Summary

Generering og dyrking av høygradig serøs eggstokkreft Pasientavledede organoider

Published: January 06, 2023
doi:

Summary

Pasientavledede organoider (PUD) er en tredimensjonal (3D) kultur som kan etterligne tumormiljøet in vitro. I høygradig serøs eggstokkreft representerer PUD en modell for å studere nye biomarkører og terapi.

Abstract

Organoider er 3D-dynamiske tumormodeller som kan dyrkes vellykket fra pasientavledet ovarietumorvev, ascites eller pleuravæske og hjelpe til med oppdagelsen av nye terapier og prediktive biomarkører for eggstokkreft. Disse modellene rekapitulerer klonal heterogenitet, tumormikromiljøet og cellecelle- og cellematriseinteraksjoner. I tillegg har de vist seg å matche den primære svulsten morfologisk, cytologisk, immunhistokjemisk og genetisk. Dermed letter organoider forskning på tumorceller og tumormikromiljøet og er overlegne cellelinjer. Denne protokollen beskriver forskjellige metoder for å generere pasientavledede eggstokkreftorganoider fra pasienttumorer, ascites og pleuravæskeprøver med en høyere enn 97% suksessrate. Pasientprøvene separeres i cellulære suspensjoner ved både mekanisk og enzymatisk fordøyelse. Cellene blir deretter belagt ved hjelp av et kjellermembranekstrakt (BME) og støttes med optimaliserte vekstmedier som inneholder kosttilskudd som er spesifikke for dyrking av høyverdig serøs eggstokkreft (HGSOC). Etter å ha dannet innledende organoider, kan PUDene opprettholde langsiktig kultur, inkludert passasje for utvidelse for påfølgende eksperimenter.

Introduction

I 2021 ble omtrent 21,410 kvinner i USA nylig diagnostisert med epitelial eggstokkreft, og 12,940 kvinner døde av denne sykdommen1. Selv om det er gjort tilstrekkelige fremskritt innen kirurgi og kjemoterapi, utvikler over 70% av pasientene med avansert sykdom kjemoterapeutisk resistens og dør innen 5 år etter diagnose 2,3. Dermed er det behov for nye strategier for å behandle denne dødelige sykdommen og representative, pålitelige modeller for preklinisk forskning.

Kreftcellelinjer og pasientavledede xenotransplantater (PDX) opprettet fra primære eggstokktumorer er de viktigste instrumentene som brukes i eggstokkreftforskning. En stor fordel med kreftcellelinjer er deres raske ekspansjon. Imidlertid resulterer deres kontinuerlige kultur i fenotypiske og genotypiske endringer som får kreftcellelinjene til å avvike fra den opprinnelige primære krefttumorprøven. På grunn av de eksisterende forskjellene mellom kreftcellelinjen og primærtumoren, kan legemiddelanalyser som har positive effekter i cellelinjer ikke ha de samme effektene i kliniske studier2. For å overvinne disse begrensningene brukes PDX-modeller. Disse modellene er opprettet ved å implantere ferskt eggstokkreftvev i immundefekte mus. Som de er in vivo-modeller , ligner de mer nøyaktig menneskelige biologiske egenskaper og er i sin tur mer prediktive for legemiddelutfall. Disse modellene har imidlertid også betydelige begrensninger, inkludert kostnadene, tiden og ressursene som trengs for å generere dem4.

PUD tilbyr en alternativ modell for preklinisk forskning som overvinner begrensningene til både kreftcellelinjer og PDX-modeller. PUD rekapitulerer pasientens tumor- og tumormikromiljø og gir dermed en in vitro håndterbar modell ideell for preklinisk forskning 2,3,5. Disse 3D-modellene har selvorganiseringsfunksjoner som modellerer primærtumoren, som er en funksjon som deres todimensjonale (2D) cellelinje-kolleger ikke har. Videre har disse modellene vist seg å genetisk og funksjonelt representere deres foreldretumorer og er dermed pålitelige modeller for å studere nye terapier og biologiske prosesser. Kort sagt, de tilbyr langsiktige utvidelses- og lagringsmuligheter som ligner på cellelinjer, men omfatter også mikromiljøet og celle-celle-interaksjonene som ligger i musemodeller 4,6.

Den nåværende protokollen beskriver opprettelsen av PUD fra pasientavledede svulster, ascites og pleuravæskeprøver med en høyere enn 97% suksessrate. PUD-kulturene kan deretter utvides i flere generasjoner og brukes til å teste følsomhet for legemiddelbehandling og prediktive biomarkører. Denne metoden representerer en teknikk som kan brukes til å tilpasse behandlinger basert på terapeutiske responser fra PUD.

Protocol

Alle humane vevsprøver samlet for forskning ble oppnådd i henhold til Institutional Review Board (IRB) -godkjent protokoll. Protokollene som er skissert nedenfor ble utført i et sterilt humant vevskulturmiljø. Informert skriftlig samtykke ble innhentet fra mennesker. Kvalifiserte pasienter måtte ha en diagnose eller antatt diagnose av eggstokkreft, være villige og i stand til å signere informert samtykke, og være minst 18 år. Tumorvev (malign primærtumor eller metastaserende steder), ascites og pleuravæske ble…

Representative Results

For å generere PUD ble prøvene fordøyd mekanisk og enzymatisk til encellede suspensjoner. Cellene ble deretter resuspendert i BME og supplert med spesifikt konstruerte medier (figur 3). Organoider etableres typisk over en tidsramme på 10 dager, hvoretter de påviser diskrete organoider i kultur (figur 4). <br…

Discussion

Eggstokkreft er ekstremt dødelig på grunn av sitt avanserte stadium ved diagnose, samt den vanlige utviklingen av kjemoterapiresistens. Mange fremskritt innen eggstokkreftforskning har blitt gjort ved å bruke kreftcellelinjer og PDX-modeller; Det er imidlertid et åpenbart behov for en mer representativ og rimelig in vitro-modell . PUD har vist seg å nøyaktig representere tumorheterogeniteten, tumormikromiljøet og de genomiske og transkriptomiske egenskapene til deres primære svulster, og er dermed ideell…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi er takknemlige for veiledningen fra Ron Bose, MD, PhD, og hjelpen fra Barbara Blachut, MD, i etableringen av denne protokollen. Vi ønsker også å anerkjenne Washington University’s School of Medicine i St. Louis Department of Obstetrics and Gynecology og Division of Gynecologic Oncology, Washington University’s Dean’s Scholar Program, og Reproductive Scientist Development Program for deres støtte til dette prosjektet.

Materials

1% HEPES Life Technologies 15630080
1% Penicillin-Streptomycin Fisher Scientific 30002CI
1.5 mL Eppendorf Tubes  Genesee Scientific 14125
10 cm Tissue Culture Dish  TPP 93100
10 mL Serological Pipet
100 µm Cell Filter MidSci 100ICS
15 mL centrifuge tubes Corning 430052
2 mL Cryovial Simport Scientific T301-2
2% Paraformaldehyde Fixative Sigma-Aldrich
37 °C water bath  NEST 602052
3dGRO R-Spondin-1 Conditioned Media Supplement Millipore Sigma SCM104
6 well plates TPP 92006
70% Ethanol Sigma-Aldrich R31541GA
A83-01 Sigma-Aldrich SML0788
Advanced DMEM/F12 ThermoFisher 12634028
Agar Lamda Biotech C121
B-27 Life Technologies 17504044
Centrifuge 
Cultrex Type 2 R&D Systems 3533-010-02 basement membrane extract
DNase I New England Bio Labs M0303S
DNase I Reaction Buffer New England Bio Labs M0303S
EGF PeproTech AF-100-15
FBS  Sigma-Aldrich F2442
FGF-10 PeproTech 100-26
FGF2 PeproTech 100-18B
gentleMACS C Tubes Miltenyi BioTech 130-096-334
gentleMACS Octo Dissociator with Heaters Miltenyi BioTech 130-096-427 We use the manufacturers protocol.
GlutaMAX Life Technologies 35050061 dipeptide, L-alanyl-L-glutamine
Hematoxylin and Eosin Staining Kit Fisher Scientific NC1470670
Histoplast Paraffin Wax Fisher Scientific 22900700
Microcentrifuge 
Mr. Frosty Freezing Container Fisher Scientific 07202363S
N-acetylcysteine Sigma-Aldrich A9165
Nicotinamide Sigma-Aldrich N0636
p1000 Pipette with Tips 
p200 Pipette with Tips 
Pasteur Pipettes 9" Fisher Scientific 1367820D
PBS Fisher Scientific MT21031CM
Pipet Controller
Prostaglandin E2 R&D Systems 2296
Puromycin  ThermoFisher A1113802
Recombinant Murine Noggin PeproTech 250-38
Recovery Cell Culture Freezing Medium Invitrogen 12648010
Red Blood Cell Lysis Buffer BioLegend 420301
ROCK Inhibitor (Y-27632) R&D Systems 1254/1
SB202190 Sigma-Aldrich S7076
T75 Flask MidSci TP90076
Tissue Culture Hood 
Tissue Embedding Cassette
TrypLE Express Invitrogen 12604013 animal origin-free, recombinant enzyme
Type II Collagenase Life Technologies 17101015
Vortex

References

  1. Bray, F., et al. Global cancer statistics 2018: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 68 (6), 394-424 (2018).
  2. Drost, J., Clevers, H. Organoids in cancer research. Nature Reviews Cancer. 18 (7), 407-418 (2018).
  3. Pauli, C., et al. Personalized in vitro and in vivo cancer models to guide precision medicine. Cancer Discovery. 7 (5), 462-477 (2017).
  4. Fujii, E., Kato, A., Suzuki, M. Patient-derived xenograft (PDX) models: Characteristics and points to consider for the process of establishment. Journal of Toxicologic Pathology. 33 (3), 153-160 (2020).
  5. Yang, J., et al. Application of ovarian cancer organoids in precision medicine: Key challenges and current opportunities. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 9, 701429 (2021).
  6. Yang, H., et al. Patient-derived organoids: A promising model for personalized cancer treatment. Gastroenterology Report. 6 (4), 243-245 (2018).
  7. Karakasheva, T. A., et al. Generation and characterization of patient-derived head and neck, oral, and esophageal cancer organoids. Current Protocols in Stem Cell Biology. 53 (1), 109 (2020).
  8. Madison, B. B., et al. Let-7 represses carcinogenesis and a stem cell phenotype in the intestine via regulation of Hmga2. PLoS Genetics. 11 (8), 1005408 (2015).
  9. Sato, T., et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. 459 (7244), 262-265 (2009).
  10. Murray, E., et al. HER2 and APC mutations promote altered crypt-villus morphology and marked hyperplasia in the intestinal epithelium. Cellular and Molecular Gastroenterology and Hepatology. 12 (3), 1105-1120 (2021).
  11. Hill, S. J., et al. Prediction of DNA repair inhibitor response in short-term patient-derived ovarian cancer organoids. Cancer Discovery. 8 (11), 1404-1421 (2018).
  12. Passarelli, M. C., et al. Leucyl-tRNA synthetase is a tumour suppressor in breast cancer and regulates codon-dependent translation dynamics. Nature Cell Biology. 24 (3), 307-315 (2022).
  13. Pleguezuelos-Manzano, C., et al. Establishment and culture of human intestinal organoids derived from adult stem cells. Current Protocols in Immunology. 130 (1), 106 (2020).
  14. Stumm, M. M., et al. Validation of a postfixation tissue storage and transport medium to preserve histopathology and molecular pathology analyses (total and phosphoactivated proteins, and FISH). American Journal of Clinical Pathology. 137 (3), 429-436 (2012).
  15. Feldman, A. T., Wolfe, D. Tissue processing and hematoxylin and eosin staining. Methods in Molecular Biology. 1180, 31-43 (2014).
  16. Ooft, S. N., et al. Patient-derived organoids can predict response to chemotherapy in metastatic colorectal cancer patients. Science Translational Medicine. 11 (513), (2019).
  17. Aisenbrey, E. A., Murphy, W. L. Synthetic alternatives to Matrigel. Nature Reviews Materials. 5 (7), 539-551 (2020).
  18. Nanki, Y., et al. Patient-derived ovarian cancer organoids capture the genomic profiles of primary tumours applicable for drug sensitivity and resistance testing. Scientific Reports. 10, 12581 (2020).
  19. Mead, B. E., et al. Screening for modulators of the cellular composition of gut epithelia via organoid models of intestinal stem cell differentiation. Nature Biomedical Engineering. 6 (4), 476-494 (2022).
check_url/64878?article_type=t&slug=generation-culturing-high-grade-serous-ovarian-cancer-patient-derived

Play Video

Cite This Article
Graham, O., Rodriguez, J., van Biljon, L., Fashemi, B., Graham, E., Fuh, K., Khabele, D., Mullen, M. Generation and Culturing of High-Grade Serous Ovarian Cancer Patient-Derived Organoids. J. Vis. Exp. (191), e64878, doi:10.3791/64878 (2023).

View Video