Summary

Entwicklung eines Fütterungs-Assay-Systems zur Bewertung der insektiziden Wirkung von sekundären Pflanzenstoffen auf Helicoverpa armigera

Published: May 26, 2023
doi:

Summary

Dieses Protokoll beschreibt den obligatorischen Fütterungstest, um die potenziell toxische Wirkung eines sekundären Pflanzenstoffs auf die Larven der Lepidoptera-Insekten zu bewerten. Dabei handelt es sich um einen hochgradig skalierbaren Insekten-Bioassay, mit dem sich die subletale und letale Dosis, die abschreckende Wirkung und die physiologische Wirkung leicht optimieren lassen. Dies könnte für das Screening umweltfreundlicher Insektizide verwendet werden.

Abstract

Helicoverpa armigera, ein Lepidoptera-Insekt, ist ein polyphager Schädling mit weltweiter Verbreitung. Dieses pflanzenfressende Insekt ist eine Bedrohung für Pflanzen und die landwirtschaftliche Produktivität. Als Reaktion darauf produzieren Pflanzen mehrere sekundäre Pflanzenstoffe, die sich negativ auf das Wachstum und Überleben des Insekts auswirken. Dieses Protokoll demonstriert eine obligatorische Fütterungstestmethode, um die Wirkung eines sekundären Pflanzenstoffs (Quercetin) auf das Wachstum, die Entwicklung und das Überleben von Insekten zu bewerten. Unter kontrollierten Bedingungen wurden die Neugeborenen bis zum zweiten Instar mit einer vordefinierten künstlichen Diät gehalten. Diese Larven durften sich 10 Tage lang von einer Kontroll- und Quercetin-haltigen Kunstnahrung ernähren. Das Körpergewicht, das Entwicklungsstadium, das Fraßgewicht und die Sterblichkeit der Insekten wurden an abwechselnden Tagen aufgezeichnet. Die Veränderung des Körpergewichts, der Unterschied im Fütterungsmuster und die Entwicklungsphänotypen wurden während der gesamten Testzeit bewertet. Der beschriebene obligatorische Fütterungsassay simuliert eine natürliche Art der Aufnahme und kann auf eine große Anzahl von Insekten hochskaliert werden. Es ermöglicht die Analyse der Wirkung von sekundären Pflanzenstoffen auf die Wachstumsdynamik, den Entwicklungsübergang und die allgemeine Fitness von H. armigera. Darüber hinaus kann dieser Aufbau auch verwendet werden, um Veränderungen von Ernährungsparametern und verdauungsphysiologischen Prozessen zu bewerten. Dieser Artikel enthält eine detaillierte Methodik für Fütterungs-Assay-Systeme, die in toxikologischen Studien, beim Screening von insektiziden Molekülen und zum Verständnis chemischer Effekte bei Pflanzen-Insekten-Interaktionen eingesetzt werden können.

Introduction

Die biotischen Faktoren, die die Produktivität der Pflanzen beeinflussen, sind hauptsächlich Krankheitserreger und Schädlinge. Mehrere Schadinsekten verursachen 15 % bis 35 % der landwirtschaftlichen Ernteverluste und beeinträchtigen die wirtschaftliche Nachhaltigkeit1. Insekten, die zu den Ordnungen Coleoptera, Hemiptera und Lepidoptera gehören, sind die Hauptordnungen der verheerenden Schädlinge. Die hochgradig anpassungsfähige Natur der Umwelt hat den Schmetterlingen bei der Entwicklung mehrerer Überlebensmechanismen geholfen. Unter den Schmetterlingsinsekten kann sich Helicoverpa armigera (Baumwollkapselwurm) von etwa 180 verschiedenen Nutzpflanzen ernähren und deren Fortpflanzungsgewebe erheblich schädigen2. Weltweit hat der Befall mit H. armigera zu einem Verlust von rund 5 Milliarden US-Dollar geführt3. Baumwolle, Kichererbsen, Taubenerbsen, Tomaten, Sonnenblumen und andere Nutzpflanzen sind Wirte für H. armigera. Es vervollständigt seinen Lebenszyklus an verschiedenen Teilen der Wirtspflanze. Die Eier der Mottenweibchen schlüpfen auf den Blättern, gefolgt von ihrer Ernährung im vegetativen Gewebe während der Larvenstadien. Das Larvenstadium ist aufgrund seiner gefräßigen und sehr anpassungsfähigen Natur am zerstörerischsten 4,5. H. armigera zeigt eine globale Verbreitung und ein Vordringen in neue Territorien aufgrund seiner bemerkenswerten Eigenschaften wie Polyphagie, ausgezeichnete Wanderfähigkeiten, höhere Fruchtbarkeit, starke Diapause und das Aufkommen von Resistenzen gegen bestehende Insektenbekämpfungsstrategien6.

Verschiedene chemische Moleküle aus Terpenen, Flavonoiden, Alkaloiden, Polyphenolen, cyanogenen Glucosiden und vielen anderen werden häufig zur Bekämpfung des H. armigera-Befalls verwendet7. Die häufige Anwendung chemischer Moleküle hat jedoch aufgrund der Aufnahme ihrer Rückstände nachteilige Auswirkungen auf die Umwelt und die menschliche Gesundheit. Außerdem wirken sie sich nachteilig auf verschiedene Schädlingsfresser aus, was zu einem ökologischen Ungleichgewicht führt 8,9. Daher besteht die Notwendigkeit, sichere und umweltfreundliche Optionen für chemische Moleküle zur Schädlingsbekämpfung zu untersuchen.

Natürliche insektizide Moleküle, die von Pflanzen produziert werden (sekundäre Pflanzenstoffe), können als vielversprechende Alternative zu chemischen Pflanzenschutzmitteln eingesetzt werden. Zu diesen sekundären Pflanzenstoffen gehören verschiedene Sekundärmetaboliten, die zu den Klassen Alkaloide, Terpenoide und Phenole gehören 7,10. Quercetin ist eines der am häufigsten vorkommenden Flavonoide (phenolische Verbindung), die in verschiedenen Getreidesorten, Gemüse, Obst und Blättern enthalten sind. Es zeigt eine abschreckende und insektizide Wirkung gegen Insekten; Es ist auch nicht schädlich für natürliche Feinde von Schädlingen11,12. Somit demonstriert dieses Protokoll den Fütterungsassay mit Quercetin, um seine toxische Wirkung auf H. armigera zu bewerten.

Es wurden verschiedene Bioassay-Methoden entwickelt, um die Wirkung natürlicher und synthetischer Moleküle auf die Nahrungs-, Wachstums-, Entwicklungs- und Verhaltensmuster eines Insekts zu bewerten13. Zu den häufig verwendeten Methoden gehören der Blattscheiben-Assay, der Choice-Fütterungs-Assay, der Tröpfchen-Fütterungs-Assay, der Kontakt-Assay, der Diät-Covering-Assay und der obligate Fütterungs-Assay13,14. Diese Methoden werden danach klassifiziert, wie Pestizide auf Insekten angewendet werden. Der obligate Fütterungstest ist eine der am häufigsten verwendeten, empfindlichsten, einfachen und anpassungsfähigsten Methoden, um wahrscheinliche Insektizide und ihre tödliche Dosis zu testen14. In einem obligaten Fütterungsassay wird das interessierende Molekül mit einer künstlichen Nahrung vermischt. Dies sorgt für Konsistenz und Kontrolle über die Zusammensetzung des Futters und führt zu robusten und reproduzierbaren Ergebnissen. Wichtige Variablen, die die Fütterungstests beeinflussen, sind das Entwicklungsstadium des Insekts, die Wahl des Insektizids, Umweltfaktoren und die Probengröße. Die Dauer des Assays, das Intervall zwischen zwei Datenaufzeichnungen, die Häufigkeit und Menge der gefütterten Nahrung, die Gesundheit der Insekten und die Handhabungsfähigkeit der Bediener können das Ergebnis der Fütterungsassays ebenfalls beeinflussen14,15.

Ziel dieser Studie ist es, den obligatorischen Fütterungsassay zu demonstrieren, um die Wirkung von Quercetin auf das Überleben und die Fitness von H. armigera zu bewerten. Die Bewertung verschiedener Parameter, wie z.B. das Körpergewicht der Insekten, die Sterblichkeitsrate und Entwicklungsstörungen, wird Einblicke in die insektizide Wirkung von Quercetin geben. In der Zwischenzeit wird die Messung von Ernährungsparametern, einschließlich der Effizienz der Umwandlung von aufgenommener Nahrung (ECI), der Effizienz der Umwandlung von verdauter Nahrung (ECD) und der ungefähren Verdaulichkeit (AD), die antifeedativen Eigenschaften von Quercetin hervorheben.

Protocol

Die Larven von H. armigera wurden vom ICAR-National Bureau of Agricultural Insect Resources (NBAIR) in Bangalore, Indien, erworben. Für die vorliegende Studie wurden insgesamt 21 Second-Instar-Larven verwendet. 1. Zubereitung einer künstlichen Diät auf Kichererbsenbasis HINWEIS: Eine Liste der Zutaten, die für die Zubereitung einer künstlichen Diät erforderlich sind, ist in Tabelle 1 aufgeführt. Alle Frakti…

Representative Results

Insektenlarven, die mit einer Diät gefüttert wurden, die 1.000 ppm Quercetin enthielt, zeigten eine signifikante Abnahme des Körpergewichts von ~57% im Vergleich zur Kontrollgruppe (Abbildung 2A). Die Verringerung des Körpergewichts führte zu einer reduzierten Körpergröße der mit Quercetin behandelten Larven (Abbildung 2B). Es wurde eine deutliche Verringerung der Fressrate der mit Quercetin gefütterten Larven im Vergleich zur Kontrollgruppe beobachtet …

Discussion

Labor-Bioassays sind nützlich, um Ergebnisse vorherzusagen und vergleichende Toxizitätsdaten für mehrere Verbindungen in kurzer Zeit zu vertretbaren Kosten zu erstellen. Der Fütterungsbioassay hilft bei der Interpretation der Wechselwirkungen zwischen Insekten-Insektizid und Insekten-Pflanze-Insektiziden. Es handelt sich um eine effiziente Methode zur Messung der Toxizität einer Vielzahl von Substanzen, die den Prozess der Bestimmung der letalen Dosis 50 (LD50), der letalen Konzentration 50 (LC50</su…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

SM, YP und VN würdigen das Stipendium, das von der University Grants Commission, Government of India, New Delhi, vergeben wird. RJ dankt dem Council of Scientific and Industrial Research (CSIR), Indien, und dem CSIR-National Chemical Laboratory, Pune, Indien, für die finanzielle Unterstützung im Rahmen der Projektcodes MLP036626, MLP101526 und YSA000826.

Materials

Agar Agar Himedia RM666 Solidifying agent
Ascorbic acid Himedia CMS1014 Vitamin C source
Bengal Gram NA NA Protein and carbohydrate source
Casein Sigma C-5890 Protein source
Cholesterol Sisco Research Laboratories 34811 Fatty acid source
Choline Chloride Himedia GRM6824 Ammonium salt
DMSO Sigma 67-68-5 Solvent
GraphPad Prism v8.0 https://www.graphpad.com/guides/prism/latest/user-guide/using_choosing_an_analysis.htm
Methyl Paraben Himedia GRM1291 Antifungal agent
Multivitamin capsule GalaxoSmithKline NA Vitamin source
Quercetin Sigma Q4951-10G Phytochemical
Sorbic Acid Himedia M1880 Antimicrobail agent
Streptomycin Himedia CMS220 Antibiotic
Vitamin E capsule Nukind Healthcare NA Vitamin E source
Yeast Extract Himedia RM027 Amino acid source

References

  1. Popp, J., Pető, K., Nagy, J. Pesticide productivity and food security. A review. Agronomy for Sustainable Development. 33 (1), 243-255 (2013).
  2. da Silva, F. R., et al. Comparative toxicity of Helicoverpa armigera and Helicoverpa zea (Lepidoptera: Noctuidae) to selected insecticides. Insects. 11 (7), 431 (2020).
  3. Usman, A., Ali, M. I., Shah, M., e Amin, F., Sarwar, J. Comparative efficacy of indigenous plant extracts and a synthetic insecticide for the management of tomato fruit worm (Helicoverpa armigera Hub.) and their effect on natural enemies in tomato crop. Pure and Applied Biology. 7 (3), 1014-1020 (2018).
  4. Honnakerappa, S. B., Udikeri, S. S. Abundance of Helicoverpa armigera (Hubner) on different host crops. Journal of Farm Science. 31, 436-439 (2018).
  5. Edosa, T. T. Review on bio-intensive management of African bollworm, Helicoverpa armigera (Hub.): Botanicals and semiochemicals perspectives. African Journal of Agricultural Research. 14 (1), 1-9 (2019).
  6. Zhou, Y., et al. Migratory Helicoverpa armigera (Lepidoptera: Noctuidae) exhibits marked seasonal variation in morphology and fitness. Environmental Entomology. 48 (3), 755-763 (2019).
  7. Souto, A. L., et al. Plant-derived pesticides as an alternative to pest management and sustainable agricultural production: Prospects, applications and challenges. Molecules. 26 (16), 4835 (2021).
  8. Özkara, A., Akyıl, D., Konuk, M. Pesticides, environmental pollution, and health. Environmental Health Risk-Hazardous Factors to Living Species. , (2016).
  9. Alengebawy, A., Abdelkhalek, S. T., Qureshi, S. R., Wang, M. -. Q. Heavy metals and pesticides toxicity in agricultural soil and plants: Ecological risks and human health implications. Toxics. 9 (3), 42 (2021).
  10. Tlak Gajger, I., Dar, S. A. Plant allelochemicals as sources of insecticides. Insects. 12 (3), 189 (2021).
  11. Riddick, E. W. Potential of quercetin to reduce herbivory without disrupting natural enemies and pollinators. Agriculture. 11 (6), 476 (2021).
  12. Gao, Y. -. L., et al. The effect of quercetin on the growth, development, nutrition utilization, and detoxification enzymes in Hyphantria cunea Drury (Lepidoptera: Arctiidae). Forests. 13 (11), 1945 (2022).
  13. Durmuşoğlu, E., Hatipoğlu, A., Gürkan, M. O., Moores, G. Comparison of different bioassay methods for determining insecticide resistance in European Grapevine Moth, Lobesia botrana (Denis & Schiffermüller) (Lepidoptera: Tortricidae). Turkish Journal of Entomology. 39 (3), 271-276 (2015).
  14. Paramasivam, M., Selvi, C. Laboratory bioassay methods to assess the insecticide toxicity against insect pests-A review. Journal of Entomology and Zoology Studies. 5 (3), 1441-1445 (2017).
  15. Clark, E. L., Isitt, R., Plettner, E., Fields, P. G., Huber, D. P. W. An inexpensive feeding bioassay technique for stored-product insects. Journal of Economic Entomology. 107 (1), 455-461 (2014).
  16. Waldbauer, G. P., Cohen, R. W., Friedman, S. An improved procedure for laboratory rearing of the corn earworm, Heliothis zea (Lepidoptera: Noctuidae). The Great Lakes Entomologist. 17 (2), 10 (2017).
  17. Friesen, K., Berkebile, D. R., Zhu, J. J., Taylor, D. B. Laboratory rearing of stable flies and other muscoid Diptera. JoVE. (138), e57341 (2018).
  18. Zheng, M. -. L., Zhang, D. -. J., Damiens, D. D., Lees, R. S., Gilles, J. R. L. Standard operating procedures for standardized mass rearing of the dengue and chikungunya vectors Aedes aegypti and Aedes albopictus (Diptera: Culicidae)-II-Egg storage and hatching. Parasites & Vectors. 8, 1-7 (2015).
  19. Nagarkatti, S., Prakash, S. Rearing Heliothis armigera (Hubn.) on an artificial diet. Technical Bulletin Commonwealth Institute of Biological Control. , (1974).
  20. Adhav, A. S., Kokane, S. R., Joshi, R. S. Functional characterization of Helicoverpa armigera trehalase and investigation of physiological effects caused due to its inhibition by Validamycin A formulation. International Journal of Biological Macromolecules. 112, 638-647 (2018).
  21. Abbasi, B. H., et al. Rearing the cotton bollworm, Helicoverpa armigera, on a tapioca-based artificial diet. Journal of Insect Science. 7 (1), 35 (2007).
  22. Armes, N. J., Jadhav, D. R., Bond, G. S., King, A. B. S. Insecticide resistance in Helicoverpa armigera in South India. Pesticide Science. 34 (4), 355-364 (1992).
  23. Waldbauer, G. P. The consumption and utilization of food by insects. Advances in Insect Physiology. 5, 229-288 (1968).
  24. Carpinella, M. C., Defago, M. T., Valladares, G., Palacios, S. M. Antifeedant and insecticide properties of a limonoid from Melia azedarach (Meliaceae) with potential use for pest management. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 51 (2), 369-374 (2003).
  25. Diaz Napal, G. N., Palacios, S. M. Bioinsecticidal effect of the flavonoids pinocembrin and quercetin against Spodoptera frugiperda. Journal of Pest Science. 88, 629-635 (2015).
  26. ffrench-Constant, R. H., Roush, R. T. Resistance detection and documentation: the relative roles of pesticidal and biochemical assays. Pesticide Resistance in Arthropods. , 4-38 (1990).
  27. Gikonyo, N. K., Mwangi, R. W., Midiwo, J. O. Toxicity and growth-inhibitory activity of Polygonum senegalense (Meissn.) surface exudate against Aedes aegypti larvae. International Journal of Tropical Insect Science. 18 (3), 229-234 (1998).
  28. Sharma, R., Sohal, S. K. Bioefficacy of quercetin against melon fruit fly. Bulletin of Insectology. 66 (1), 79-83 (2013).
  29. Després, L., David, J. -. P., Gallet, C. The evolutionary ecology of insect resistance to plant chemicals. Trends in Ecology & Evolution. 22 (6), 298-307 (2007).
  30. Shi, G., Kang, Z., Ren, F., Zhou, Y., Guo, P. Effects of quercetin on the growth and expression of immune-pathway-related genes in silkworm (Lepidoptera: Bombycidae). Journal of Insect Science. 20 (6), 23 (2020).
  31. Selin-Rani, S., et al. Toxicity and physiological effect of quercetin on generalist herbivore, Spodoptera litura Fab. and a non-target earthworm Eisenia fetida Savigny. Chemosphere. 165, 257-267 (2016).
  32. Ateyyat, M., Abu-Romman, S., Abu-Darwish, M., Ghabeish, I. Impact of flavonoids against woolly apple aphid, Eriosoma lanigerum (Hausmann) and its sole parasitoid, Aphelinus mali (Hald). Journal of Agricultural Science. 4 (2), 227 (2012).
  33. Brito-Sierra, C. A., Kaur, J., Hill, C. A. Protocols for testing the toxicity of novel insecticidal chemistries to mosquitoes. JoVE. (144), e57768 (2019).
  34. Mitchell, C., Brennan, R. M., Graham, J., Karley, A. J. Plant defense against herbivorous pests: exploiting resistance and tolerance traits for sustainable crop protection. Frontiers in Plant Science. 7, 1132 (2016).
check_url/65278?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Mohite, S. D., Patil, Y. P., Nichit, V. J., Joshi, R. S. Developing a Feeding Assay System for Evaluating the Insecticidal Effect of Phytochemicals on Helicoverpa armigera. J. Vis. Exp. (195), e65278, doi:10.3791/65278 (2023).

View Video