Summary

Ontwikkeling van een voedingstestsysteem voor het evalueren van het insecticide effect van fytochemicaliën op Helicoverpa armigera

Published: May 26, 2023
doi:

Summary

Dit protocol beschrijft de verplichte voedingstest om het potentieel toxische effect van een fytochemische stof op de larven van het lepidoptera-insect te evalueren. Dit is een zeer schaalbare insectenbioassay, waarmee de subletale en dodelijke dosis, afschrikkende activiteit en fysiologisch effect eenvoudig kunnen worden geoptimaliseerd. Dit zou kunnen worden gebruikt voor het screenen van milieuvriendelijke insecticiden.

Abstract

Helicoverpa armigera, een lepidoptera-insect, is een polyfaag plaag met een wereldwijde verspreiding. Dit plantenetende insect vormt een bedreiging voor planten en de landbouwproductiviteit. Als reactie hierop produceren planten verschillende fytochemicaliën die een negatieve invloed hebben op de groei en overleving van het insect. Dit protocol demonstreert een verplichte voedingstestmethode om het effect van een fytochemische stof (quercetine) op de groei, ontwikkeling en overleving van insecten te evalueren. Onder gecontroleerde omstandigheden werden de pasgeborenen tot de tweede instar op een vooraf gedefinieerd kunstmatig dieet gehouden. Deze larven van de tweede instar mochten zich gedurende 10 dagen voeden met een controle- en quercetinebevattend kunstmatig dieet. Het lichaamsgewicht, het ontwikkelingsstadium, het frassgewicht en de sterfte van de insecten werden om de andere dag geregistreerd. De verandering in lichaamsgewicht, het verschil in voedingspatroon en ontwikkelingsfenotypes werden gedurende de testtijd geëvalueerd. De beschreven verplichte voedingstest simuleert een natuurlijke wijze van inname en kan worden opgeschaald naar een groot aantal insecten. Het stelt iemand in staat om het effect van fytochemicaliën op de groeidynamiek, ontwikkelingsovergang en algehele fitheid van H. armigera te analyseren. Bovendien kan deze opstelling ook worden gebruikt om veranderingen in voedingsparameters en spijsverteringsfysiologische processen te evalueren. Dit artikel biedt een gedetailleerde methodologie voor voedingstestsystemen, die toepassingen kunnen hebben in toxicologische studies, screening van insecticide moleculen en het begrijpen van chemische effecten in plant-insectinteracties.

Introduction

De biotische factoren die de productiviteit van gewassen beïnvloeden, zijn voornamelijk ziekteverwekkers en plagen. Verschillende insectenplagen veroorzaken 15% tot 35% van het verlies van landbouwgewassen en beïnvloeden economische duurzaamheidspraktijken1. Insecten die behoren tot de orden Coleoptera, Hemiptera en Lepidoptera zijn de belangrijkste orden van verwoestend ongedierte. De zeer adaptieve aard van de omgeving heeft lepidoptera’s geholpen bij het ontwikkelen van verschillende overlevingsmechanismen. Van de lepidoptera-insecten kan Helicoverpa armigera (katoenbolworm) zich voeden met ongeveer 180 verschillende gewassen en aanzienlijke schade toebrengen aan hun voortplantingsweefsels. Wereldwijd heeft de H. armigera-plaag geresulteerd in een verlies van ongeveer $ 5 miljard3. Katoen, kikkererwten, duivenerwten, tomaten, zonnebloemen en andere gewassen zijn gastheren voor H. armigera. Het voltooit zijn levenscyclus op verschillende delen van waardplanten. Eieren die door vrouwelijke motten worden gelegd, worden op de bladeren uitgebroed, gevolgd door hun voeding met vegetatieve weefsels tijdens larvale stadia. Het larvale stadium is het meest destructief vanwege zijn vraatzuchtige en zeer aanpasbare aard 4,5. H. armigera vertoont een wereldwijde verspreiding en aantasting van nieuwe gebieden vanwege zijn opmerkelijke eigenschappen, zoals polyfagie, uitstekende migratiecapaciteiten, hogere vruchtbaarheid, sterke diapauze en de opkomst van resistentie tegen bestaande insectenbestrijdingsstrategieën6.

Diverse chemische moleculen van terpenen, flavonoïden, alkaloïden, polyfenolen, cyanogene glucosiden en vele andere worden veel gebruikt voor de bestrijding van H. armigera-besmetting 7. Frequente toepassing van chemische moleculen heeft echter nadelige effecten op het milieu en de menselijke gezondheid als gevolg van de verwerving van hun residuen. Ook vertonen ze een nadelig effect op verschillende plaagroofdieren, wat resulteert in een ecologische onbalans 8,9. Daarom is het noodzakelijk om veilige en milieuvriendelijke opties voor chemische moleculen voor ongediertebestrijding te onderzoeken.

Natuurlijke insectendodende moleculen die door planten worden geproduceerd (fytochemicaliën) kunnen worden gebruikt als een veelbelovend alternatief voor chemische bestrijdingsmiddelen. Deze fytochemicaliën omvatten verschillende secundaire metabolieten die behoren tot de klassen alkaloïden, terpenoïden en fenolen 7,10. Quercetine is een van de meest voorkomende flavonoïden (fenolische verbinding) die aanwezig is in verschillende granen, groenten, fruit en bladeren. Het toont een afschrikkende en insectendodende werking tegen insecten; Ook is het niet schadelijk voor natuurlijke vijanden van ongedierte11,12. Dit protocol demonstreert dus de voedingstest met behulp van quercetine om het toxische effect op H. armigera te beoordelen.

Er zijn verschillende bioassay-methoden ontwikkeld om het effect van natuurlijke en synthetische moleculen op de voedings-, groei-, ontwikkelings- en gedragspatronen van een insect teevalueren13. Veelgebruikte methoden zijn onder meer de bladschijftest, keuzevoedingstest, druppelvoedingstest, contacttest, dieetdekkingstest en verplichte voedingstest13,14. Deze methoden worden geclassificeerd op basis van hoe pesticiden op insecten worden toegepast. De verplichte voedingstest is een van de meest gebruikte, gevoelige, eenvoudige en aanpasbare methoden om waarschijnlijke insecticiden en hun dodelijke dosis tetesten14. Bij een verplichte voedingstest wordt het betreffende molecuul gemengd met een kunstmatig dieet. Dit zorgt voor consistentie en controle over de samenstelling van het dieet, waardoor robuuste en reproduceerbare resultaten worden gegenereerd. Belangrijke variabelen die van invloed zijn op voedingstesten zijn het ontwikkelingsstadium van het insect, de keuze van het insecticide, omgevingsfactoren en de steekproefomvang. De duur van de test, het interval tussen twee gegevensregistraties, de frequentie en hoeveelheid gevoerde voeding, de gezondheid van insecten en de hanteringsvaardigheid van operators kunnen ook van invloed zijn op de uitkomst van voedingstests14,15.

Deze studie heeft tot doel de verplichte voedingstest aan te tonen om het effect van quercetine op de overleving en fitheid van H. armigera te evalueren. Beoordeling van verschillende parameters, zoals het lichaamsgewicht van insecten, sterftecijfer en ontwikkelingsstoornissen, zal inzicht geven in de insecticide effecten van quercetine. Ondertussen zal het meten van voedingsparameters, waaronder de efficiëntie van de conversie van ingenomen voedsel (ECI), de efficiëntie van de conversie van verteerd voedsel (ECD) en de geschatte verteerbaarheid (AD), de antivoedende eigenschappen van quercetine benadrukken.

Protocol

De larven van H. armigera werden verkregen van ICAR-National Bureau of Agricultural Insect Resources (NBAIR), Bangalore, India. Voor dit onderzoek werden in totaal 21 second instar-larven gebruikt. 1. Bereiding van een kunstmatig dieet op basis van kikkererwten OPMERKING: Een lijst met ingrediënten die nodig zijn voor het bereiden van een kunstmatig dieet wordt vermeld in tabel 1. Weeg alle fracties afzonderlijk …

Representative Results

Insectenlarven die werden gevoed met een dieet dat 1.000 ppm quercetine bevatte, vertoonden een significante afname van het lichaamsgewicht van ~57% in vergelijking met de controlegroep (Figuur 2A). De vermindering van het lichaamsgewicht resulteerde in een kleinere lichaamsgrootte van met quercetine behandelde larven (Figuur 2B). Er werd een opmerkelijke vermindering waargenomen in de voedingssnelheid van met quercetine gevoede larven in vergelijking met de con…

Discussion

Laboratoriumbioassays zijn nuttig om de uitkomsten te voorspellen en vergelijkende toxiciteitsgegevens te produceren voor verschillende verbindingen in een korte periode tegen een redelijke prijs. De voedingsbioassay helpt bij het interpreteren van de interacties tussen insect-insecticide en insect-plant-insecticiden. Het is een efficiënte methode voor het meten van de toxiciteit van een verscheidenheid aan stoffen die het proces van het vaststellen van de dodelijke dosis 50 (LD50), de letale concentratie 50 …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

SM, YP en VN erkennen de fellowship die is toegekend door de University Grants Commission, Government of India, New Delhi. RJ erkent de Council of Scientific and Industrial Research (CSIR), India, en CSIR-National Chemical Laboratory, Pune, India, voor financiële steun in het kader van projectcodes MLP036626, MLP101526 en YSA000826.

Materials

Agar Agar Himedia RM666 Solidifying agent
Ascorbic acid Himedia CMS1014 Vitamin C source
Bengal Gram NA NA Protein and carbohydrate source
Casein Sigma C-5890 Protein source
Cholesterol Sisco Research Laboratories 34811 Fatty acid source
Choline Chloride Himedia GRM6824 Ammonium salt
DMSO Sigma 67-68-5 Solvent
GraphPad Prism v8.0 https://www.graphpad.com/guides/prism/latest/user-guide/using_choosing_an_analysis.htm
Methyl Paraben Himedia GRM1291 Antifungal agent
Multivitamin capsule GalaxoSmithKline NA Vitamin source
Quercetin Sigma Q4951-10G Phytochemical
Sorbic Acid Himedia M1880 Antimicrobail agent
Streptomycin Himedia CMS220 Antibiotic
Vitamin E capsule Nukind Healthcare NA Vitamin E source
Yeast Extract Himedia RM027 Amino acid source

References

  1. Popp, J., Pető, K., Nagy, J. Pesticide productivity and food security. A review. Agronomy for Sustainable Development. 33 (1), 243-255 (2013).
  2. da Silva, F. R., et al. Comparative toxicity of Helicoverpa armigera and Helicoverpa zea (Lepidoptera: Noctuidae) to selected insecticides. Insects. 11 (7), 431 (2020).
  3. Usman, A., Ali, M. I., Shah, M., e Amin, F., Sarwar, J. Comparative efficacy of indigenous plant extracts and a synthetic insecticide for the management of tomato fruit worm (Helicoverpa armigera Hub.) and their effect on natural enemies in tomato crop. Pure and Applied Biology. 7 (3), 1014-1020 (2018).
  4. Honnakerappa, S. B., Udikeri, S. S. Abundance of Helicoverpa armigera (Hubner) on different host crops. Journal of Farm Science. 31, 436-439 (2018).
  5. Edosa, T. T. Review on bio-intensive management of African bollworm, Helicoverpa armigera (Hub.): Botanicals and semiochemicals perspectives. African Journal of Agricultural Research. 14 (1), 1-9 (2019).
  6. Zhou, Y., et al. Migratory Helicoverpa armigera (Lepidoptera: Noctuidae) exhibits marked seasonal variation in morphology and fitness. Environmental Entomology. 48 (3), 755-763 (2019).
  7. Souto, A. L., et al. Plant-derived pesticides as an alternative to pest management and sustainable agricultural production: Prospects, applications and challenges. Molecules. 26 (16), 4835 (2021).
  8. Özkara, A., Akyıl, D., Konuk, M. Pesticides, environmental pollution, and health. Environmental Health Risk-Hazardous Factors to Living Species. , (2016).
  9. Alengebawy, A., Abdelkhalek, S. T., Qureshi, S. R., Wang, M. -. Q. Heavy metals and pesticides toxicity in agricultural soil and plants: Ecological risks and human health implications. Toxics. 9 (3), 42 (2021).
  10. Tlak Gajger, I., Dar, S. A. Plant allelochemicals as sources of insecticides. Insects. 12 (3), 189 (2021).
  11. Riddick, E. W. Potential of quercetin to reduce herbivory without disrupting natural enemies and pollinators. Agriculture. 11 (6), 476 (2021).
  12. Gao, Y. -. L., et al. The effect of quercetin on the growth, development, nutrition utilization, and detoxification enzymes in Hyphantria cunea Drury (Lepidoptera: Arctiidae). Forests. 13 (11), 1945 (2022).
  13. Durmuşoğlu, E., Hatipoğlu, A., Gürkan, M. O., Moores, G. Comparison of different bioassay methods for determining insecticide resistance in European Grapevine Moth, Lobesia botrana (Denis & Schiffermüller) (Lepidoptera: Tortricidae). Turkish Journal of Entomology. 39 (3), 271-276 (2015).
  14. Paramasivam, M., Selvi, C. Laboratory bioassay methods to assess the insecticide toxicity against insect pests-A review. Journal of Entomology and Zoology Studies. 5 (3), 1441-1445 (2017).
  15. Clark, E. L., Isitt, R., Plettner, E., Fields, P. G., Huber, D. P. W. An inexpensive feeding bioassay technique for stored-product insects. Journal of Economic Entomology. 107 (1), 455-461 (2014).
  16. Waldbauer, G. P., Cohen, R. W., Friedman, S. An improved procedure for laboratory rearing of the corn earworm, Heliothis zea (Lepidoptera: Noctuidae). The Great Lakes Entomologist. 17 (2), 10 (2017).
  17. Friesen, K., Berkebile, D. R., Zhu, J. J., Taylor, D. B. Laboratory rearing of stable flies and other muscoid Diptera. JoVE. (138), e57341 (2018).
  18. Zheng, M. -. L., Zhang, D. -. J., Damiens, D. D., Lees, R. S., Gilles, J. R. L. Standard operating procedures for standardized mass rearing of the dengue and chikungunya vectors Aedes aegypti and Aedes albopictus (Diptera: Culicidae)-II-Egg storage and hatching. Parasites & Vectors. 8, 1-7 (2015).
  19. Nagarkatti, S., Prakash, S. Rearing Heliothis armigera (Hubn.) on an artificial diet. Technical Bulletin Commonwealth Institute of Biological Control. , (1974).
  20. Adhav, A. S., Kokane, S. R., Joshi, R. S. Functional characterization of Helicoverpa armigera trehalase and investigation of physiological effects caused due to its inhibition by Validamycin A formulation. International Journal of Biological Macromolecules. 112, 638-647 (2018).
  21. Abbasi, B. H., et al. Rearing the cotton bollworm, Helicoverpa armigera, on a tapioca-based artificial diet. Journal of Insect Science. 7 (1), 35 (2007).
  22. Armes, N. J., Jadhav, D. R., Bond, G. S., King, A. B. S. Insecticide resistance in Helicoverpa armigera in South India. Pesticide Science. 34 (4), 355-364 (1992).
  23. Waldbauer, G. P. The consumption and utilization of food by insects. Advances in Insect Physiology. 5, 229-288 (1968).
  24. Carpinella, M. C., Defago, M. T., Valladares, G., Palacios, S. M. Antifeedant and insecticide properties of a limonoid from Melia azedarach (Meliaceae) with potential use for pest management. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 51 (2), 369-374 (2003).
  25. Diaz Napal, G. N., Palacios, S. M. Bioinsecticidal effect of the flavonoids pinocembrin and quercetin against Spodoptera frugiperda. Journal of Pest Science. 88, 629-635 (2015).
  26. ffrench-Constant, R. H., Roush, R. T. Resistance detection and documentation: the relative roles of pesticidal and biochemical assays. Pesticide Resistance in Arthropods. , 4-38 (1990).
  27. Gikonyo, N. K., Mwangi, R. W., Midiwo, J. O. Toxicity and growth-inhibitory activity of Polygonum senegalense (Meissn.) surface exudate against Aedes aegypti larvae. International Journal of Tropical Insect Science. 18 (3), 229-234 (1998).
  28. Sharma, R., Sohal, S. K. Bioefficacy of quercetin against melon fruit fly. Bulletin of Insectology. 66 (1), 79-83 (2013).
  29. Després, L., David, J. -. P., Gallet, C. The evolutionary ecology of insect resistance to plant chemicals. Trends in Ecology & Evolution. 22 (6), 298-307 (2007).
  30. Shi, G., Kang, Z., Ren, F., Zhou, Y., Guo, P. Effects of quercetin on the growth and expression of immune-pathway-related genes in silkworm (Lepidoptera: Bombycidae). Journal of Insect Science. 20 (6), 23 (2020).
  31. Selin-Rani, S., et al. Toxicity and physiological effect of quercetin on generalist herbivore, Spodoptera litura Fab. and a non-target earthworm Eisenia fetida Savigny. Chemosphere. 165, 257-267 (2016).
  32. Ateyyat, M., Abu-Romman, S., Abu-Darwish, M., Ghabeish, I. Impact of flavonoids against woolly apple aphid, Eriosoma lanigerum (Hausmann) and its sole parasitoid, Aphelinus mali (Hald). Journal of Agricultural Science. 4 (2), 227 (2012).
  33. Brito-Sierra, C. A., Kaur, J., Hill, C. A. Protocols for testing the toxicity of novel insecticidal chemistries to mosquitoes. JoVE. (144), e57768 (2019).
  34. Mitchell, C., Brennan, R. M., Graham, J., Karley, A. J. Plant defense against herbivorous pests: exploiting resistance and tolerance traits for sustainable crop protection. Frontiers in Plant Science. 7, 1132 (2016).
check_url/65278?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Mohite, S. D., Patil, Y. P., Nichit, V. J., Joshi, R. S. Developing a Feeding Assay System for Evaluating the Insecticidal Effect of Phytochemicals on Helicoverpa armigera. J. Vis. Exp. (195), e65278, doi:10.3791/65278 (2023).

View Video