Summary

Legatura atriale sinistra nell'embrione aviario come modello per l'alterato carico emodinamico durante lo sviluppo vascolare precoce

Published: June 16, 2023
doi:

Summary

Qui, presentiamo un protocollo visivo dettagliato per l’esecuzione del modello di legatura atriale sinistra (LAL) nell’embrione aviario. Il modello LAL altera il flusso intracardiaco, che modifica il carico di sollecitazione da taglio della parete, imitando la sindrome del cuore sinistro ipoplasico. Viene presentato un approccio per superare le sfide di questo difficile modello di microchirurgia.

Abstract

Grazie alla sua configurazione ventricolare matura a quattro camere, alla facilità di coltura, all’accesso all’imaging e all’efficienza, l’embrione aviario è un modello animale vertebrato preferito per lo studio dello sviluppo cardiovascolare. Gli studi che mirano a comprendere lo sviluppo normale e la prognosi dei difetti cardiaci congeniti adottano ampiamente questo modello. Vengono introdotte tecniche chirurgiche microscopiche per alterare i normali modelli di carico meccanico in uno specifico momento embrionale e tracciare la cascata molecolare e genetica a valle. Gli interventi meccanici più comuni sono la legatura della vena vitellina sinistra, il bendaggio conotruncale e la legatura atriale sinistra (LAL), che modula la pressione vascolare intramurale e lo stress da taglio della parete dovuto al flusso sanguigno. La LAL, in particolare se eseguita in ovo, è l’intervento più impegnativo, con rese di campione molto ridotte a causa delle operazioni microchirurgiche sequenziali estremamente fini. Nonostante il suo alto rischio, in ovo la LAL è molto preziosa dal punto di vista scientifico in quanto imita la patogenesi della sindrome del cuore sinistro ipoplasico (HLHS). L’HLHS è una cardiopatia congenita complessa clinicamente rilevante osservata nei neonati umani. Un protocollo dettagliato per l’in ovo LAL è documentato in questo documento. In breve, gli embrioni aviari fecondati sono stati incubati a 37,5 °C e al 60% di umidità costante fino a quando non hanno raggiunto gli stadi di Hamburger-Hamilton (HH) da 20 a 21. I gusci delle uova sono stati aperti e le membrane esterne e interne sono state rimosse. L’embrione è stato ruotato delicatamente per esporre il bulbo atriale sinistro dell’atrio comune. I micro-nodi pre-assemblati da suture di nylon 10-0 sono stati delicatamente posizionati e legati attorno alla gemma atriale sinistra. Infine, l’embrione è stato riportato nella sua posizione originale e LAL è stato completato. I ventricoli normali e quelli strumentati con LAL hanno dimostrato differenze statisticamente significative nella compattazione dei tessuti. Un’efficiente pipeline di generazione di modelli LAL contribuirebbe a studi incentrati sulla manipolazione meccanica e genetica sincronizzata durante lo sviluppo embrionale delle componenti cardiovascolari. Allo stesso modo, questo modello fornirà una fonte di cellule perturbate per la ricerca sulle colture tissutali e la biologia vascolare.

Introduction

I difetti cardiaci congeniti (CHD) sono disturbi strutturali che si verificano a causa di uno sviluppo embrionale anormale1. Oltre alle condizioni genetiche, la patogenesi è influenzata da un alterato carico meccanico 2,3. La sindrome del cuore sinistro ipoplasico (HLHS), una cardiopatia congenita, provoca un ventricolo/aorta sottosviluppato alla nascita4 con un alto tasso di mortalità 5,6. Nonostante i recenti progressi nella sua gestione clinica, la crescita vascolare e le dinamiche di sviluppo dell’HLHS non sono ancora chiare7. Nel normale sviluppo embrionale, l’endocardio e il miocardio del ventricolo sinistro (LV) originano dai progenitori cardiaci man mano che la formazione precoce del tubo cardiaco embrionale progredisce. Viene segnalata la presenza graduale di trabecolazione miocardica, ispessimento degli strati e proliferazione dei cardiomiociti2. Per l’HLHS, si osserva un alterato rimodellamento trabecolare e un appiattimento ventricolare sinistro, che contribuiscono ulteriormente all’ipoplasia miocardica dovuta a una migrazione anomala dei cardiomiociti 2,8,9,10

Tra gli organismi modello ampiamente utilizzati per studiare lo sviluppo del cuore e comprendere le condizioni emodinamiche 11, l’embrione aviario è preferito per il suo cuore maturo a quattro camere e la sua facilità di coltura11,12,13,14. D’altra parte, l’accesso avanzato all’imaging di embrioni di zebrafish e topi transgenici/knockout offre vantaggi distinti11,12. Per l’embrione aviario sono stati testati vari interventi meccanici che alterano la pressione intramurale e lo stress da taglio della parete nello sviluppo di componenti cardiovascolari. Questi modelli includono la legatura vitellina sinistra, il bendaggio connotruncale15 e la legatura atriale sinistra (LAL)11,12,16. Il fenotipo risultante dovuto all’alterato carico meccanico può essere osservato circa 24-48 ore dopo l’intervento chirurgico in studi incentrati sulla prognosi precoce11,13. L’intervento LAL è una tecnica popolare per restringere il volume funzionale dell’atrio sinistro (LA) posizionando un’ansa di sutura attorno all’apertura atrioventricolare. Allo stesso modo, sono stati eseguiti anche interventi microchirurgici che mirano alla legatura atriale destra (RAL)17,18. Allo stesso modo, alcuni ricercatori prendono di mira l’appendice atriale sinistra (LAA) utilizzando micro clip per ridurre il volume del LA19,20. In alcuni studi, un filo di nylon chirurgico viene applicato al nodo atrioventricolare 19,21. Uno degli interventi utilizzati è il LAL, che può imitare l’HLHS ma è anche il modello più difficile da eseguire, con rese di campione molto ridotte a causa delle operazioni microchirurgiche estremamente fini richieste. Nel nostro laboratorio, la LAL viene eseguita in ovo tra gli stadi 20 e 21 di Hamburger-Hamilton (HH), prima che l’atrio comune sia completamente settato 6,14,22,23. Una sutura chirurgica viene posizionata intorno al LA, che altera i flussi di flusso sanguigno intracardiaco. Nei modelli LAL di HLHS, si osserva un aumento della rigidità della parete ventricolare, angoli alterati della miofibra e una diminuzione delle dimensioni della cavità ventricolare sinistra14,24.

In questo video articolo, viene fornito un protocollo e un approccio dettagliati per in ovo LAL. In breve, gli embrioni aviari fecondati sono stati incubati per la microchirurgia, il guscio dell’uovo è stato aperto e le membrane esterne e interne sono state ripulite. L’embrione è stato poi ruotato lentamente in modo che il LA fosse accessibile. Una sutura chirurgica in nylon 10-0 è stata legata alla gemma atriale e l’embrione è stato riportato al suo orientamento originale, completando la procedura LAL25. I ventricoli LAL e normali vengono confrontati per la compattazione tissutale e il volume del ventricolo tramite tomografia a coerenza ottica e istologia di base.

Una pipeline di modelli LAL eseguita con successo, come descritto qui, contribuirà agli studi di base incentrati sullo sviluppo embrionale delle componenti cardiovascolari. Questo modello può essere utilizzato anche insieme a manipolazioni genetiche e modalità di imaging avanzate. Allo stesso modo, il modello LAL acuto è una fonte stabile di cellule vascolari malate per esperimenti di coltura tissutale.

Protocol

Le uova di Livorno bianco fertile sono ottenute da fornitori di fiducia e incubate secondo linee guida approvate dall’università. Gli embrioni di pulcino, stadi da 18 (giorno 3) a 24 (giorno 4) (gli stadi presentati in questo articolo) non sono considerati animali vertebrati vivi dalla direttiva dell’Unione Europea (UE) 2010/63/UE e dalle linee guida del comitato istituzionale per la cura e l’uso degli animali (IACUC) negli Stati Uniti. Gli embrioni di pulcino sono considerati “animali vivi” dopo il 19° giorno di incub…

Representative Results

Tecniche avanzate di imaging risolte nel tempo possono essere impiegate per osservare i cambiamenti strutturali e morfologici dovuti all’intervento LAL10. Inoltre, i campioni di LAL sono anche suscettibili di metodi molecolari e biologici19,28. Nella Tabella 1 sono riportati gli studi di esempio che hanno utilizzato i risultati del modello LAL. In questo contesto, l’intervento di LAL è stato eseguito in embrioni di pulcin…

Discussion

Nell’HLHS, il flusso sanguigno è alterato a causa di difetti strutturali, che portano a una morfologia anomala sul lato sinistro 4,6. Il presente modello fornisce un sistema sperimentale pratico per comprendere meglio la progressione dell’HLHS e può anche imitare la sua patogenesi8. Tuttavia, stabilire un modello animale HLHS completamente equivalente dal punto di vista clinico è un compito impegnativo. Oltre al modello LAL aviario qui …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Riconosciamo il premio Tubitak 2247A per il ricercatore principale 120C139 che fornisce finanziamenti. Gli autori desiderano anche ringraziare PakTavuk Gıda. A. S., Istanbul, Turchia, per aver fornito ovuli fertili e aver sostenuto la ricerca cardiovascolare.

Materials

10-0 nylon surgical suture Ethicon
Elastica van Gieson staining kit Sigma-Aldrich 115974 For staining connective tissues in histological sections
Ethanol absolute Interlab 64-17-5 For the sterilization step, 70% ethanol was obtained by diluting absolute ethanol with distilled water.
Incubator KUHL, Flemington, New Jersey-U.S.A AZYSS600-110
Kimwipes Interlab 080.65.002
Microscissors World Precision Instruments (WPI), Sarasota FL 555640S Vannas STR 82 mm
Parafilm M Sigma-Aldrich P7793-1EA Sealing stage for egg reincubation
Paraplast Bulk Leica Biosystems  39602012 Tissue embedding medium
Stereo Microscope Zeiss Stemi 508  Stemi 508 Used at station 1
Stereo Microscope Zeiss Stemi 2000-C Stemi 2000-C Used at station 2
Tweezer (Dumont 4 INOX #F4) Adumont & Fils, Switzerland Used to return the embryo
Tweezer (Super Fine Dumont #5SF)  World Precision Instruments (WPI), Sarasota FL 501985 Used to remove the membranes on the embryo

References

  1. Wang, T., et al. Congenital heart disease and risk of cardiovascular disease: A meta-analysis of cohort studies. Journal of the American Heart Association. 8 (10), e012030 (2019).
  2. Chaudhry, B., et al. The left ventricular myocardium in hypoplastic left heart syndrome. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 9 (8), 279 (2022).
  3. Lashkarinia, S. S., Çoban, G., Ermek, E., Çelik, M., Pekkan, K. Spatiotemporal remodeling of embryonic aortic arch: stress distribution, microstructure, and vascular growth in silico. Biomechanics and Modeling in Mechanobiology. 19 (5), 1897-1915 (2020).
  4. Ho, S., Chan, W. X., Yap, C. H. Fluid mechanics of the left atrial ligation chick embryonic model of hypoplastic left heart syndrome. Biomechanics and Modeling in Mechanobiology. 20 (4), 1337-1351 (2021).
  5. Gordon, B. M., Rodriguez, S., Lee, M., Chang, R. K. Decreasing number of deaths of infants with hypoplastic left heart syndrome. The Journal of Pediatrics. 153 (3), 354-358 (2008).
  6. Salman, H. E., et al. Effect of left atrial ligation-driven altered inflow hemodynamics on embryonic heart development: clues for prenatal progression of hypoplastic left heart syndrome. Biomechanics and Modeling in Mechanobiology. 20 (2), 733-750 (2021).
  7. Fruitman, D. S. Hypoplastic left heart syndrome: Prognosis and management options. Paediatrics & Child Health. 5 (4), 219-225 (2000).
  8. Rahman, A., Chaturvedi, R. R., Sled, J. G. Flow-mediated factors in the pathogenesis of hypoplastic left heart syndrome. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 9 (5), 154 (2022).
  9. Henderson, D. J., Anderson, R. H. The development and structure of the ventricles in the human heart. Pediatric Cardiology. 30 (5), 588-596 (2009).
  10. Kowalski, W. J., Pekkan, K., Tinney, J. P., Keller, B. B. Investigating developmental cardiovascular biomechanics and the origins of congenital heart defects. Frontiers in Physiology. 5, 408 (2014).
  11. Midgett, M., Rugonyi, S. Congenital heart malformations induced by hemodynamic altering surgical interventions. Frontiers in Physiology. 5, 287 (2014).
  12. Kowalski, W. J., et al. Left atrial ligation alters intracardiac flow patterns and the biomechanical landscape in the chick embryo. Developmental Dynamics. 243 (5), 652-662 (2014).
  13. Bruneau, B. G. The developmental genetics of congenital heart disease. Nature. 451 (7181), 943-948 (2008).
  14. Sedmera, D., et al. Cellular changes in experimental left heart hypoplasia. The Anatomical Record. 267 (2), 137-145 (2002).
  15. Celik, M., et al. Microstructure of early embryonic aortic arch and its reversibility following mechanically altered hemodynamic load release. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 318 (5), H1208-H1218 (2020).
  16. Tobita, K., Schroder, E. A., Tinney, J. P., Garrison, J. B., Keller, B. B. Regional passive ventricular stress-strain relations during development of altered loads in chick embryo. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 282 (6), H2386-H2396 (2002).
  17. Alser, M., Shurbaji, S., Yalcin, H. C. Mechanosensitive pathways in heart development: findings from chick embryo studies. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 8 (4), 32 (2021).
  18. Alser, M., et al. Blood flow disturbance and morphological alterations following the right atrial ligation in the chick embryo. Frontiers in Physiology. 13, 849603 (2022).
  19. Sedmera, D. HLHS: Power of the chick model. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 9 (4), 113 (2022).
  20. Rychter, Z., Rychterová, V., Lemez, L. Formation of the heart loop and proliferation structure of its wall as a base for ventricular septation. Herz. 4 (2), 86-90 (1979).
  21. Harh, J. Y., Paul, M. H., Gallen, W. J., Friedberg, D. Z., Kaplan, S. Experimental production of hypoplastic left heart syndrome in the chick embryo. The Americal Journal of Cardiology. 31 (1), 51-56 (1973).
  22. Sedmera, D., Pexieder, T., Rychterova, V., Hu, N., Clark, E. B. Remodeling of chick embryonic ventricular myoarchitecture under experimentally changed loading conditions. The Anatomical Record. 254 (2), 238-252 (1999).
  23. Karakaya, C., et al. Asymmetry in mechanosensitive gene expression during aortic arch morphogenesis. Scientific Reports. 8 (1), 16948 (2018).
  24. Trinidad, F., et al. Effect of blood flow on cardiac morphogenesis and formation of congenital heart defects. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 9 (9), 303 (2022).
  25. Tobita, K., Keller, B. B. Right and left ventricular wall deformation patterns in normal and left heart hypoplasia chick embryos. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 279 (3), H959-H969 (2000).
  26. Bortecine, S., Merve Nur, C., Faruk, K., Kerem, P. Auxiliary humidifier system design and construction for research grade egg incubators. Zenodo. , (2023).
  27. Schroder, E. A., Tobita, K., Tinney, J. P., Foldes, J. K., Keller, B. B. Microtubule involvement in the adaptation to altered mechanical load in developing chick myocardium. Circulation Research. 91 (4), 353-359 (2002).
  28. Rufaihah, A. J., Chen, C. K., Yap, C. H., Mattar, C. N. Z. Mending a broken heart: In vitro, in vivo and in silico models of congenital heart disease. Disease Models & Mechanisms. 14 (3), (2021).
  29. Siddiqui, H. B., Dogru, S., Lashkarinia, S. S., Pekkan, K. Soft-tissue material properties and mechanogenetics during cardiovascular development. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 9 (2), 64 (2022).
  30. Pesevski, Z., et al. Endocardial fibroelastosis is secondary to hemodynamic alterations in the chick embryonic model of hypoplastic left heart syndrome. Developmental Dynamics. 247 (3), 509-520 (2018).
  31. Hu, N., et al. Dependence of aortic arch morphogenesis on intracardiac blood flow in the left atrial ligated chick embryo. Anatomical Record. 292 (5), 652-660 (2009).
  32. Lashkarinia, S. S., et al. Myocardial biomechanics and the consequent differentially expressed genes of the left atrial ligation chick embryonic model of hypoplastic left heart syndrome. Annals of Biomedical Engineering. 51 (5), 1063-1078 (2023).
  33. Krejčí, E., et al. Microarray analysis of normal and abnormal chick ventricular myocardial development. Physiological Research. 61, S137-S144 (2012).
  34. Rahman, A., et al. A mouse model of hypoplastic left heart syndrome demonstrating left heart hypoplasia and retrograde aortic arch flow. Disease Models & Mechanisms. 14 (11), (2021).
  35. Fishman, N. H., Hof, R. B., Rudolph, A. M., Heymann, M. A. Models of congenital heart disease in fetal lambs. Circulation. 58 (2), 354-364 (1978).
  36. Wong, F. Y., et al. Induction of left ventricular hypoplasia by occluding the foramen ovale in the fetal lamb. Scientific Reports. 10 (1), 880 (2020).
  37. Nie, S. Use of frogs as a model to study the etiology of HLHS. Journal of Cardiovascular Development and Disease. 10 (2), 51 (2023).
  38. Vilches-Moure, J. G. Embryonic chicken (Gallus gallus domesticus) as a model of cardiac biology and development. Comparative Medicine. 69 (3), 184-203 (2019).
  39. Kain, K. H., et al. The chick embryo as an expanding experimental model for cancer and cardiovascular research. Developmental Dynamics. 243 (2), 216-228 (2014).
  40. Sukparangsi, W., Thongphakdee, A., Intarapat, S. Avian embryonic culture: A perspective of in ovo to ex ovo and in vitro studies. Frontiers in Physiology. 13, 903491 (2022).
check_url/65330?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Sevgin, B., Coban, M. N., Karatas, F., Pekkan, K. Left Atrial Ligation in the Avian Embryo as a Model for Altered Hemodynamic Loading During Early Vascular Development. J. Vis. Exp. (196), e65330, doi:10.3791/65330 (2023).

View Video