Summary

Automatisering af mikronukleusanalysen ved hjælp af billeddannelsesflowcytometri og kunstig intelligens

Published: January 27, 2023
doi:

Summary

Mikronukleusanalysen (MN) er en veletableret test til kvantificering af DNA-skader. Imidlertid er det besværligt og udfordrende at score analysen ved hjælp af konventionelle teknikker såsom manuel mikroskopi eller funktionsbaseret billedanalyse. Dette papir beskriver metoden til at udvikle en kunstig intelligensmodel til at score MN-analysen ved hjælp af billeddannelsesflowcytometridata.

Abstract

Mikrokerneanalysen (MN) anvendes over hele verden af regulerende organer til at evaluere kemikalier for genetisk toksicitet. Analysen kan udføres på to måder: ved at score MN i en gang opdelte, cytokinesisblokerede binucleerede celler eller fuldt opdelte mononukleerede celler. Historisk set har lysmikroskopi været guldstandardmetoden til at score analysen, men det er besværligt og subjektivt. Flowcytometri er blevet brugt i de senere år til at score analysen, men er begrænset af manglende evne til visuelt at bekræfte nøgleaspekter af cellulære billeder. Imaging flow cytometri (IFC) kombinerer high-throughput billedoptagelse og automatiseret billedanalyse, og er blevet anvendt med succes til hurtigt at erhverve billeder af og score alle vigtige begivenheder i MN assay. For nylig er det blevet demonstreret, at kunstig intelligens (AI) metoder baseret på convolutional neurale netværk kan bruges til at score MN assay data erhvervet af IFC. Dette dokument beskriver alle trin til at bruge AI-software til at oprette en dyb læringsmodel til at score alle vigtige hændelser og til at anvende denne model til automatisk at score yderligere data. Resultaterne fra AI deep learning-modellen kan sammenlignes godt med manuel mikroskopi, hvilket muliggør fuldautomatisk scoring af MN-analysen ved at kombinere IFC og AI.

Introduction

Mikrokerneanalysen (MN) er grundlæggende i genetisk toksikologi til evaluering af DNA-skader i udviklingen af kosmetik, lægemidler og kemikalier til human brug 1,2,3,4. Mikrokerner dannes af hele kromosomer eller kromosomfragmenter, der ikke inkorporeres i kernen efter opdeling og kondenseres til små, cirkulære legemer adskilt fra kernen. MN kan således anvendes som endepunkt til at kvantificere DNA-skader i genotoksicitetstest1.

Den foretrukne metode til kvantificering af MN er inden for en gang delte binucleated celler (BNC’er) ved at blokere division ved hjælp af cytochalasin-B (Cyt-B). I denne version af analysen vurderes cytotoksicitet også ved at score mononukleerede (MONO) og polynukleerede (POLY) celler. Analysen kan også udføres ved at score MN i ikke-blokerede MONO-celler, hvilket er hurtigere og lettere at score, idet cytotoksicitet vurderes ved hjælp af celletal før og efter eksponering for at vurdere proliferation 5,6.

Fysisk scoring af analysen er historisk set blevet udført gennem manuel mikroskopi, da dette muliggør visuel bekræftelse af alle nøglehændelser. Imidlertid er manuel mikroskopi udfordrende og subjektiv1. Således er automatiserede teknikker blevet udviklet, herunder mikroskopdiasscanning og flowcytometri, hver med deres egne fordele og begrænsninger. Mens diasscanningsmetoder gør det muligt at visualisere nøglehændelser, skal dias oprettes med optimal celletæthed, hvilket kan være vanskeligt at opnå. Derudover mangler denne teknik ofte cytoplasmatisk visualisering, hvilket kan kompromittere scoringen af MONO- og POLY-celler 7,8. Mens flowcytometri tilbyder datafangst med høj kapacitet, skal cellerne lyseres, hvilket ikke tillader anvendelse af Cyt-B-formen af assayet. Derudover giver konventionel flowcytometri som en ikke-billeddannelsesteknik ikke visuel validering af nøglehændelser 9,10.

Derfor er billeddannelsesflowcytometri (IFC) blevet undersøgt for at udføre MN-assayet. ImageStreamX Mk II kombinerer hastigheden og den statistiske robusthed af konventionel flowcytometri med mikroskopiens billeddannelsesfunktioner i høj opløsning i et enkelt system11. Det har vist sig, at ved hjælp af IFC kan billeder i høj opløsning af alle nøglebegivenheder optages og automatisk scores ved hjælp af funktionsbaserede 12,13 eller kunstig intelligens (AI) teknikker14,15. Ved at bruge IFC til at udføre MN-analysen kan den automatiske scoring af mange flere celler sammenlignet med mikroskopi på kortere tid opnås.

Dette arbejde afviger fra en tidligere beskrevet billedanalysearbejdsgang16 og diskuterer alle trin, der kræves for at udvikle og træne en Random Forest (RF) og / eller convolutional neural network (CNN) model ved hjælp af Amnis AI-softwaren (fremover benævnt “AI-software”). Alle nødvendige trin er beskrevet, herunder udfyldning af grundlæggende sandhedsdata ved hjælp af AI-assisterede mærkningsværktøjer, fortolkning af modeltræningsresultater og anvendelse af modellen til at klassificere yderligere data, hvilket muliggør beregning af genotoksicitet og cytotoksicitet15.

Protocol

1. Dataindsamling ved hjælp af billeddannelsesflowcytometri BEMÆRK: Se Rodrigues et al.16 med følgende ændringer, idet det bemærkes, at anskaffelsesregionerne, der bruger IFC, muligvis skal ændres for optimal billedoptagelse: For non-Cyt-B-metoden udføres en celletælling ved hjælp af en kommercielt tilgængelig celletæller efter producentens anvisninger (se materialetabellen) på hver kultur umiddelbart før dyrkning…

Representative Results

Figur 1 viser arbejdsprocessen for brug af AI-softwaren til at oprette en model til MN-analysen. Brugeren indlæser de ønskede .daf-filer i AI-softwaren og tildeler derefter objekter til jordsandhedsmodelklasserne ved hjælp af AI-assisterede klyngealgoritmer (figur 2) og forudsige (figur 3). Når alle grundlæggende sandhedsmodelklasser er blevet befolket med tilstrækkelige objekter, kan modellen trænes ved hjælp af RF- eller C…

Discussion

Arbejdet, der præsenteres her, beskriver brugen af deep learning-algoritmer til at automatisere scoringen af MN-analysen. Flere nylige publikationer har vist, at intuitive, interaktive værktøjer gør det muligt at oprette deep learning-modeller til at analysere billeddata uden behov for dybdegående beregningsviden18,19. Protokollen beskrevet i dette arbejde ved hjælp af en brugergrænsefladedrevet softwarepakke er designet til at fungere godt med meget store…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ingen.

Materials

15 mL centrifuge tube Falcon 352096
Cleanser – Coulter Clenz  Beckman Coulter 8546931 Fill container with 200 mL of Cleanser.  https://www.beckmancoulter.com/wsrportal/page/itemDetails?itemNumber=8546931#2/10//0/25/
1/0/asc/2/8546931///0/1//0/
Colchicine MilliporeSigma 64-86-8
Corning bottle-top vacuum filter  MilliporeSigma CLS430769 0.22 µm filter, 500 mL bottle
Cytochalasin B MilliporeSigma 14930-96-2 5 mg bottle
Debubbler – 70% Isopropanol MilliporeSigma 1.3704 Fill container with 200 mL of Debubbler.  http://www.emdmillipore.com/US/en/product/2-Propanol-70%25-%28V%2FV%29-0.1-%C2%B5m-filtred,MDA_CHEM-137040?ReferrerURL=https%3A%2F%2Fwww.google.com%2F
Dimethyl Sulfoxide (DMSO) MilliporeSigma 67-68-5
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline 1X EMD Millipore BSS-1006-B PBS Ca++MG++ Free 
Fetal Bovine Serum HyClone SH30071.03
Formaldehyde, 10%, methanol free, Ultra Pure Polysciences, Inc. 04018 This is what is used for the 4% and 1% Formalin. CAUTION: Formalin/Formaldehyde toxic by inhalation and if swallowed.  Irritating to the eyes, respiratory systems and skin.  May cause sensitization by inhalation or skin contact. Risk of serious damage to eyes.  Potential cancer hazard.  http://www.polysciences.com/default/catalog-products/life-sciences/histology-microscopy/fixatives/formaldehydes/formaldehyde-10-methanol-free-pure/
Guava Muse Cell Analyzer Luminex 0500-3115 A standard configuration Guava Muse Cell Analyzer was used.
Hoechst 33342 Thermo Fisher H3570 10 mg/mL solution
Mannitol MilliporeSigma 69-65-8
MEM Non-Essential Amino Acids 100X HyClone SH30238.01
MIFC – ImageStreamX Mark II Luminex, a DiaSorin company 100220 A 2 camera ImageStreamX Mark II eqiped with the 405 nm, 488 nm, and 642 nm lasers was used.
MIFC analysis software – IDEAS Luminex, a DiaSorin company 100220 "Image analysis sofware"
The companion software to the MIFC (ImageStreamX MKII)
MIFC software – INSPIRE Luminex, a DiaSorin company 100220 "Image acquisition software"
This is the software that runs the MIFC (ImageStreamX MKII)
Amnis AI software Luminex, a DiaSorin company 100221 "AI software"
This is the software that permits the creation of artificial intelligence models to analyze data
Mitomycin C MilliporeSigma 50-07-7
NEAA Mixture 100x Lonza BioWhittaker 13-114E
Penicllin/Streptomycin/Glutamine solution 100X Gibco 15070063
Potassium Chloride (KCl) MilliporeSigma P9541
Rinse – Ultrapure water or deionized water NA NA Use any ultrapure water or deionized water.  Fill container with 900 mL of Rinse.
RNase MilliporeSigma 9001-99-4
RPMI-1640 Medium 1x HyClone SH30027.01
Sheath – PBS MilliporeSigma BSS-1006-B This is the same as Dulbecco's Phosphate Buffered Saline 1x  Ca++MG++ free.  Fill container with 900 mL of Sheath.
Sterile water HyClone SH30529.01
Sterilizer – 0.4%–0.7% Hypochlorite VWR JT9416-1 This is assentually 10% Clorox bleach that can be made by deluting Clorox bleach with water.  Fill container with 200 mL of Sterilzer.
T25 flask Falcon 353109
T75 flask Falcon 353136
TK6 cells MilliporeSigma 95111735

References

  1. Fenech, M., et al. HUMN project initiative and review of validation, quality control and prospects for further development of automated micronucleus assays using image cytometry systems. International Journal of Hygiene and Environmental Health. 216 (5), 541-552 (2013).
  2. OECD. Test No. 487: In Vitro Mammalian Cell Micronucleus Test. Section 4. OECD Guidelines for the Testing of Chemicals. , (2016).
  3. Fenech, M. The in vitro micronucleus technique. Mutation Research/Fundamental and Molecular Mechanisms of Mutagenesis. 455 (1), 81-95 (2000).
  4. Bonassi, S., et al. An increased micronucleus frequency in peripheral blood lymphocytes predicts the risk of cancer in humans. Carcinogenesis. 28 (3), 625-631 (2007).
  5. Fenech, M. Cytokinesis-block micronucleus cytome assay. Nature Protocols. 2 (5), 1084-1104 (2007).
  6. Fenech, M. Commentary on the SFTG international collaborative study on the in vitro micronucleus test: To Cyt-B or not to Cyt-B. Mutation Research/Fundamental and Molecular Mechanisms of Mutagenesis. 607 (1), 9-12 (2006).
  7. Seager, A. L., et al. Recommendations, evaluation and validation of a semi-automated, fluorescent-based scoring protocol for micronucleus testing in human cells. Mutagenesis. 29 (3), 155-164 (2014).
  8. Rossnerova, A., Spatova, M., Schunck, C., Sram, R. J. Automated scoring of lymphocyte micronuclei by the MetaSystems Metafer image cytometry system and its application in studies of human mutagen sensitivity and biodosimetry of genotoxin exposure. Mutagenesis. 26 (1), 169-175 (2011).
  9. Bryce, S. M., Bemis, J. C., Avlasevich, S. L., Dertinger, S. D. In vitro micronucleus assay scored by flow cytometry provides a comprehensive evaluation of cytogenetic damage and cytotoxicity. Mutation Research/Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesis. 630 (1), 78-91 (2007).
  10. Avlasevich, S. L., Bryce, S. M., Cairns, S. E., Dertinger, S. D. In vitro micronucleus scoring by flow cytometry: Differential staining of micronuclei versus apoptotic and necrotic chromatin enhances assay reliability. Environmental and Molecular Mutagenesis. 47 (1), 56-66 (2006).
  11. Basiji, D. A. Principles of Amnis imaging flow cytometry. Methods in Molecular Biology. 1389, 13-21 (2016).
  12. Rodrigues, M. A. Automation of the in vitro micronucleus assay using the Imagestream® imaging flow cytometer. Cytometry Part A. 93 (7), 706-726 (2018).
  13. Verma, J. R., et al. Investigating FlowSight® imaging flow cytometry as a platform to assess chemically induced micronuclei using human lymphoblastoid cells in vitro. Mutagenesis. 33 (4), 283-289 (2018).
  14. Wills, J. W., et al. Inter-laboratory automation of the in vitro micronucleus assay using imaging flow cytometry and deep learning. Archives of Toxicology. 95 (9), 3101-3115 (2021).
  15. Rodrigues, M. A., et al. The in vitro micronucleus assay using imaging flow cytometry and deep learning. Npj Systems Biology and Applications. 7 (1), 20 (2021).
  16. Rodrigues, M. A. An automated method to perform the in vitro micronucleus assay using multispectral imaging flow cytometry. Journal of Visualized Experiments. (147), e59324 (2019).
  17. Lovell, D. P., et al. Analysis of negative historical control group data from the in vitro micronucleus assay using TK6 cells. Mutation Research/Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesis. 825, 40-50 (2018).
  18. Berg, S., et al. ilastik: interactive machine learning for (bio)image analysis. Nature Methods. 16 (12), 1226-1232 (2019).
  19. Hennig, H., et al. An open-source solution for advanced imaging flow cytometry data analysis using machine learning. Methods. 112, 201-210 (2017).
check_url/64549?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Rodrigues, M. A., Gracia García Mendoza, M., Kong, R., Sutton, A., Pugsley, H. R., Li, Y., Hall, B. E., Fogg, D., Ohl, L., Venkatachalam, V. Automation of the Micronucleus Assay Using Imaging Flow Cytometry and Artificial Intelligence. J. Vis. Exp. (191), e64549, doi:10.3791/64549 (2023).

View Video