Summary

Isolering og karakterisering av den naturlige mikrobiotaen til modellen Nematode Caenorhabditis elegans

Published: August 17, 2022
doi:

Summary

Caenorhabditis elegans er en av de viktigste modellartene i biologi, men nesten all forskning utføres i fravær av dens naturlig assosierte mikrober. Metodene beskrevet her vil bidra til å forbedre vår forståelse av mangfoldet av tilknyttede mikrober som grunnlag for fremtidig funksjonell C. elegans forskning.

Abstract

Nematoden Caenorhabditis elegans samhandler med et stort mangfold av mikroorganismer i naturen. Generelt er C. elegans ofte funnet i råttent plantemateriale, spesielt råtne frukter som epler eller på komposthauger. Det er også forbundet med visse hvirvelløse verter som snegler og woodlice. Disse habitatene er rike på mikrober, som tjener som mat for C. elegans , og som også vedvarende kan kolonisere nematodetarmen. Til dags dato er det nøyaktige mangfoldet og konsistensen til den innfødte C. elegans mikrobiota på tvers av habitater og geografiske steder ikke fullt ut forstått. Her beskriver vi en passende tilnærming for å isolere C. elegans fra naturen og karakterisere mikrobiota av ormer. Nematoder kan lett isoleres fra kompostmateriale, råtnende epler, snegler eller tiltrekkes ved å plassere epler på komposthauger. Den beste tiden for å finne C. elegans på den nordlige halvkule er fra september til november. Ormer kan vaskes ut av oppsamlet substratmateriale ved å nedsenke substratet i bufferløsning, etterfulgt av innsamling av nematoder og overføring til nematodevekstmedium eller PCR-buffer for etterfølgende analyse. Vi illustrerer videre hvordan prøvene kan brukes til å isolere og rense ormassosierte mikroorganismer og til å behandle ormer for 16S ribosomal RNA-analyse av mikrobiotasamfunnssammensetning. Samlet sett kan de beskrevne metodene stimulere til ny forskning på karakterisering av C. elegans mikrobiota på tvers av habitater og geografiske steder, og dermed bidra til å oppnå en omfattende forståelse av mangfoldet og stabiliteten til nematodens mikrobiota som grunnlag for fremtidig funksjonell forskning.

Introduction

I naturen finnes C. elegans ofte i råttent plantemateriale, spesielt råtne frukter som epler eller på komposthauger1. Det er også forbundet med visse virvelløse verter som snegler og woodlice 2,3. Disse habitatene er rike på mikrober, som ikke bare tjener som mat til ormen, men kan også danne stabile foreninger med den. Informasjon om mangfoldet av naturlig assosierte mikroorganismer ble først publisert i 2016 4,5,6. Siden da har disse og bare noen få nyere studier vist at C. elegans er assosiert med en rekke bakterier og sopp, oftest inkludert bakterier av slekten Pseudomonas, Enterobacter, Ochrobactrum, Erwinia, Comamonas, Gluconobacter og flere andre 6,7,8. Flere tilknyttede bakterier kan stabilt kolonisere ormtarmen, men ikke alle 6,9,10,11,12. De vil sannsynligvis være av sentral betydning for vår forståelse av C. elegans biologi fordi de kan gi ernæring, beskytte mot patogener og muligens andre stressorer, og påvirke sentrale livshistorieegenskaper som reproduktiv hastighet, utvikling eller atferdsrespons.

Som et eksempel kan naturlig assosierte isolater av slektene Pseudomonas, Ochrobactrum, og også Enterobacter eller Gluconobacter beskytte ormen mot patogeninfeksjon og drepe på forskjellige måter 5,6,11,13,14. Et spesifikt isolat av slekten Comamonas påvirker nematode kostholdsrespons, utvikling, levetid og fruktbarhet15,16,17. Providencia-bakterier produserer nevromodulatoren tyramin og derved modulerer vertsnervesystemets aktivitet og resulterende atferdsresponser18. Et sett med forskjellige naturlig assosierte bakterier ble vist å påvirke befolkningsvekst, fruktbarhet og atferdsrespons 5,6,9,11,19.

Til dags dato er det nøyaktige mangfoldet og konsistensen til den innfødte C. elegans mikrobiota på tvers av habitater og geografiske steder ikke fullt ut forstått, og ytterligere foreninger mellom ormen og mikrober fra miljøet gjenstår å bli avdekket. Flere tidligere studier brukte bakteriestammer isolert fra noe jordmiljø, naturlige C. elegans habitater, eller fra mesokosmeksperimenter (dvs. laboratoriebaserte miljøer som gjenskaper naturlige habitater) med C. elegans laboratoriestammer 4,5,20. Selv om disse studiene fikk ny innsikt i påvirkning av mikrober på spesifikke nematodeegenskaper (f.eks. Nematodemetabolisme21), er relevansen av disse interaksjonene for C. elegans biologi i naturen uklar. Derfor beskriver dette manuskriptet metodene for å direkte isolere C. elegans fra naturen og å isolere og deretter karakterisere de naturlig assosierte mikrober fra både enkeltormer og grupper av ormer. De beskrevne metodene er en oppdatert og forbedret versjon av prosedyrene som tidligere ble brukt for isolering og karakterisering av naturlige C. elegans og dens opprinnelige mikrobiota 2,6,7. Tatt i betraktning at C. elegans er utbredt i nedbrytende plantemateriale over hele verden (spesielt i råtnende frukt, tempererte områder og om høsten)1,2,22,23,24,25, kan denne protokollen brukes av ethvert laboratorium når det er interesse for å relatere C. elegans egenskaper til naturlig assosierte mikrober og dermed en mer naturlig relevant kontekst. Sistnevnte er avgjørende for en full forståelse av nematodens biologi fordi det er kjent fra et mangfold av andre vertssystemer at den tilhørende mikrobiotaen kan påvirke ulike livshistorieegenskaper26, et aspekt som for tiden i stor grad er neglisjert i mangfoldet av C. elegans-studier på tvers av nesten alle livsvitenskapsdisipliner.

Protocol

1. Forberedelse av buffere og medier Forbered S-buffer ved å tilsette 5,85 g NaCl, 1,123 g K 2 HPO4, 5,926 g KH2PO4 og 1 L avionisertH2O til en kolbe og autoklav i 20 minutter ved 121 °C. Forbered et viskøst medium ved å tilsette S-buffer som inneholder 1,2% (w / v) hydroksymetylcellulose (stoffet som forårsaker viskositet i mediet), 5 mg / ml kolesterol, 1 mM MgSO4, 1 mM CaCl2 og 0,1% (v / v) aceton. Au…

Representative Results

Nematoden C. elegans finnes ofte i nedbrytende frukt, som epler, og også kompostprøver. I Nord-Tyskland finnes C. elegans samt congeneric arter (spesielt C. remanei, men også C. briggsae) hovedsakelig fra september til2. november. Nematoder er oftest funnet i nedbrytende plantemateriale, spesielt råtnende frukter som epler eller pærer, og også kompost, spesielt materiale som viser en høy grad av nedbrytning. Frukt- og kompostprøvene kan tas inn i laborat…

Discussion

Nematoden Caenorhabditis elegans er en av de mest intensivt studerte modellorganismene i biologisk forskning. Det ble introdusert av Sydney Brenner på 1960-tallet, opprinnelig for å forstå utviklingen og funksjonen til nervesystemet29. Siden da har C. elegans blitt en kraftig modell for å studere grunnleggende prosesser på tvers av alle biologiske disipliner, inkludert atferdsbiologi, nevrobiologi, aldring, evolusjonær biologi, cellebiologi, utviklingsbiologi og immunologi….

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi anerkjenner økonomisk støtte fra German Science Foundation (prosjekter A1.1 og A1.2 fra Collaborative Research Center 1182 om metaorganismers opprinnelse og funksjon). Vi takker medlemmene av Schulenburg-laboratoriet for deres råd og støtte.

Materials

COMSOL COMSOL multiphysics simulation software

References

  1. Schulenburg, H., Félix, M. -. A. The natural biotic environment of Caenorhabditis elegans. Genetics. 206 (1), 55-86 (2017).
  2. Petersen, C., Dirksen, P., Prahl, S., Strathmann, E. A., Schulenburg, H. The prevalence of Caenorhabditis elegans across 1.5 years in selected North German locations: the importance of substrate type, abiotic parameters, and Caenorhabditis competitors. BMC Ecology. 14 (1), 4 (2014).
  3. Petersen, C., et al. Travelling at a slug’s pace: possible invertebrate vectors of Caenorhabditis nematodes. BMC Ecology. 15 (1), 19 (2015).
  4. Berg, M., et al. Assembly of the Caenorhabditis elegans gut microbiota from diverse soil microbial environments. The ISME Journal. 10 (8), 1998-2009 (2016).
  5. Samuel, B. S., Rowedder, H., Braendle, C., Félix, M. -. A., Ruvkun, G. Caenorhabditis elegans responses to bacteria from its natural habitats. Proceedings of the National Academy of Sciences. 113 (27), 3941-3949 (2016).
  6. Dirksen, P., et al. The native microbiome of the nematode Caenorhabditis elegans: gateway to a new host-microbiome model. BMC Biology. 14 (1), 38 (2016).
  7. Johnke, J., Dirksen, P., Schulenburg, H. Community assembly of the native C. elegans microbiome is influenced by time, substrate and individual bacterial taxa. Environmental Microbiology. 22 (4), 1265-1279 (2020).
  8. Zhang, F., et al. Caenorhabditis elegans as a model for microbiome research. Frontiers in Microbiology. 8, 485 (2017).
  9. Dirksen, P., et al. CeMbio – The Caenorhabditis elegans microbiome resource. G3 Genes|Genomes|Genetics. 10 (9), 3025-3039 (2020).
  10. Zimmermann, J., et al. The functional repertoire contained within the native microbiota of the model nematode Caenorhabditis elegans. The ISME Journal. 14 (1), 26-38 (2019).
  11. Kissoyan, K. A. B., et al. Exploring effects of C. elegans protective natural microbiota on host physiology. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 12, 775728 (2022).
  12. Zhang, F., et al. Natural genetic variation drives microbiome selection in the Caenorhabditis elegans gut. Current Biology. 31 (12), 2603-2618 (2021).
  13. Berg, M., et al. TGFβ/BMP immune signaling affects abundance and function of C. elegans gut commensals. Nature Communications. 10 (1), 604 (2019).
  14. Kissoyan, K. A. B., et al. Natural C. elegans microbiota protects against infection via production of a cyclic lipopeptide of the viscosin group. Current Biology. 29 (6), 1030-1037 (2019).
  15. Watson, E., MacNeil, L. T., Arda, H. E., Zhu, L. J., Walhout, A. J. M. Integration of metabolic and gene regulatory networks modulates the C. elegans dietary response. Cell. 153 (1), 253-266 (2013).
  16. Watson, E., et al. Interspecies systems biology uncovers metabolites affecting C. elegans gene expression and life history traits. Cell. 156 (4), 759-770 (2014).
  17. MacNeil, L. T., Watson, E., Arda, H. E., Zhu, L. J., Walhout, A. J. M. Diet-induced developmental acceleration independent of TOR and insulin in C. elegans. Cell. 153 (1), 240-252 (2013).
  18. O’Donnell, M. P., Fox, B. W., Chao, P. -. H., Schroeder, F. C., Sengupta, P. A neurotransmitter produced by gut bacteria modulates host sensory behaviour. Nature. 583 (7816), 415-420 (2020).
  19. Snoek, B. L., et al. A multi-parent recombinant inbred line population of C. elegans allows identification of novel QTLs for complex life history traits. BMC Biology. 17 (1), 24 (2019).
  20. Avery, L., Shtonda, B. B. Food transport in the C. elegans pharynx. Journal of Experimental Biology. 206 (14), 2441-2457 (2003).
  21. Zhang, J., et al. A delicate balance between bacterial iron and reactive oxygen species supports optimal C. elegans development. Cell Host & Microbe. 26 (3), 400-411 (2019).
  22. Petersen, C., et al. Ten years of life in compost: temporal and spatial variation of North German Caenorhabditis elegans populations. Ecology and Evolution. 5 (16), 3250-3263 (2015).
  23. Félix, M. -. A., Duveau, F. Population dynamics and habitat sharing of natural populations of Caenorhabditis elegans and C. briggsae. BMC Biology. 10 (1), 59 (2012).
  24. Barrière, A., Félix, M. -. A. Temporal dynamics and linkage disequilibrium in natural Caenorhabditis elegans populations. Genetics. 176 (2), 999-1011 (2007).
  25. Dolgin, E. S., Félix, M. -. A., Cutter, A. D. Hakuna Nematoda: genetic and phenotypic diversity in African isolates of Caenorhabditis elegans and C. briggsae. Heredity. 100 (3), 304-315 (2008).
  26. Douglas, A. E. Simple animal models for microbiome research. Nature Reviews Microbiology. 17 (12), 764-775 (2019).
  27. Barrière, A., Félix, M. -. A. Isolation of C. elegans and related nematodes. WormBook. , 1-19 (2014).
  28. Weisburg, W. G., Barns, S. M., Pelletier, D. A., Lane, D. J. 16S ribosomal DNA amplification for phylogenetic study. Journal of Bacteriology. 173 (2), 697-703 (1991).
  29. Brenner, S. The genetics of Caenorhabditis elegans. Genetics. 77 (1), 71-94 (1974).
  30. Crombie, T. A., et al. Local adaptation and spatiotemporal patterns of genetic diversity revealed by repeated sampling of Caenorhabditis elegans across the Hawaiian Islands. Molecular Ecology. 31 (8), 2327-2347 (2022).
  31. Haber, M. Evolutionary history of Caenorhabditis elegans inferred from microsatellites: Evidence for spatial and temporal genetic differentiation and the occurrence of outbreeding. Molecular Biology and Evolution. 22 (1), 160-173 (2004).
  32. Watson, E., et al. Metabolic network rewiring of propionate flux compensates vitamin B12 deficiency in C. elegans. eLife. 5, 17670 (2016).

Play Video

Cite This Article
Petersen, C., Dierking, K., Johnke, J., Schulenburg, H. Isolation and Characterization of the Natural Microbiota of the Model Nematode Caenorhabditis elegans. J. Vis. Exp. (186), e64249, doi:10.3791/64249 (2022).

View Video