$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Onderdelen van het directe infuusapparaat
De basisversie van het directe infuusapparaat is 8 cm hoog en 3,3 cm breed aan de voor- en zijkant (figuur 1A). Het bevat een enkel centraal reservoir dat aansluit op de tuit en het totale volume dat in deze componenten kan worden opgenomen, is 2,0 ml (figuur 1D). De plastisolring is 1,8 cm hoog en heeft een diameter van 2,7 cm (figuur 1C). Deze ring bevat ook twee kanalen: een voor de tuit van het DPI-apparaat en een andere met een variabele diameter die rond de stam van de te behandelen boom past. Bovendien is er een groef rond het verticale kanaal om overtollige behandeling te richten op de boom, wat extra samengestelde opname door de schors mogelijk maakt (figuur 1F). Wanneer de plastisolring op de juiste manier wordt gemonteerd, moet deze vlak tegen het DPI-apparaat worden geplaatst en moet de tuit in lijn liggen met het gat dat in de boom is geboord (figuur 1B en figuur 1E).
CFDA
Om de effectiviteit van het DPI-apparaat voor het introduceren van exogene chemicaliën in citrusplanten te onderzoeken, werd 2,0 ml 2 mM CFDA geïnfiltreerd met behulp van het apparaat. Een fluorescentiesignaal werd gedetecteerd in de vasculatuur van de behandelde installatie (figuur 2A), maar was afwezig in de controle-installaties die werden behandeld met 20% DMSO in H2O (figuur 2B). Dit signaal werd waargenomen in alle ontleedde plantenweefseltypen, waaronder de bladmesophyl, bladsteelvasculatuur, stengelvasculatuur en wortelvasculatuur (figuur 2C). Dit signaal werd binnen 24 uur na de behandeling in de plant waargenomen en was relatief gelijkmatig over de weefsels verdeeld.
Streptomycine
Om te testen of de geïntroduceerde verbindingen een therapeutisch effect hadden op HLB-ziekte, werd 2,0 ml van een bacteriedodende verbinding, streptomycine, geïntroduceerd in CLas-positieve Valencia (Citrus sinensis) zoete sinaasappelplanten in een concentratie van 9,5 mg / ml (19 mg in totaal). Deze planten werden in kaspotten onderhouden en de CLas-titer (gemeten aan de hand van CLas-genoomequivalenten per citrusgenoomequivalent) werd in de loop van de tijd gemonitord met behulp van qPCR (figuur 3A). De initiële gemiddelde DNA CLas-titers voor de streptomycine- en H2O-behandelde planten waren respectievelijk 0,562 CLas-genoom / citrusgenoom en 0,49 CLas-genoom / citrusgenoom. Reducties in de gemiddelde bacteriële titer werden gedetecteerd door qPCR 7-28 dagen na behandeling met streptomycine in vergelijking met de H2O-controles op hetzelfde tijdstip. Bovendien was het verschil tussen de gemiddelde bacteriële titers van tijd 0 en dag 28 0,314 en 0,117 voor met streptomycine behandelde planten en met H2O behandelde planten.
Dit experiment was ontworpen om de reactie van de plant op verschillende behandelingen over verschillende tijdsperioden te meten. Een twee-factor kwadratisch responsoppervlakontwerp werd gebruikt, waarbij de tijd werd behandeld als een kwantitatieve discrete factor met vier niveaus (0 dagen, 7 dagen, 14 dagen en 28 dagen) en behandeling als een categorische factor met twee niveaus (H2O en streptomycine). Vijf replicaties werden gebruikt voor elk van de acht behandelingscombinaties en de CLas-titer werd gemeten als de responsvariabele. De gegevens werden getransformeerd met behulp van log10 op basis van een Box-Cox plotanalyse. Modelreductie werd uitgevoerd door voorwaartse selectie met behulp van Akaike's informatiecriterium (AICc)21, wat resulteerde in het verwijderen van zowel de tijd- als interactie-effecten. De resterende factor, de behandeling, was significant (p = 0,0252), waarbij met streptomycine behandelde planten een lagere gemiddelde CLas-titer (0,349) vertoonden dan de met H2O behandelde planten (0,496) over alle tijdspunten samen (figuur 3B). Deze afname van de CLas-titer kwam overeen met incidentele toename van de groei van nieuwe gezonde spoelingen na 60 dagen in de met streptomycine behandelde planten, zoals blijkt uit foto's van representatieve bomen behandeld met H2O (figuur 3C) versus 19 mg streptomycine (figuur 3D).
Imidacloprid
Imidacloprid werd geïntroduceerd in juveniele Aziatische citrus psyllid (ACP) -besmette citroenplanten met behulp van het DPI-apparaat om zijn potentieel als een D. citri insecticide screening assay te testen. Een enkele behandeling van 2,0 ml van een commerciële imidacloprid insecticide-oplossing werd getest in drie verschillende concentraties (5,28 μL / L, 52,8 μL / L en 528 μL / L), samen met een watercontrole. Het gemiddelde totale aantal eieren per drie spoelscheuten voorafgaand aan de behandeling varieerde van 280,5 tot 321, en er waren geen significante verschillen tussen de te gebruiken planten voor elke behandelingsgroep (figuur 4A). De gemiddelde totale overlevende nimfen op drie spoelscheuten 7 dagen na de behandeling waren respectievelijk 293,75, 268, 97,5 en 2 voor de watercontrole en 5,28 μL/L, 52,8 μL/L en 528 μL/L imidacloprid-oplossingen (figuur 4B). Dit vertegenwoordigde een significante vermindering van de opkomst van psyllid-nimfen bij de imidacloprid-oplossingsniveaus van 52,8 μL / L (p = 0,029) en 528 μL / L (p = 0,002) in vergelijking met de watercontrole volgens een eenrichtings-ANOVA gevolgd door een post-hocanalyse van Tukey. Bovendien was deze toename van psyllid-nimfsterfte op het hoogste imidacloprid-oplossingsniveau visueel zichtbaar door de vermindering van de productie van nimfhoningdauw op de met imidacloprid behandelde lijnen (figuur 4D) in vergelijking met de watercontrole (figuur 4C).

Figuur 1: Het directe infuusapparaat van de plant en de plastisolring. (A) De intacte directe planteninfuusinrichting en (C) plastisolring samen met hun afmetingen. B) De directe planteninfusie en plastisolring die met een citrusboom zijn verbonden en bevestigd. Verticale doorsneden van het (D) directe planteninfuusapparaat, (F) plastisolring en (E) deze twee componenten verbonden en bevestigd aan een citrusboom. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 2: Doorsnede van de bladmiddenrib van een citrusplant van 25 cm. Beelden die 24 uur na behandeling met (A) 2 mM CFDA of (B) 20% DMSO in H2O met behulp van het directe infuusapparaat van de installatie worden getoond. (C) Dwarsdoorsneden van verschillende plantenweefsels 24 uur na 2 mM CFDA-behandeling, inclusief de stam 5 cm boven het directe planteninfuusapparaat (linksboven), de stam 5 cm onder het directe planteninfuusapparaat (midden links), de wortel (linksonder), de bladmiddenrib (rechtsboven), de bladsteel (midden rechts) en het bladmesophyl (rechtsonder). Schaalstaven = 1 mm. Afkortingen: CFDA = 5,6-carboxyfluoresceïne-diacetaat; DMSO = dimethylsulfoxide. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 3: Monitoring van de CLas-titer (gemeten aan de hand van CLas-genoomequivalenten per citrusgenoomequivalent) in de loop van de tijd met behulp van qPCR. (A) Tijdsverloop met veranderingen in de CLas DNA-titer waarbij de vijf met 19 mg streptomycine behandelde planten worden vergeleken met de vijf planten die met een H2O-controle zijn behandeld. De punten vertegenwoordigen het gemiddelde voor een bepaalde behandeling op een bepaald tijdstip. De foutbalken vertegenwoordigen de standaardfout van het gemiddelde. (B) Staafdiagram met de gemiddelde CLas-titer van de met H2O en streptomycine behandelde planten over alle tijdspunten. De foutbalken vertegenwoordigen het 95%-betrouwbaarheidsinterval en de sterretjes geven significante verschillen aan (* = p < 0,05) tussen de gemiddelde CLas-titers voor de streptomycine- en H2O-behandelde planten volgens een eenrichtings-ANOVA. (C) Representatieve beelden van citrusplanten 0 maanden en 2 maanden na directe behandeling met de infusie van de plant met (C) H2O of (D) streptomycine. De met streptomycine behandelde planten vertonen na 2 maanden een nieuwe lichtgroene bladgroei, wat wijst op een vermindering van de CLas-titer. Afkorting: CLas = Candidatus Liberibacter asiaticus. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figuur 4: Monitoring van de psyllid nimfsterfte in juveniele ACP-besmette citroenplanten. Staafdiagrammen met (A) het geschatte aantal oorspronkelijke eieren en (B) de overlevende D. citri-nimfen op drie citrusspoelingen 7 dagen na behandeling met een watercontrole en verschillende verdunningen van imidacloprid. De foutbalken vertegenwoordigen de standaardfout van het gemiddelde en de sterretjes geven significante verschillen aan (* = p < 0,05, ** = p < 0,01) tussen een bepaald behandelingsniveau en de waterregeling volgens een eenrichtings-ANOVA gevolgd door een post-hoc analyse van een Tukey. Beelden van met D. citri nymph besmette citrusspoeling 7 dagen na behandeling met ofwel (C) de watercontrole of (D) 528 μL/L imidacloprid met behulp van het directe planteninfusieapparaat. Afkortingen: ACP = Aziatische citrus psyllid; D. citri = Diaphorina citri Kuwayama. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
| Volume per monster (μL) | Bestanddeel | |
| 12.5 | 2x GoTaq qPCR met BRYT Green Dye Master Mix | |
| 5 | DNA-sjabloon (20 ng / μL) | |
| 0.5 | 10 μM Primer F en R voor CLas | Clas: CTTACCAGCCCTTGACATGTATAGG (Voorwaarts); TCCCTATAAAGTACCCAACATCTAGGTAAA (Omkeer) |
| 0.5 | 10 μM Primer F en R voor citrushuishouding | Citrusdehydrine: TGAGTACGAGCCGAGTGTTG (Voorwaarts); AAAACTTCACCGATCCACCAG (Omgekeerd) |
| 6.5 | H2O | |
Tabel 1: De qPCR-mix die wordt gebruikt om de CLas-titer in met streptomycine behandelde citruslijnen te kwantificeren. De volgorde van de 16S Las Long primers en citrus dehydrin primers voor CLas DNA kwantificering en citrus DNA kwantificering worden getoond.
| Stap | | Temperatuur (°C) | Tijd |
| 1 | Initiële denaturering | 95 | 2 min |
| 2 | Denaturering | 95 | 15 s |
| 3 | Annealing | 60 | 20 s |
| 4 | Extensie | 72 | 20 s |
| 5 | Ga naar stap 2, herhaal 39x | | |
| 6 | Smeltcurve | 60 ramping tot 95 bij 0,2 °C/s | 3 min |
Tabel 2: Reactiecondities voor de qPCR die wordt gebruikt om de CLas-titer in met streptomycine behandelde citruslijnen te kwantificeren.
Aanvullende figuur S1: Afbeeldingen van het assemblageproces van de mal om de plastisolring te genereren. (A) Snap-together plastic blokken werden gebruikt om de eerste laag van de plastisol ring mal te genereren. (B) Uniform gemengde oplossing die het siliconen RTV-rubber, katalysator, voedselkleurstof en zeep bevat. (C) Gelijkmatig gegoten eerste laag van de plastisolringvorm. (D) Afbeelding van de plastisol ring patronen met de middelste hold core print aan de bovenkant. (E) Plastisolringpatronen ingebracht in de niet-uitgeharde tweede laag van de mal. (F) Afplaktape en rubberen hamer die worden gebruikt om de patronen vast te zetten terwijl de tweede laag uithardt. (G) Derde laag van de mal toegevoegd totdat deze gelijk is met de bovenkant van de patronen. (H) Het verwijderen van de patronen uit de mal. (I) Volledig geconstrueerde plastisolringvorm. Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullende figuur S2: Afbeeldingen van het assemblageproces van de plastisolring die is gekoppeld aan het directe infuusapparaat van de installatie. (A) Plastisolringassemblagecomponenten, inclusief de mal, de middelste kern met een O-ring en de kern van het leveringskanaal. (B) Coating van de kernen in antiaanbakspray bakolie om het verwijderen van de plastisolring na het uitharden te vergemakkelijken. (C) Inbrengen van de middelste kern en O-ring in de mal. (D) Inbrengen van de kern van het leveringskanaal loodrecht op de middelste kern. (E) Juiste montage van de kerncomponenten van de plastisolring in de schimmelholte. (F) Plastisol gebruikt voor het genereren van de plastisolring. (G) Verwarm de plastisol in de magnetron. (H) Roeren van de plastisol na verhitting. (I) Controle van de plastisoltemperatuur. (J) Het verwarmde plastisol in de geassembleerde kern gieten. (K) Zorgen voor de koeling van het plastisol rond de geassembleerde kern. L) Volledig geassembleerde plastisolringen die aan de directe infuusinrichting van de installatie zijn bevestigd. Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullende figuur S3: Afbeeldingen van het assemblageproces van de infuusvoorziening van de directe installatie. (A) Het boren van een gat door het midden van de citrusplant om een kanaal te creëren voor samengestelde levering. (B) Vooraanzicht van het geboorde gat. (C) Snijden door de plastisolring met een scheermesje tegenover het samengestelde afgiftekanaal. (D) De plastisolring strak om de stengel aanbrengen op de plaats van het eerder geboorde gat. (E) Het aanbrengen van de directe planteninfuusinrichting op de plastisolring, waarbij de samengestelde toedieningsspigot op het apparaat in het kanaal van de plastisolring wordt ingebracht. (F) Gebruik siliconentape om het directe infuusapparaat van de plant aan de plastisolring te bevestigen en het hele apparaat op zijn plaats te houden. (G) Het vullen van de directe infuuskamer van de installatie met de verbinding van belang. (H) Gebruik een spuit om lucht uit het geboorde gat in de installatie te trekken en de stroom van de verbinding te starten. (I) Het aanbrengen van wasafdichtingsfolie op de opening in de directe infuuskamer van de installatie en het prikken van een gat om vacuüm te voorkomen. J) Volledig geassembleerde directe planteninjectie-inrichting op een citrusplant. Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullend dossier 1: De kern van de plastisolring in het midden van de paal. STL bestand voor een 4 mm boom. Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullend dossier 2: De kern van de plastisolring in het midden van de paal. STL bestand voor een 6 mm boom. Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullend dossier 3: De plastisol ring centrale post kern . STL bestand voor een 8 mm boom. Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullend dossier 4: De kern van de plastisolring in het midden van de paal. STL bestand voor een 10 mm boom. Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullend dossier 5: De plastisol ring centrale post kern . STL bestand voor een 12 mm boom. Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullend dossier 6: De kern van de plastisolring in het midden van de paal. STL bestand voor een 14 mm boom. Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullend dossier 7: De kern van het plastisolringafgiftekanaal . STL bestand voor een 4 mm boom. Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullend dossier 8: De kern van het plastisolringafgiftekanaal . STL bestand voor een 6 mm boom. Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullend dossier 9: De kern van het plastisolringafgiftekanaal . STL bestand voor een 8 mm boom. Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullend dossier 10: De kern van het plastisolringafgiftekanaal . STL bestand voor een 10 mm boom. Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullend dossier 11: De kern van het plastisolringafgiftekanaal . STL bestand voor een 12 mm boom. Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullend dossier 12: De kern van het plastisolringafgiftekanaal . STL bestand voor een 14 mm boom. Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullend dossier 13: Het directe infuusapparaat van de installatie . STL-bestand. Klik hier om dit bestand te downloaden.
Aanvullend bestand 14: Het patroon dat is gebruikt om de mal voor de plastisolring te maken. STL-bestand. Klik hier om dit bestand te downloaden.