Summary

Elektrisk cell-substratavkänning för realtidsutvärdering av metallorganiska toxikologiska ramverk

Published: May 26, 2023
doi:

Summary

Följande studie utvärderar den toxikologiska profilen för ett utvalt metallorganiskt ramverk med hjälp av elektrisk cell-substrat impedansavkänning (ECIS), en screeningteknik med hög genomströmning i realtid.

Abstract

Metallorganiska ramverk (MOFs) är hybrider som bildas genom samordning av metalljoner och organiska bindare i organiska lösningsmedel. Implementeringen av MOFs i biomedicinska och industriella tillämpningar har lett till oro för deras säkerhet. Häri utvärderades profilen för en utvald MOF, ett zeolitiskt imidasolramverk, vid exponering för humana lungepitelceller. Plattformen för utvärdering var en realtidsteknik (dvs. elektrisk cell-substrat impedansavkänning [ECIS]). Denna studie identifierar och diskuterar några av de skadliga effekterna av den valda MOF på de exponerade cellerna. Dessutom visar denna studie fördelarna med att använda realtidsmetoden jämfört med andra biokemiska analyser för omfattande cellutvärderingar. Studiens slutsats är att observerade förändringar i cellbeteende kan antyda möjlig toxicitet inducerad vid exponering för MOFs med olika fysikalisk-kemiska egenskaper och doseringen av de ramverk som används. Genom att förstå förändringar i cellbeteende förutser man möjligheten att förbättra safe-by-design-strategier för MOFs som ska användas för biomedicinska tillämpningar genom att specifikt skräddarsy deras fysikalisk-kemiska egenskaper.

Introduction

Metallorganiska ramverk (MOFs) är hybrider som bildas genom kombinationen av metalljoner och organiska länkar 1,2 i organiska lösningsmedel. På grund av mångfalden av sådana kombinationer har MOFs strukturell mångfald3, avstämbar porositet, hög termisk stabilitet och höga ytytor 4,5. Sådana egenskaper gör dem till attraktiva kandidater i en mängd olika tillämpningar, från gaslagring 6,7 till katalys8,9 och från kontrastmedel 10,11 till läkemedelsleveransenheter 12,13. Implementeringen av MOFs i sådana applikationer har dock väckt farhågor om deras säkerhet för både användarna och miljön. Preliminära studier har till exempel visat att cellulär funktion och tillväxt förändras när celler exponeras för metalljoner eller länkar som används för MOF-syntes 1,14,15. Till exempel visade Tamames-Tabar et al. att ZIF-8 MOF, en Zn-baserad MOF, ledde till fler cellulära förändringar i en human livmoderhalscancercellinje (HeLa) och en musmakrofagcellinje (J774) i förhållande till Zr-baserade och Fe-baserade MOFs. Sådana effekter berodde förmodligen på metallkomponenten i ZIF-8 (dvs. Zn), som potentiellt kan inducera cellapoptos vid ramverkssönderfall och Zn-jonfrisättning1. På liknande sätt visade Gandara-Loe et al. att HKUST-1, en Cu-baserad MOF, orsakade den högsta minskningen av musretinoblastomcellviabilitet när den användes i koncentrationer på 10 μg/ml eller mer. Detta berodde förmodligen på att Cu-metalljonen inkorporerades under syntesen av detta ramverk, som, när den väl frigjordes, kunde inducera oxidativ stress i de exponerade cellerna15.

Dessutom visade analyser att exponering för MOFs med olika fysikalisk-kemiska egenskaper kunde leda till varierande respons hos exponerade celler. Till exempel visade Wagner et al. att ZIF-8 och MIL-160 (ett Al-baserat ramverk), som användes vid exponering av en odödliggjord human bronkialepitelcell, ledde till cellulära svar beroende på ramverkets fysikalisk-kemiska egenskaper, nämligen hydrofobicitet, storlek och strukturella egenskaper16. Som komplement visade Chen et al. att en koncentration av 160 μg/ml MIL-100(Fe) som exponerades för humana normala leverceller (HL-7702) orsakade den största förlusten av cellulär viabilitet, förmodligen på grund av metallkomponenten i detta specifika ramverk (dvs. Fe17).

Även om dessa studier kategoriserar MOFs skadliga effekter på cellulära system baserat på deras fysikalisk-kemiska egenskaper och exponeringskoncentrationer, vilket ger upphov till potentiella problem med ramimplementering, särskilt inom biomedicinska områden, är de flesta av dessa utvärderingar baserade på kolorimetriska analyser vid en tidpunkt. Till exempel visades det att när (3-(4,5-dimetyltiazol-2-yl)-2,5-difenyltetrazoliumbromid) tetrazolium (MTT) och vattenlösligt tetrazoliumsalt (WST-1) användes kunde dessa biokemiska reagenser leda till falskt positiva resultat vid deras interaktioner med de partiklar som cellerna också exponerades för18. Tetrazoliumsaltet och de neutrala röda reagenserna visade sig ha en hög adsorption eller bindningsaffinitet på partiklarnas ytor, vilket resulterade i signalinterferens19. För andra typer av analyser, såsom flödescytometri, som tidigare visat sig användas för att bedöma förändringar i celler som exponerats för MOFs20,21, visade det sig att stora problem måste kringgås om en genomförbar analys av partiklars skadliga effekter ska övervägas. I synnerhet måste detektionsområden för partiklarnas storlek, särskilt i blandade populationer som de som erbjuds av MOFs eller referenser till de partiklar som används för kalibrering före cellulära förändringar, tas upp22. Det visade sig också att färgämnet som användes vid cellmärkning för sådana cytometrianalyser också kunde störa de nanopartiklar som cellernautsattes för.

Målet med denna studie var att använda en utvärderingsanalys i realtid med hög genomströmning för att bedöma förändringar i cellbeteende vid exponering för en utvald MOF. Utvärderingar i realtid kan bidra till att ge insikter om tidsberoende effekter, i förhållande till exponeringsfönstren16. Vidare ger de information om förändringar i cell-substratinteraktioner, cellmorfologi och cell-cellinteraktioner, samt hur sådana förändringar beror på de fysikalisk-kemiska egenskaperna hos materialen av intresse respektive exponeringsgånger24,25.

För att demonstrera giltigheten och tillämpligheten av det föreslagna tillvägagångssättet användes humana bronkialepitelceller (BEAS-2B), ZIF-8 (ett hydrofobt ramverk av zeolitisk imidazolat16) och elektrisk cell-substratimpedansavkänning (ECIS). BEAS-2B-celler utgör en modell för lungexponering 26 och har tidigare använts för att utvärdera förändringar vid exponering av celler för nanolera och deras termiskt nedbrutna biprodukter26,27,28, samt för att bedöma toxiciteten hos nanomaterial, såsom enkelväggiga kolnanorör (SWCNT)18. Dessutom har sådana celler använts i mer än 30 år som modell för lungepitelfunktion29. ZIF-8 valdes på grund av dess breda implementering i katalys30 och som kontrastmedel 31 för bioimaging och läkemedelstillförsel32, och därmed för den utökade potentialen för lungexponering under sådana applikationer. Slutligen har ECIS, den icke-invasiva realtidstekniken, tidigare använts för att utvärdera förändringar i cellvidhäftning, proliferation, motilitet och morfologi 16,26 som ett resultat av en mängd olika interaktioner mellan analyter (både material och läkemedel) och exponerade celler i realtid 16,18,28. ECIS använder en växelström (AC) för att mäta impedansen hos celler som är immobiliserade på guldelektroder, där impedansförändringarna ger insikter om förändringar i resistans och kapacitans vid cell-guldsubstratgränssnittet, barriärfunktion som induceras av cell-cellinteraktioner och täckning över cellskiktet av sådana guldelektroder33,34. Genom att använda ECIS kan kvantitativa mätningar med nanoupplösning på ett icke-invasivt sätt i realtid26,34.

Denna studie bedömer och jämför enkelheten och lättheten att utvärdera MOF-inducerade förändringar i cellulärt beteende i realtid med enpunktsanalysutvärderingar. En sådan studie skulle kunna extrapoleras ytterligare för att utvärdera cellprofiler som svar på exponering för andra partiklar av intresse, vilket skulle möjliggöra testning av partiklar med säker design och därefter hjälpa till med genomförandet. Dessutom kan denna studie komplettera genetiska och cellulära analyser som är enpunktsutvärderingar. Detta skulle kunna leda till en mer informerad analys av partiklarnas skadliga effekter på den cellulära populationen och skulle kunna användas för att screena sådana partiklars toxicitet på ett sätt med hög genomströmning16,35,36.

Protocol

1. ZIF-8-syntes I det här exemplet använder du ett massförhållande på 1:10:100 (metall:länkare:lösningsmedel) för att syntetisera ZIF-8. För detta, mät upp zinknitrathexahydrat och registrera mätningen. Använd exemplet på massförhållande för att beräkna den mängd som behövs för länkaren, 2-metylimidazol och lösningsmedlet (dvs. metanol). Placera zinknitrathexahydratet och linkern i två olika glasflaskor. Tillsätt hälften av den beräknade mängden metanol till…

Representative Results

Med hjälp av en vanlig in vitro-modellcellinje39 (BEAS-2B) syftade denna studie till att visa genomförbarheten och tillämpligheten av ECIS för att bedöma förändringar i cellbeteende vid exponering för en laboratoriesyntetiserad MOF. Bedömningen av dessa förändringar kompletterades med analys genom konventionella kolorimetriska analyser. Ramverkets fysikalisk-kemiska egenskaper utvärderades först för att säkerställa reproducerbarheten av de anvä…

Discussion

Tidigare analyser visade att ECIS kunde användas för att bedöma beteendet hos celler som exponerats för analyter (dvs. kolnanorör35, läkemedel43 eller nanoleror16). Dessutom använde Stueckle et al. ECIS för att utvärdera toxiciteten hos BEAS-2B-celler som exponerats för nanoleror och deras biprodukter och fann att cellulärt beteende och bindning var beroende av de fysikalisk-kemiska egenskaperna hos sådana material42</su…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete finansierades delvis av National Institute of General Medical Sciences (NIGMS) T32-program (T32 GM133369) och National Science Foundation (NSF 1454230). Dessutom erkänns WVU Shared Research Facilities och Applied Biophysics hjälp och stöd.

Materials

 4-[3-(4-idophenyl)-2-(4-nitrophenyl)-2H-5-tetrazolio]-1,3-benzene disulfonate (WST-1 assay)  Roche 5015944001
0.25% Trypsin-EDTA (1x) Gibco 25255-056
100 mm plates Corning 430167
1300 Series A2 biofume hood Thermo Scientific 323TS
2510 Branson bath sonicator Process Equipment & Supply, Inc.  251OR-DTH
2-methylimidazole, 97% Alfa Aesar 693-98-1
5 mL sterile microtube Argos Technologies T2076S-CA
50 mL  tubes  Falcon 352098
96W10idf well plates Applied Biophysics  96W10idf PET
96-well plates Fisherbrand FB012931
Biorender Biorender N/A
Countess cell counting chamber slides Invitrogen C10283
Countess II FL automated cell counter Life Technologies C0916-186A-0303
Denton Desk V sputter and carbon coater Denton Vacuum N/A
Dimethly sulfoxide  Corning 25-950-CQC
DPBS/Modified Cytiva SH30028.02
Dulbecco's modified Eagle medium Corning 10-014-CV
ECIS-ZΘ Applied Biophysics  ABP 1129
Excel Microsoft Version 2301
Falcon tubes (15 mL) Corning 352196
Fetal bovine serum Gibco 16140-071
FLUOstar OPTIMA plate reader BMG LABTECH 413-2132
GraphPad Prism Software (9.0.0) GraphPad Software, LLC Version 9.0.0
HERAcell 150i CO2 Incubator Thermo Scientific 50116047
Hitachi S-4700 Field emission scanning electron microscope equipped with energy dispersive X-ray  Hitachi High-Technologies Corporation S4700 and EDAX TEAM analysis software
ImageJ software National Institutes of Health N/A
Immortalized human bronchial epithelial cells American Type Culture Collection CRL-9609
Isotemp freezer Fisher Scientific 
Methanol, 99% Fisher Chemical 67-56-1
Parafilm sealing film The Lab Depot HS234526A
Penicillin/Steptomycin Gibco 15140-122
Sorvall Legend X1R Centrifuge  Thermo Scientific 75004220
Sorvall T 6000B DU PONT  T6000B
Trypan blue, 0.4% solution in PBS MP Biomedicals, LLC 1691049
Vacuum Chamber Belart 999320237
Zinc Nitrate Hexahydrate, 98% extra pure Acros Organic 101-96-18-9

References

  1. Tamames-Tabar, C., et al. Cytotoxicity of nanoscaled metal-organic frameworks. Journal of Materials Chemistry. B. 2 (3), 262-271 (2014).
  2. Lin, W. X., et al. Low cytotoxic metal-organic frameworks as temperature-responsive drug carriers. ChemPlusChem. 81 (8), 804-810 (2016).
  3. Vasconcelos, I. B., et al. Cytotoxicity and slow release of the anti-cancer drug doxorubicin from ZIF-8. RSC Advances. 2 (25), 9437-9442 (2012).
  4. Yang, B. C., Shen, M., Liu, J. Q., Ren, F. Post-synthetic modification nanoscale metal-organic frameworks for targeted drug delivery in cancer cells. Pharmaceutical Research. 34 (11), 2440-2450 (2017).
  5. Lucena, M. A. M., et al. Application of the metal-organic framework Eu(BTC) as a luminescent marker for gunshot residues: A synthesis, characterization, and toxicity study. ACS Applied Materials & Interfaces. 9 (5), 4684-4691 (2017).
  6. Kayal, S., Sun, B. C., Chakraborty, A. Study of metal-organic framework MIL-101(Cr) for natural gas (methane) storage and compare with other MOFs (metal-organic frameworks). Energy. 91, 772-781 (2015).
  7. Gutov, O. V., et al. Water-stable zirconium-based metal-organic framework material with high-surface area and gas-storage capacities. Chemistry. 20 (39), 12389-12393 (2014).
  8. Ghorbanloo, M., Safarifard, V., Morsali, A. Heterogeneous catalysis with a coordination modulation synthesized MOF: morphology-dependent catalytic activity. New Journal of Chemistry. 41 (10), 3957-3965 (2017).
  9. Valvekens, P., et al. Base catalytic activity of alkaline earth MOFs: a (micro) spectroscopic study of active site formation by the controlled transformation of structural anions. Chemical Science. 5 (11), 4517-4524 (2014).
  10. Taylor, K. M. L., Rieter, W. J., Lin, W. B. Manganese-based nanoscale metal-organic frameworks for magnetic resonance imaging. Journal of the American Chemical Society. 130 (44), 14358-14359 (2008).
  11. Taylor-Pashow, K. M. L., Della Rocca, J., Xie, Z. G., Tran, S., Lin, W. B. Postsynthetic modifications of iron-carboxylate nanoscale metal-organic frameworks for imaging and drug delivery. Journal of the American Chemical Society. 131 (40), 14261-14263 (2009).
  12. Kundu, T., et al. Mechanical downsizing of a gadolinium(III)-based metal-organic framework for anticancer drug delivery. Chemistry. 20 (33), 10514-10518 (2014).
  13. Orellana-Tavra, C., et al. Drug delivery and controlled release from biocompatible metal-organic frameworks using mechanical amorphization. Journal of Materials Chemistry. B. 4 (47), 7697-7707 (2016).
  14. Su, H. M., et al. A highly porous medical metal-organic framework constructed from bioactive curcumin. Chemical Communications. 51 (26), 5774-5777 (2015).
  15. Gandara-Loe, J., et al. Metal-organic frameworks as drug delivery platforms for ocular therapeutics. ACS Applied Materials & Interfaces. 11 (2), 1924-1931 (2019).
  16. Wagner, A., et al. Toxicity screening of two prevalent metal organic frameworks for therapeutic use in human lung epithelial cells. International Journal of Nanomedicine. 14, 7583-7591 (2019).
  17. Chen, G. S., et al. In vitro toxicity study of a porous iron(III) metal-organic framework. Molecules. 24 (7), 1211 (2019).
  18. Eldawud, R., Wagner, A., Dong, C. B., Rojansakul, Y., Dinu, C. Z. Electronic platform for real-time multi-parametric analysis of cellular behavior post-exposure to single-walled carbon nanotubes. Biosensors & Bioelectronics. 71, 269-277 (2015).
  19. Kroll, A., Pillukat, M. H., Hahn, D., Schnekenburger, J. Current in vitro methods in nanoparticle risk assessment: Limitations and challenges. European Journal of Pharmaceutics and Biopharmaceutics. 72 (2), 370-377 (2009).
  20. Lucena, F. R. S., et al. Induction of cancer cell death by apoptosis and slow release of 5-fluoracil from metal-organic frameworks Cu-BTC. Biomedicine & Pharmacotherapy. 67 (8), 707-713 (2013).
  21. Orellana-Tavra, C., et al. Tuning the endocytosis mechanism of Zr-based metal-organic frameworks through linker functionalization. ACS Applied Materials & Interfaces. 9 (41), 35516-35525 (2017).
  22. Zucker, R. M., Ortenzio, J. N. R., Boyes, W. K. Characterization, detection, and counting of metal nanoparticles using flow cytometry. Cytometry. Part A. 89 (2), 169-183 (2016).
  23. Robson, A. L., et al. Advantages and limitations of current imaging techniques for characterizing liposome morphology. Frontiers in Pharmacology. 9, 80 (2018).
  24. Giaever, I., Keese, C. R. Micromotion of mammalian cells measured electrically. Proceedings of the National Academy of Sciences. 88 (17), 7896-7900 (1991).
  25. Wegener, J., Keese, C. R., Giaever, I. Electric cell-substrate impedance sensing (ECIS) as a noninvasive means to monitor the kinetics of cell spreading to artificial surfaces. Experimental Cell Research. 259 (1), 158-166 (2000).
  26. Wagner, A., et al. Toxicity evaluations of nanoclays and thermally degraded byproducts through spectroscopical and microscopical approaches. Biochimica et Biophysica Acta. General Subjects. 1861, 3406-3415 (2017).
  27. Wagner, A., et al. Early assessment and correlations of nanoclay’s toxicity to their physical and chemical properties. ACS Applied Materials & Interfaces. 9 (37), 32323-32335 (2017).
  28. Wagner, A., et al. Incineration of nanoclay composites leads to byproducts with reduced cellular reactivity. Scientific Reports. 8 (1), 10709 (2018).
  29. Zhao, F., Klimecki, W. T. Culture conditions profoundly impact phenotype in BEAS-2B, a human pulmonary epithelial model. Journal of Applied Toxicology. 35 (8), 945-951 (2015).
  30. Wu, S. X., Wang, W. H., Fang, Y. Z., Kong, X. J., Liu, J. H. Efficient Friedel-Crafts acylation of anisole over silicotungstic acid modified ZIF-8. Reaction Kinetics Mechanisms and Catalysis. 122, 357-367 (2017).
  31. Shu, F. P., et al. Fabrication of a hyaluronic acid conjugated metal organic framework for targeted drug delivery and magnetic resonance imaging. RSC Advances. 8 (12), 6581-6589 (2018).
  32. Shi, Z. Q., et al. FA-PEG decorated MOF nanoparticles as a targeted drug delivery system for controlled release of an autophagy inhibitor. Biomaterials Science. 6 (10), 2582-2590 (2018).
  33. Ebrahim, A. S., et al. Functional optimization of electric cell-substrate impedance sensing (ECIS) using human corneal epithelial cells. Scientific Reports. 12 (1), 14126 (2022).
  34. Szulcek, R., Bogaard, H. J., van Nieuw Amerongen, G. P. Electric cell-substrate impedance sensing for the quantification of endothelial proliferation, barrier function, and motility. Journal of Visualized Experiments. (85), e51300 (2014).
  35. Eldawud, R., et al. Carbon nanotubes physicochemical properties influence the overall cellular behavior and fate. Nanoimpact. 9, 72-84 (2018).
  36. An, Y., Jin, T. Y., Zhang, F., He, P. Electric cell-substrate impedance sensing (ECIS) for profiling cytotoxicity of cigarette smoke. Journal of Electroanalytical Chemistry. 834, 180-186 (2019).
  37. Kaur, G., Dufour, J. M. Cell lines. Spermatogenesis. 2 (1), 1-5 (2012).
  38. . Allied Biophysics Available from: https://biophysics.com (2023)
  39. Park, Y. H., Kim, D., Dai, J., Zhang, Z. Human bronchial epithelial BEAS-2B cells, an appropriate in vitro model to study heavy metals induced carcinogenesis. Toxicology and Applied Pharmacology. 287 (3), 240-245 (2015).
  40. Yang, F., et al. Morphological map of ZIF-8 crystals with five distinctive shapes: Feature of filler in mixed-matrix membranes on C3H6/C3H8 separation. Chemistry of Materials. 30 (10), 3467-3473 (2018).
  41. Rose, O. L., et al. Thin films of metal-organic framework interfaces obtained by laser evaporation. Nanomaterials. 11 (6), 1367 (2021).
  42. Stueckle, T. A., et al. Impacts of organomodified nanoclays and their incinerated byproducts on bronchial cell monolayer integrity. Chemical Research in Toxicology. 32 (12), 2445-2458 (2019).
  43. Eldawud, R., et al. Potential antitumor activity of digitoxin and user-designed analog administered to human lung cancer cells. Biochimica et Biophysica Acta. General Subjects. 1864 (11), 129683 (2020).
  44. Zhuang, J., et al. Optimized metal-organic-framework nanospheres for drug delivery: Evaluation of small-molecule encapsulation. ACS Nano. 8 (3), 2812-2819 (2014).
  45. Eldawud, R., et al. Combinatorial approaches to evaluate nanodiamond uptake and induced cellular fate. Nanotechnology. 27 (8), 085107 (2016).
  46. Houthaeve, G., De Smedt, S. C., Braeckmans, K., De Vos, W. H. The cellular response to plasma membrane disruption for nanomaterial delivery. Nano Convergence. 9 (1), 6 (2022).
  47. Otero-Gonzalez, L., Sierra-Alvarez, R., Boitano, S., Field, J. A. Application and validation of an impedance-based real time cell analyzer to measure the toxicity of nanoparticles impacting human bronchial epithelial cells. Environmental Science & Technology. 46 (18), 10271-10278 (2012).
  48. Ibarguren, M., Lopez, D. J., Escriba, P. V. The effect of natural and synthetic fatty acids on membrane structure, microdomain organization, cellular functions and human health. Biochimica et Biophysica Acta. 1838 (6), 1518-1528 (2014).
  49. Nor, Y. A., et al. Shaping nanoparticles with hydrophilic compositions and hydrophobic properties as nanocarriers for antibiotic delivery. ACS Central Science. 1 (6), 328-334 (2015).
  50. Farcal, L., et al. Comprehensive in vitro toxicity testing of a panel of representative oxide nanomaterials: First steps towards an intelligent testing strategy. PLoS One. 10 (5), e0127174 (2015).
  51. Verma, N. K., Moore, E., Blau, W., Volkov, Y., Babu, P. R. Cytotoxicity evaluation of nanoclays in human epithelial cell line A549 using high content screening and real-time impedance analysis. Journal of Nanoparticle Research. 14, 1137 (2012).
  52. Xiao, C. D., Lachance, B., Sunahara, G., Luong, J. H. T. Assessment of cytotoxicity using electric cell-substrate impedance sensing: Concentration and time response function approach. Analytical Chemistry. 74 (22), 5748-5753 (2002).
  53. Coyle, J. P., et al. Carbon nanotube filler enhances incinerated thermoplastics-induced cytotoxicity and metabolic disruption in vitro. Particle and Fibre Toxicology. 17 (1), 40 (2020).
  54. Yu, M. H., et al. Hyaluronic acid modified mesoporous silica nanoparticles for targeted drug delivery to CD44-overexpressing cancer cells. Nanoscale. 5 (1), 178-183 (2013).

Play Video

Cite This Article
Rose, O. L., Arnold, M., Dinu, C. Electric Cell-Substrate Sensing for Real-Time Evaluation of Metal-Organic Framework Toxicological Profiles. J. Vis. Exp. (195), e65313, doi:10.3791/65313 (2023).

View Video