende bakterier

Published: June 27, 2022
doi:

Summary

Her præsenterer vi en protokol til påvisning af hydrogensulfidproducerende bakterier med en modificeret protokol, der anvendes til udfældning af bismutsulfid (BS). De vigtigste fordele ved denne metode er, at den er let at evaluere og ikke kræver specialudstyr.

Abstract

Hydrogensulfid (H2S) er en giftig gas produceret af bakterier i proteolyse af svovlholdige aminosyrer og proteiner, der spiller en vigtig rolle i menneskers sundhed. H2S-produktionstesten er en af de vigtige bakterielle biokemiske identifikationstest. De traditionelle metoder er ikke kun kedelige og tidskrævende, men også tilbøjelige til at hæmme bakterievækst på grund af den toksiske virkning af tungmetalsalte i svovlholdigt medium, hvilket ofte fører til negative resultater. Her etablerede vi en enkel og følsom metode til at detektere H2S i bakterier. Denne metode er en modificeret version af bismutsulfid (BS) udfældning, der bruger 96-brønds gennemsigtige mikrotiterplader. Bakteriekultur blev kombineret med vismutopløsning indeholdende L-cystein og dyrket i 20 min, hvorefter der blev observeret et sort bundfald. Den visuelle detektionsgrænse for H 2 S var0,2mM. Baseret på den visuelle farveændring kan den enkle, høje gennemstrømning og hurtige detektion afH2S-producerendebakterier opnås. Sammenfattende kan denne metode bruges til at identificereH2S-produktioni bakterier.

Introduction

Hydrogensulfidproducerende bakterier kan udnytte svovlholdige aminosyrer og proteiner til at producere hydrogensulfid (H2S). Produktionen afH2Sforekommer sædvanligvis i gramnegative Enterobacteriaceae-familiebakterier og også hos medlemmer af Citrobacter spp., Proteus spp., Edwardsiella spp. og Shewanella spp.1. Disse bakterier har evnen til at reducere sulfat til hydrogensulfid (H2S) for at opnå energi. Hydrogensulfid har været impliceret i udviklingen af bakteriel lægemiddelresistens. H2Sbeskytter bakterier mod toksiciteten af reaktive oxygenarter (ROS) og modvirker således den antibakterielle virkning af antibiotika 2,3. H2Shar også en vigtig fysiologisk virkning ved opretholdelse af homeostase. På suprafysiologiske niveauer har H2S vist sig at være dybt giftigt for kroppen. I menneskekroppen harH2Sen anden rolle som et gassignalmolekyle, der er involveret i en række fysiologiske og patologiske processer. H2Skan regulere hjertets systoliske funktion og spiller en vigtig fysiologisk rolle i afslapning af blodkar, hæmning af vaskulær ombygning og beskyttelse af myokardiet 4,5. H2S spiller også en vigtig rolle i reguleringen af nervesystemet og fordøjelseskanalen 6,7. Det har vist sig, at bakterier, når de udsættes for bakteriedræbende antibiotika, producerer dødelige reaktive iltarter (ROS), der fører til celledød 8,9,10,11.

Som en almindelig biokemisk test i mikrobiologiske laboratoriekurser er hydrogensulfidtesten et vigtigt eksperiment til identifikation af bakterier, især bakterier af familien Enterobacteriaceae. På nuværende tidspunkt udføres hydrogensulfidtesten sædvanligvis på et stort antal svovlholdige aminosyrer og blyacetatmedium inokuleret med de bakterier, der skal testes. Efter en inkubationsperiode (2-3 dage) bedømmes resultaterne ved at observere, om dyrkningsmediet eller blyacetatpapirstrimlen er sorte på grund af blyacetatproduktion11. Disse traditionelle metoder er imidlertid ikke kun kedelige og tidskrævende, men også tilbøjelige til at hæmme bakterievækst på grund af den toksiske virkning af tungmetalsalte i svovlholdigt medium, hvilket ofte fører til negative resultater. Der er fastlagt en bismuth-baseret metode til påvisning af H2S12,13. H2Skan reagere med vismut og danne sort bismutsulfidudfældning. For at gennemføre en reform af denne biokemiske test skal der etableres en enkel og hurtig metode uden bivirkninger på bakterievækst. Her opsatte vi en simpel metode til påvisning af hydrogensulfidproducerende bakterier dyrket i et in vitro-miljø ved hjælp af vismuthsulfid som substrat i et 96-brønds mikrotiterpladeformat.

Protocol

1. Bakteriestammer BEMÆRK: Til dette eksperiment blev ni standardstammer anvendt, herunder Salmonella paratyphi A, Salmonella paratyphi B, Fusobacterium nucleatum, Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa PAO1, Aeromonas hydrophila YJ-1, Proteus vuigaris og Klebsiella pneumoniae (tabel 1). Salmonella paratyphi A, Fusobacter…

Representative Results

Påvisning af hydrogensulfidproducerende bakterierUdførelsen afH2S-testenblev undersøgt ved hjælp af rene kulturer af udvalgte bakteriestammer, som anført i tabel 1. Resultaterne viste, at Salmonella paratyphi B, Fusobacterium nucleatum, Enterococcus faecalis, Pseudomonas aeruginosa og Proteus vuigaris kan producereH2Smed sort BS-bundfald, mens Salmonella paratyphi A, Staphylococcus aureus, Aeromonas hydrophil…

Discussion

Hydrogensulfidproduktionstesten er en af de konventionelle fænotypiske tests til identifikation og differentiering af bakteriestammer. Mange bakteriearter kan producere hydrogensulfid i deres naturlige miljø, såsom vandvand. Disse bakteriearter omfatter Salmonella sp., Citrobacter sp., Proteus sp., Pseudomonas sp., nogle stammer af Klebsiella sp., Escherichia coli og nogle arter af anaerob Clostridia15,16. …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne undersøgelse blev støttet af Priority Academic Program Development of Jiangsu Higher Education Institutions (PAPD) og Teaching Reform Research Project of China Pharmaceutical University (2019XJYB18).

Materials

Bismuth (III)chloride Shanghai Macklin Biochemical Co., Ltd 7787-60-2
EDTA Nanjing Chemical Reagent Co., Ltd 60-00-4
Enterococcus faecalis  ATCC  19433
Fusobacterium nucleatum  ATCC  25586
Klebsiella pneumoniae  ATCC  43816
L-cysteine Amresco 52-90-4
Proteus vuigaris  CMCC  49027
Salmonella paratyphi A CMCC 50001
Salmonella paratyphi B CMCC 50094
Staphylococcus aureus  ATCC  25923
Triethanolamine-HCl Shanghai Aladdin Biochemical Technology Co., Ltd. 637-39-8

References

  1. Thompson, L. S. The group of hydrogen sulphide producing bacteria. Journal of Medical Research. 42 (184), 383-389 (1921).
  2. Ono, K., et al. Cysteine hydropersulfide inactivates β-lactam antibiotics with formation of ring-opened carbothioic s-acids in bacteria. ACS Chemical Biology. 16 (4), 731-739 (2021).
  3. Mironov, A., et al. Mechanism of H2S-mediated protection against oxidative stress in Escherichia coli. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (23), 6022-6027 (2017).
  4. Shen, Y., Shen, Z., Luo, S., Guo, W., Zhu, Y. The cardioprotective effects of hydrogen sulfide in heart diseases: From molecular mechanisms to therapeutic potential. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2015, 925167 (2015).
  5. Salloum, F. N. Hydrogen sulfide and cardioprotection-mechanistic insights and clinical translatability. Pharmacology & Therapeutics. 152, 11-17 (2015).
  6. Wallace, J. L., Wang, R. Hydrogen sulfide-based therapeutics: Exploiting a unique but ubiquitous gasotransmitter. Nature Reviews. Drug Discovery. 14 (5), 329-345 (2015).
  7. Wu, D., et al. Role of hydrogen sulfide in ischemia-reperfusion injury. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. , 186908 (2015).
  8. Truong, D. H., Eghbal, M. A., Hindmarsh, W., Roth, S. H., O’Brien, P. J. Molecular mechanisms of hydrogen sulfide toxicity. Drug Metabolism Reviews. 38 (4), 733-744 (2006).
  9. Shatalin, K., et al. Inhibitors of bacterial H2S biogenesis targeting antibiotic resistance and tolerance. Science. 372 (6547), 1169-1175 (2021).
  10. Frávega, J., et al. Salmonella Typhimurium exhibits fluoroquinolone resistance mediated by the accumulation of the antioxidant molecule H2S in a CysK-dependent manner. The Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 71 (12), 3409-3415 (2016).
  11. Luhachack, L., Nudler, E. Bacterial gasotransmitters: An innate defense against antibiotics. Current Opinion in Microbiology. 21, 13-17 (2014).
  12. Yoshida, A., et al. Hydrogen sulfide production from cysteine and homocysteine by periodontal and oral bacteria. Journal of Periodontology. 80 (11), 1845-1851 (2009).
  13. Basic, A., Blomqvist, S., Carlén, A., Dahlén, G. Estimation of bacterial hydrogen sulfide production in vitro. Journal of Oral Microbiology. 7, 28166 (2015).
  14. Rosolina, S. M., Carpenter, T. S., Xue, Z. L. Bismuth-based, disposable sensor for the detection of hydrogen sulfide gas. Analytical Chemistry. 88 (3), 1553-1558 (2016).
  15. Barton, L. L., Fauque, G. D. Biochemistry, physiology and biotechnology of sulfate-reducing bacteria. Advances in Applied Microbiology. 68, 41-98 (2009).
  16. Shatalin, K., Shatalina, E., Mironov, A., Nudler, E. H2S: A universal defense against antibiotics in bacteria. Science. 334 (6058), 986-990 (2011).
  17. Schnabel, B., Caplin, J. L., Cooper, I. R. Modification of the H2S test to screen for the detection of sulphur- and sulphate-reducing bacteria of faecal origin in water. Water Supply. 21 (1), 59-79 (2021).
  18. Netzer, R., Ribičić, D., Aas, M., Cavé, L., Dhawan, T. Absolute quantification of priority bacteria in aquaculture using digital PCR. Journal of Microbiological Methods. 183, 106171 (2021).

Play Video

Cite This Article
Zhu, W., Chu, W. A Sensitive Visual Method for the Detection of Hydrogen Sulfide Producing Bacteria. J. Vis. Exp. (184), e64201, doi:10.3791/64201 (2022).

View Video