Vi har utviklet en komparativ onkogenomisk tilnærming på tvers av arter som bruker genomiske analyser og funksjonelle genomiske skjermer for å identifisere og sammenligne terapeutiske mål i svulster som oppstår i genetisk konstruerte musemodeller og den tilsvarende humane tumortypen.
Ondartede perifere nerveskjede svulster (MPNST) er avledet fra Schwann-celler eller deres forløpere. Hos pasienter med tumorfølsomhetssyndromet nevrofibromatose type 1 (NF1) er MPNST den vanligste maligniteten og den viktigste dødsårsaken. Disse sjeldne og aggressive bløtvevsarkomene tilbyr en sterk fremtid, med 5-års sykdomsfri overlevelse på 34-60%. Behandlingsmuligheter for personer med MPNST er skuffende begrenset, med skjemmende kirurgi som det fremste behandlingsalternativet. Mange en gang lovende terapier som tipifarnib, en hemmer av Ras-signalering, har mislyktes klinisk. På samme måte har fase II kliniske studier med erlotinib, som retter seg mot epidermal vekstfaktor (EFGR), og sorafenib, som retter seg mot vaskulær endotelial vekstfaktorreseptor (VEGF), blodplateavledet vekstfaktorreseptor (PDGF) og Raf, i kombinasjon med standard kjemoterapi, heller ikke gitt respons hos pasienter.
I de senere år har funksjonelle genomiske screeningsmetoder kombinert med genetisk profilering av kreftcellelinjer vist seg nyttige for å identifisere viktige cytoplasmatiske signalveier og utvikling av målspesifikke terapier. Når det gjelder sjeldne tumortyper, brukes en variasjon av denne tilnærmingen kjent som komparativ onkogenomikk på tvers av arter i økende grad for å identifisere nye terapeutiske mål. I komparativ onkogenomikk på tvers av arter utføres genetisk profilering og funksjonell genomikk i genetisk utviklede musmodeller (GEM), og resultatene blir deretter validert i de sjeldne humane prøvene og cellelinjene som er tilgjengelige.
Denne artikkelen beskriver hvordan man identifiserer kandidatdrivergenmutasjoner i MPNST-celler fra mennesker og mus ved bruk av hele eksomsekvensering (WES). Vi beskriver deretter hvordan man utfører genomskala shRNA-skjermer for å identifisere og sammenligne kritiske signalveier i mus og humane MPNST-celler og identifisere medisinerbare mål i disse veiene. Disse metodene gir en effektiv tilnærming til å identifisere nye terapeutiske mål i en rekke humane krefttyper.
Ondartede perifere nerveskjede svulster (MPNST) er svært aggressive spindelcellesvulster som oppstår i forbindelse med tumorfølsomhetssyndromet nevrofibromatose type 1 (NF1), sporadisk i den generelle befolkningen og på steder av tidligere strålebehandling 1,2,3. NF1-pasienter er født med en villtypekopi av NF1-tumorsuppressorgenet og et andre NF1-allel med en funksjonstapsmutasjon. Denne tilstanden av haploinsuffisiens gjør NF1-pasienter utsatt for en andre tap av funksjonsmutasjon i deres villtype NF1-gen, noe som utløser tumorigenese. Når denne “andre hit” NF1-mutasjonen forekommer i en celle i Schwann-cellelinjen, er den resulterende svulsten enten et dermalt nevrofibrom som oppstår i huden eller et plexiform nevrofibrom som utvikler seg i store nerver eller nerveplexuser. Selv om patologien til dermale og pleksiforme nevrofibromer er identiske, er deres biologiske oppførsel ganske annerledes, selv om både dermal og plexiform nevrofibromer er godartede, kan bare pleksiforme nevrofibromer gjennomgå transformasjon og gi opphav til MPNST. I tillegg til tap av nevrofibromin, Ras GTPase-aktiverende protein kodet av NF1-genet, bærer MPNST mutasjoner av flere andre tumorsuppressorgener, inkludert TP53 4,5,6,7, CDKN2A 8,9 og PTEN 10, mutasjoner av gener som koder for komponenter av polycomb repressivt kompleks 2 11,12 (PRC2 ; SUZ12– og EED-gener) og avvikende ekspresjon av reseptortyrosinkinaser 1,2. Mutasjoner av NF1 og de andre genene nevnt ovenfor er også tilstede i sporadiske og strålingsinduserte MPNST 11,12.
Selv om disse fremskrittene i vår forståelse av genomiske abnormiteter i MPNST har vært uvurderlige for å forstå deres patogenese, har de ennå ikke resultert i utvikling av effektive nye terapier for MPNST. En stor barriere som hindrer utviklingen av nye behandlinger er det faktum at MPNST er sjeldne kreftformer. På grunn av dette er det vanskelig å få tak i det store antallet pasientprøver som kreves for globale analyser som definerer viktige drivermutasjoner som de som utføres av The Cancer Genome Atlas (TCGA). Vår erfaring er at det kan ta flere år å samle selv et beskjedent antall humane MPNST-prøver. For å overvinne slike begrensninger har mange etterforskere som studerer andre sjeldne krefttyper, vendt seg til bruk av komparativ onkogenomikk på tvers av arter for å identifisere essensielle drivergenmutasjoner, definere de essensielle cytoplasmatiske signalveiene i deres svulst av interesse og identifisere nye terapeutiske mål. Siden signalveiene som er essensielle for tumorigenese er svært konservert mellom mennesker og andre virveldyrarter, kan bruk av funksjonelle genomikktilnærminger som genomskala shRNA-skjermer være et effektivt middel til å identifisere disse nye drivermutasjonene, signalveiene og terapeutiske mål 13,14,15,16,17,18,19, spesielt når man studerer sjeldne humane tumortyper som er tilgjengelige i begrensende antall20.
I metodene som presenteres her, beskriver vi denne tilnærmingen til å utføre genomisk profilering i humane MPNST-cellelinjer og tidlig passasje MPNST-kulturer avledet fra P 0-GGFβ3-mus, en genetisk konstruert musemodell (GEM) der Schwann-cellespesifikk overekspresjon av vekstfaktoren neuregulin-1 (NRG1) fremmer patogenesen av pleksiforme nevrofibromer og deres påfølgende progresjon til MPNST21, 22,23. Det første trinnet i denne tilnærmingen er å identifisere kandidatdrivergener i P 0-GGFβ3 MPNST, humane MPNST-cellelinjer og kirurgisk resekterte humane MPNSTer. For å funksjonelt validere signalveiene som er berørt av disse mutasjonene, bruker vi deretter genomskala shRNA-skjermer for å identifisere genene som kreves for spredning og overlevelse i humane og mus MPNST-cellelinjer. Etter å ha identifisert genene som kreves for spredning og overlevelse, identifiserer vi deretter de medisinerbare genproduktene i samlingen av “treff” ved hjelp av Drug Gene Interaction Database. Vi sammenligner også “treffene” i MPNST-celler fra mennesker og mus for å avgjøre om GEM-modellen og humane MPNST viser lignende avhengighet av de samme genene og signalveiene. Identifisering av overlapping i gener som kreves for spredning og overlevelse og de berørte signalveiene tjener som et middel til å validere P 0-GGFβ3 musemodellen på molekylært nivå. Denne tilnærmingen understreker også effektiviteten av å kombinere menneskelige og museskjermer for å identifisere nye terapeutiske mål, der musemodellen kan tjene som et supplement til de menneskelige skjermene. Verdien av denne kryssartede tilnærmingen er spesielt tydelig når man ser etter terapeutiske mål i sjeldne svulster, hvor humane svulster og cellelinjer er vanskelige å oppnå.
De detaljerte metodene som presenteres her ble utviklet for å studere perifer nervesystemneoplasi og MPNST-patogenese. Selv om vi har funnet at disse metodene er effektive, bør det erkjennes at det er noen potensielle begrensninger for metodene vi beskriver her. Nedenfor diskuterer vi noen av disse begrensningene og potensielle strategier for å overvinne dem i andre modellsystemer.
Vi har funnet ut at hele eksomsekvensering effektivt identifiserer mutasjoner av interesse i P 0-GGFβ3 mus.<s…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbeidet ble støttet av tilskudd fra National Institute of Neurological Diseases and Stroke (R01 NS048353 og R01 NS109655 til SLC; R01 NS109655-03S1 til D.P.J.), National Cancer Institute (R01 CA122804 til SLC) og Forsvarsdepartementet (X81XWH-09-1-0086 og W81XWH-12-1-0164 til SLC).
Bioruptor Sonication System | Diagenode | UCD-600 | |
CASAVA 1.8.2 | |||
Cbot | Illumina, San Diego, CA | N/A | |
Celigo Image Cytometer | Nexcelom | N/A | |
Cellecta Barcode Analyzer and Deconvoluter software | |||
Citrisolve Hybrid | Decon Laboratories | 5989-27-5 | |
Corning 96-well Black Microplate | Millipore Sigma | CLS3603 | |
Diagenode Bioruptor 15ml conical tubes | Diagenode | C30010009 | |
dNTP mix | Clontech | 639210 | |
Eosin Y | Thermo Scientific | 7111 | |
Elution buffer | Qiagen | 19086 | |
Ethanol (200 Proof) | Decon Laboratories | 2716 | |
Excel | Microsoft | ||
FWDGEX 5’-CAAGCAGAAGACGGCATACGAGA-3’ | |||
FWDHTS 5’-TTCTCTGGCAAGCAAAAGACGGCATA-3’ | |||
GexSeqS (5’ AGAGGTTCAGAGTTCTACAGTCCGAA-3’ | HPLC purified | ||
GraphPad Prism | Dotmatics | ||
Harris Hematoxylin | Fisherbrand | 245-677 | |
Illumina HiScanSQ | Illumina, San Diego, CA | N/A | |
Paraformaldehyde (4%) | Thermo Scientific | J19943-K2 | |
PLUS Transfection Reagent | Thermo Scientific | 11514015 | |
Polybrene Transfection Reagent | Millipore Sigma | TR1003G | |
PureLink Quick PCR Purification Kit | Invitrogen | K310001 | |
Qiagen Buffer P1 | Qiagen | 19051 | |
Qiagen Gel Extraction Kit | Qiagen | 28704 | |
RevGEX 5’-AATGATACGGCGACCACCGAGA-3’ | |||
RevHTS1 5’-TAGCCAACGCATCGCACAAGCCA-3’ | |||
Titanium Taq polymerase | Clontech | 639210 | |
Trimmomatic software | www.usadellab.org |