Den foreliggende protokollen beskriver en musemodell av ablasjon av adrenerg innervering ved å identifisere og resektere den overlegne cervikale ganglion.
Økende bevis tyder på at det sympatiske nervesystemet spiller en viktig rolle i kreftprogresjon. Adrenerg innervering regulerer spyttkjertel sekresjon, sirkadisk rytme, makuladegenerasjon, immunfunksjon og hjertefysiologi. Murine kirurgisk sympatektomi er en metode for å studere effekten av adrenerg innervering ved å muliggjøre fullstendig, ensidig adrenerg ablasjon samtidig som man unngår behovet for gjentatt farmakologisk intervensjon og tilhørende bivirkninger. Imidlertid er kirurgisk sympatektomi hos mus teknisk utfordrende på grunn av den lille størrelsen på den overlegne cervikale ganglion. Denne studien beskriver en kirurgisk teknikk for pålitelig identifisering og resecting av overlegen cervikal ganglion for å ablate det sympatiske nervesystemet. Den vellykkede identifiseringen og fjerningen av ganglion valideres ved å avbilde de fluorescerende sympatiske gangliene ved hjelp av en transgen mus, identifisere postreseksjon Horners syndrom, farging for adrenerge markører i resekterte ganglier og observere redusert adrenerg immunfluorescens i målorganene etter sympatektomi. Denne modellen muliggjør fremtidige studier av kreftprogresjon samt andre fysiologiske prosesser regulert av det sympatiske nervesystemet.
Flere studier har rapportert at nerver i tumormikromiljøet spiller en aktiv rolle i å støtte tumorprogresjon. Ablasjon av adrenerge sympatiske nerver har vist seg å svekke tumorutvikling og spredning i prostata- og magekreft in vivo 1,2,3, mens den farmakologiske blokaden av adrenerge reseptorer hemmer tumorvekst i hode- og nakkekreft4. Sympatisk nevral involvering er også beskrevet i progresjon av bukspyttkjertel, cervikalt og basalcellekarsinom 5,6,7.
Innenfor det sympatiske nervesystemet er overlegen cervikal ganglion (SCG) den eneste ganglion av den sympatiske stammen som innerverer hodet. SCG regulerer ulike fysiologiske funksjoner, som spyttsekresjon og døgnrytme, og innerverer direkte livmorhalsk lymfeknuter 8,9,10. SCG har også vært involvert i patologiske prosesser som makuladegenerasjon11 og progresjonen av aortadisseksjon12. I tillegg har reseksjon av SCG blitt rapportert å forverre iskemi reperfusjonsindusert akutt nyreskade13 og også endre tarmmikrobiota hos rotter14.
Den komplette ablasjonen av SCG i en musemodell vil representere en verdifull eksperimentell teknikk for å muliggjøre kreft og autonom nervesystemforskning. Mens mange studier har benyttet farmakologisk adrenerg reseptorblokade som en adrenerg ablasjon 15,16,17,18,19,20, tillater kirurgisk reseksjon fullstendig, ensidig adrenerg ablasjon samtidig som man unngår behovet for gjentatt farmakologisk intervensjon og tilhørende bivirkninger 21,22,23.
Kirurgisk reseksjon av SCG er beskrevet hos rotter24, og de fleste rapporter som studerer effekten av overlegen cervikal ganglionektomi (SCGx) har benyttet rottemodellen. Sammenlignet med rottemodellen er SCGx teknisk mer utfordrende hos mus på grunn av den lille størrelsen på SCG. Imidlertid er mus relativt lettere å håndtere, mer kostnadseffektive og mer mottagelige for genetisk manipulasjon. Garcia et al. var en av de første som rapporterte SCGx hos mus, og det ble funnet å påvirke insulinfrigivelse25. Mer nylig beskrev Ziegler et al. SCGx hos mus basert på den publiserte teknikken beskrevet for rotter24,26. Denne og andre artikler beskriver en metode der arteria carotis communis (CCA) først identifiseres og dissekeres, og SCG deretter fjernes fra bifurkasjonen av CCA21,22,27,28. I denne artikkelen er en mindre invasiv og sikrere teknikk beskrevet hos mus som unngår disseksjon av CCA, og dermed minimerer den mest alvorlige komplikasjonen av denne prosedyren – blødning fra en skade på CCA.
Denne protokollen beskriver en musemodell for kirurgisk ensidig ablasjon av SCG-inngang. Denne teknikken gjør det mulig å studere effekten av adrenerg innervering i ulike innstillinger. I tillegg kan det resekterte sympatiske ganglion også dyrkes i 3D matrigel kultur for in vitro eksperimenter30.
Studier som involverer SCGx har for det meste blitt utført på rotter, da deres større anatomi muliggjør enklere anatomisk visualisering og disseksjon. Mens SCGx…
The authors have nothing to disclose.
Q. W. ble støttet av NIH T32CA009685. R. J. W. ble støttet av NIH R01CA219534. Memorial Sloan Kettering Cancer Center Core Facilities ble støttet av NIH P30CA008748.
Anti-Tyrosine Hydroxylase Antibody | EMD Millipore | AB152 | |
Artificial Tears Lubricant Ophthalmic Ointment | Akorn | 59399-162-35 | |
Curity 2 x 2 Inch Gauze Sponge 8 Ply, Sterile | Covidien | 1806 | |
Derf Needle Holder | Thomas Scientific | 1177K00 | |
Dissecting Microscope | |||
Dumont #5/45 Forceps | Fine Science Tools | 11251-35 | |
Dumont #7b Forceps | Fine Science Tools | 11270-20 | |
ETHILON Nylon Suture | Ethicon | 698H | |
Fine Scissors – ToughCut | Fine Science Tools | 14058-09 | |
Hypoallergenic Surgical Tape | 3M Blenderm | 70200419342 | |
Induction Chamber, 2 Liter | VetEquip | 941444 | |
Isoflurane | Baxter | 1001936060 | |
Nair | Church & Dwight Co., Inc | 40002957 | chemical hair removing agent |
NORADRENALINE RESEARCH ELISA | Labor Diagnostika Nord (Rocky Mountain Diagnostics) | BA E-5200 | |
NSG Mouse | Jackson Laboratory | JAX:005557 | |
Povidone-Iodine Swabstick | PDI | S41350 | |
Webcol Alcohol Preps | Covidien | 5110 |