Summary

En forbedret metode for å isolere mitokondrielle kontaktsteder

Published: June 16, 2023
doi:

Summary

Mitokondrielle kontaktsteder er proteinkomplekser som interagerer med mitokondrielle indre og ytre membranproteiner. Disse stedene er avgjørende for kommunikasjonen mellom mitokondriemembranene og dermed mellom cytosol og mitokondriematrisen. Her beskriver vi en metode for å identifisere kandidater som kvalifiserer for denne spesifikke klassen av proteiner.

Abstract

Mitokondrier er tilstede i nesten alle eukaryote celler og utfører viktige funksjoner som går langt utover energiproduksjon, for eksempel syntese av jern-svovelklynger, lipider eller proteiner, Ca2 + buffering og induksjon av apoptose. På samme måte resulterer mitokondriell dysfunksjon i alvorlige menneskelige sykdommer som kreft, diabetes og nevrodegenerasjon. For å utføre disse funksjonene må mitokondrier kommunisere med resten av cellen over konvolutten, som består av to membraner. Derfor må disse to membranene samhandle hele tiden. Proteinholdige kontaktsteder mellom mitokondrielle indre og ytre membraner er avgjørende i denne forbindelse. Så langt er det identifisert flere kontaktsteder. I metoden beskrevet her brukes Saccharomyces cerevisiae mitokondrier til å isolere kontaktsteder og dermed identifisere kandidater som kvalifiserer for kontaktstedproteiner. Vi brukte denne metoden for å identifisere mitokondriekontaktstedet og cristae organiseringssystem (MICOS) -komplekset, et av de viktigste kontaktsteddannende kompleksene i mitokondriell indre membran, som er konservert fra gjær til mennesker. Nylig har vi ytterligere forbedret denne metoden for å identifisere et nytt kontaktsted bestående av Cqd1 og Por1-Om14-komplekset.

Introduction

Mitokondrier utfører en rekke forskjellige funksjoner i eukaryoter, med den mest kjente som produksjon av ATP gjennom oksidativ fosforylering. Andre funksjoner inkluderer produksjon av jern-svovelklynger, lipidsyntese og i høyere eukaryoter, Ca2+ signalering og induksjon av apoptose 1,2,3,4. Disse funksjonene er uadskillelig knyttet til deres komplekse ultrastruktur.

Mitokondriell ultrastruktur ble først beskrevet ved elektronmikroskopi5. Det ble vist at mitokondrier er ganske komplekse organeller bestående av to membraner: mitokondriell ytre membran og mitokondriell indre membran. Dermed dannes to vandige rom av disse membranene: intermembranrommet og matrisen. Den mitokondrielle indre membranen kan deles enda lenger inn i forskjellige seksjoner. Den indre grensemembranen forblir i nærheten av den ytre membranen, og cristae danner invaginasjoner. Såkalte crista-kryss forbinder indre grensehinne og cristae (figur 1). Videre avslører elektronmikrografer av osmotisk krympede mitokondrier at steder eksisterer hvor mitokondriemembranene er tett forbundet 6,7. Disse såkalte kontaktstedene dannes av proteinkomplekser som spenner over de to membranene (figur 1). Det antas at disse interaksjonsstedene er avgjørende for cellens levedyktighet på grunn av deres betydning for regulering av mitokondriell dynamikk og arv, samt overføring av metabolitter og signaler mellom cytosol og matrise8.

MICOS-komplekset i mitokondriell indre membran er sannsynligvis det best karakteriserte og det mest allsidige kontaktsteddannende komplekset. MICOS ble beskrevet i gjær i 2011, og den består av seks underenheter 9,10,1 1: Mic60, Mic27, Mic26, Mic19, Mic12 og Mic10. Disse danner et kompleks på ca. 1,5 MDa som lokaliseres til crista-kryssene 9,10,11. Slettingen av enten kjerneunderenhet, Mic10 eller Mic60, fører til fraværet av denne komplekse 9,11, noe som betyr at disse to underenhetene er avgjørende for stabiliteten til MICOS. Interessant nok danner MICOS ikke bare ett, men flere kontaktsteder med forskjellige mitokondrielle ytre membranproteiner og komplekser: TOM-komplekset 11,12, TOB/SAM-komplekset 9,12,13,14,15,16, Fzo1-Ugo1-komplekset9, Por1 10, OM45 10 og Miro 17. Dette indikerer sterkt at MICOS-komplekset er involvert i forskjellige mitokondrielle prosesser, for eksempel proteinimport, fosfolipidmetabolisme og generering av mitokondriell ultrastruktur18. Sistnevnte funksjon er sannsynligvis den viktigste funksjonen til MICOS, da fraværet av MICOS-komplekset indusert gjennom sletting av MIC10 eller MIC60 fører til en unormal mitokondriell ultrastruktur som nesten helt mangler regelmessig cristae. I stedet akkumuleres indre membranvesikler uten tilkobling til den indre grensemembranen19, 20. Det er viktig at MICOS er bevart i form og funksjon fra gjær til menneske21. Assosiasjonen av mutasjoner i MICOS-underenheter med alvorlige menneskelige sykdommer understreker også dens betydning for høyere eukaryoter22,23. Selv om MICOS er svært allsidig, må det finnes flere kontaktsteder (basert på våre upubliserte observasjoner). Faktisk har flere andre kontaktsteder blitt identifisert, for eksempel mitokondriefusjonsmaskineriene Mgm1-Ugo1 / Fzo1 24,25,26 eller Mdm31-Por1, som er involvert i biosyntesen av mitokondrie-spesifikk fosfolipidkardiolipin 27. Nylig forbedret vi metoden som førte oss til identifiseringen av MICOS for å identifisere Cqd1 som en del av et nytt kontaktsted dannet med det ytre membrankomplekset Por1-Om1428. Interessant nok synes dette kontaktstedet også å være involvert i flere prosesser som mitokondriemembranhomeostase, fosfolipidmetabolisme og fordelingen av koenzym Q28,29.

Her brukte vi en variant av den tidligere beskrevne fraksjoneringen av mitokondrier 9,30,31,32,33. Osmotisk behandling av mitokondrier fører til forstyrrelse av mitokondriell ytre membran og til krymping av matriksrommet, og etterlater de to membranene bare i umiddelbar nærhet på kontaktsteder. Dette muliggjør generering av vesikler som utelukkende består av mitokondriell ytre membran eller mitokondriell indre membran eller ved å inneholde kontaktsteder for begge membraner gjennom mild lydbehandling. På grunn av at den mitokondrielle indre membranen har et mye høyere protein-til-lipid-forhold, viser mitokondrielle indre membranvesikler en høyere tetthet sammenlignet med mitokondrielle ytre membranvesikler. Forskjellen i tetthet kan brukes til å skille membranvesiklene gjennom sukrose, oppdrifts, tetthetsgradient, sentrifugering. Dermed akkumuleres mitokondrielle ytre membranvesikler ved lave sukrosekonsentrasjoner, mens mitokondrielle indre membranvesikler er anriket ved høye sukrosekonsentrasjoner. Vesiklene som inneholder kontaktstedene, konsentrerer seg i middels sukrosekonsentrasjoner (figur 2). Følgende protokoll beskriver denne forbedrede metoden, som krever mindre spesialisert utstyr, tid og energi sammenlignet med vår tidligere etablerte32, i detalj og gir et nyttig verktøy for identifisering av mulige kontaktstedproteiner.

Protocol

1. Buffere og lagerløsninger Lag en 1 M 3-morfolinopropan-1-sulfonsyre (MOPS) løsning i avionisert vann, pH 7,4. Oppbevares ved 4 °C. Forbered 500 mM etylendiamintetraeddiksyre (EDTA) i avionisert vann, pH 8,0. Oppbevares i romtemperatur. Forbered 2,4 M sorbitol i avionisert vann. Oppbevares i romtemperatur etter autoklavering. Forbered 2,5 M sukrose i avionisert vann. Oppbevares i romtemperatur etter autoklavering. Tilbered 200 mM fenylmetylsulfonylfl…

Representative Results

Det er relativt enkelt å skille mitokondrielle indre og ytre membraner. Imidlertid er generering og separasjon av kontaktstedholdige vesikler mye vanskeligere. Etter vår mening er to trinn kritiske og essensielle: sonikeringsforholdene og gradienten som brukes. Vanligvis antas lineære gradienter å ha en bedre oppløsning sammenlignet med trinngradienter. Imidlertid er deres reproduserbare produksjon kjedelig og krever spesialutstyr. Derfor etablerte vi en metode for å generere en trinngra…

Discussion

Mitokondriell subfraksjonering er et komplisert eksperiment med flere svært komplekse trinn. Derfor ønsket vi å ytterligere forbedre og til en viss grad forenkle vår etablerte metode32. Her var utfordringene kravet til komplisert og høyt spesialisert utstyr, som ofte er enkeltkonstruksjoner, og det enorme tids- og energiforbruket. Til dette formål prøvde vi å fjerne pumpene og individuelle konstruksjoner som ble brukt til støping og høsting av den lineære gradienten og endret til en tri…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

M.E.H. anerkjenner Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG), prosjektnummer 413985647, for økonomisk støtte. Forfatterne takker Dr. Michael Kiebler, Ludwig-Maximilians University, München, for hans sjenerøse og omfattende støtte. Vi er takknemlige for Walter Neupert for hans vitenskapelige innspill, nyttige diskusjoner og løpende inspirasjon. JF takker Graduate School Life Science München (LSM) for støtte.

Materials

13.2 mL, Open-Top Thinwall Ultra-Clear Tube, 14 x 89mm Beckman Instruments, Germany 344059
50 mL, Open-Top Thickwall Polycarbonate Open-Top Tube, 29 x 104mm Beckman Instruments, Germany 363647
A-25.50 Fixed-Angle Rotor- Aluminum, 8 x 50 mL, 25,000 rpm, 75,600 x g Beckman Instruments, Germany 363055
Abbe refractometer Zeiss, Germany discontinued,
any pipet controller will suffice
accu-jet pro Pipet Controller Brandtech, USA BR26320 discontinued,
any pipet controller will suffice
Beaker 1000 mL DWK Life Science, Germany C118.1
Branson  Digital Sonifier W-250 D Branson Ultrasonics, USA FIS15-338-125
Branson Ultrasonic 3mm TAPERED MICROTIP Branson Ultrasonics, USA 101-148-062
Branson Ultrasonics 200- and 400-Watt Sonifiers: Rosette Cooling Cell Branson Ultrasonics, USA 15-338-70
Centrifuge Avanti JXN-26 Beckman Instruments, Germany B37912
Centrifuge Optima XPN-100 ultra Beckman Instruments, Germany 8043-30-0031
cOmplete Proteaseinhibtor-Cocktail Roche, Switzerland 11697498001
D-Sorbit Roth, Germany 6213
EDTA (Ethylendiamin-tetraacetic acid disodium salt dihydrate) Roth, Germany 8043
Erlenmeyer flask, 100 mL Roth, Germany X747.1
graduated pipette, Kl. B, 25:0, 0.1 Hirschmann, Germany 1180170
graduated pipette, Kl. B, 5:0, 0.05 Hirschmann, Germany 1180153
ice bath neoLab, Germany  S12651
Magnetic stirrer RCT basic IKA-Werke GmbH, Germany Z645060GB-1EA
MOPS (3-(N-Morpholino)propanesulphonic acid) Gerbu, Germany 1081
MyPipetman Select P1000 Gilson, USA FP10006S
MyPipetman Select P20 Gilson, USA FP10003S
MyPipetman Select P200 Gilson, USA FP10005S
Omnifix 1 mL Braun, Germany 4022495251879
Phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF) Serva, Germany 32395.03
STERICAN cannula 21 Gx4 4/5 0.8×120 mm Braun, Germany 4022495052414
stirring bar, 15 mm VWR, USA 442-0366
Sucrose Merck, Germany S8501
SW 41 Ti Swinging-Bucket Rotor Beckman Instruments, Germany 331362
Test tubes Eppendorf, Germany 3810X
Tissue grinders, Potter-Elvehjem type, 2 mL glass vessel VWR, USA 432-0200
Tissue grinders, Potter-Elvehjem type, 2 mL plunger with serrated tip VWR, USA 432-0212
Trichloroacetic acid (TCA) Sigma Aldrich, Germany 33731 discontinued,
any TCA will suffice (CAS: 73-03-9)
TRIS Roth, Germany 4855

References

  1. Braymer, J. J., Freibert, S. A., Rakwalska-bange, M., Lill, R. BBA – Molecular Cell Research Mechanistic concepts of iron-sulfur protein biogenesis in Biology * General concepts of FeS protein biogenesis. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Molecular Cell Research. 1868 (1), 118863 (2021).
  2. Osman, C., Merkwirth, C., Langer, T. Prohibitins and the functional compartmentalization of mitochondrial membranes. Journal of Cell Science. 122 (21), 3823-3830 (2009).
  3. Smaili, S. S., Hsu, Y., Youle, R. J., Russell, J. T. Mitochondria in Ca 2 %. Signaling and Apoptosis. Journal of Bioenergetics and Biomembranes. 32 (1), (2000).
  4. Rolland, S. G., Conradt, B. New role of the BCL2 family of proteins in the regulation of mitochondrial dynamics. Current Opinion in Cell Biology. 22 (6), 852-858 (2011).
  5. Palade, G. E. An electron microscope study of the mitochondrial structure. The journal of histochemistry and cytochemistry: official journal of the Histochemistry Society. 1 (4), 188-211 (1953).
  6. Hackenbrock, C. R. Ultrastructural bases for metabolically linked mechanical activity in mitochondria. I. Reversible ultrastructural changes with change in metabolic steady state in isolated liver mitochondria. The Journal of cell biology. 30 (2), 269-297 (1966).
  7. Hackenbrock, C. R. Chemical and physical fixation of isolated mitochondria in low-energy and high-energy states. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 61 (2), 598-605 (1968).
  8. Reichert, A. S., Neupert, W. Contact sites between the outer and inner membrane of mitochondria – Role in protein transport. Biochimica et Biophysica Acta – Molecular Cell Research. 1592 (1), 41-49 (2002).
  9. Harner, M., et al. The mitochondrial contact site complex, a determinant of mitochondrial architecture. EMBO Journal. 30 (21), 4356-4370 (2011).
  10. Hoppins, S., et al. A mitochondrial-focused genetic interaction map reveals a scaffold-like complex required for inner membrane organization in mitochondria. Journal of Cell Biology. 195 (2), 323-340 (2011).
  11. vonder Malsburg, K., et al. Dual Role of Mitofilin in Mitochondrial Membrane Organization and Protein Biogenesis. Developmental Cell. 21 (4), 694-707 (2011).
  12. Bohnert, M., et al. Role of mitochondrial inner membrane organizing system in protein biogenesis of the mitochondrial outer membrane. Molecular Biology of the Cell. 23 (20), 3948-3956 (2012).
  13. Darshi, M., et al. ChChd3, an inner mitochondrial membrane protein, is essential for maintaining Crista integrity and mitochondrial function. Journal of Biological Chemistry. 286 (4), 2918-2932 (2011).
  14. Körner, C., et al. The C-terminal domain of Fcj1 is required for formation of crista junctions and interacts with the TOB/SAM complex in mitochondria. Molecular Biology of the Cell. 23 (11), 2143-2155 (2012).
  15. Xie, J., Marusich, M. F., Souda, P., Whitelegge, J., Capaldi, R. A. The mitochondrial inner membrane protein Mitofilin exists as a complex with SAM50, metaxins 1 and 2, coiled-coil-helix coiled-coil-helix domain-containing protein 3 and 6 and DnaJC11. FEBS Letters. 581 (18), 3545-3549 (2007).
  16. Zerbes, R. M., et al. Role of MINOS in mitochondrial membrane architecture: Cristae morphology and outer membrane interactions differentially depend on mitofilin domains. Journal of Molecular Biology. 422 (2), 183-191 (2012).
  17. Modi, S., et al. Miro clusters regulate ER-mitochondria contact sites and link cristae organization to the mitochondrial transport machinery. Nature Communications. 10 (1), 4399 (2019).
  18. Khosravi, S., Harner, M. E. The MICOS complex, a structural element of mitochondria with versatile functions. Biological Chemistry. 401 (6-7), 765-778 (2020).
  19. John, G. B., et al. The mitochondrial inner membrane protein mitofilin controls cristae morphology. Molecular Biology of the Cell. 16 (3), 1543-1554 (2005).
  20. Rabl, R., et al. Formation of cristae and crista junctions in mitochondria depends on antagonism between Fcj1 and Su e/g. Journal of Cell Biology. 185 (6), 1047-1063 (2009).
  21. Alkhaja, A. K., et al. MINOS1 is a conserved component of mitofilin complexes and required for mitochondrial function and cristae organization. Molecular Biology of the Cell. 23 (2), 247-257 (2012).
  22. Eramo, M. J., Lisnyak, V., Formosa, L. E., Ryan, M. T. The "mitochondrial contact site and cristae organising system" (MICOS) in health and human disease. Journal of Biochemistry. 167 (3), 243-255 (2020).
  23. Ikeda, A., Imai, Y., Hattori, N. Neurodegeneration-associated mitochondrial proteins, CHCHD2 and CHCHD10-what distinguishes the two. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 10, 1-12 (2022).
  24. Sesaki, H., Southard, S. M., Yaffe, M. P., Jensen, R. E. Mgm1p, a dynamin-related GTPase, is essential for fusion of the mitochondrial outer membrane. Molecular Biology of the Cell. 14 (6), 2342-2356 (2003).
  25. Fritz, S., Rapaport, D., Klanner, E., Neupert, W., Westermann, B. Connection of the mitochondrial outer and inner membranes by Fzo1 is critical for organellar fusion. Journal of Cell Biology. 152 (4), 683-692 (2001).
  26. Wong, E. D., et al. The intramitochondrial dynamin-related GTPase, Mgm1p, is a component of a protein complex that mediates mitochondrial fusion. Journal of Cell Biology. 160 (3), 303-311 (2003).
  27. Miyata, N., Fujii, S., Kuge, O. Porin proteins have critical functions in mitochondrial phospholipid metabolism in yeast. Journal of Biological Chemistry. 293 (45), 17593-17605 (2018).
  28. Khosravi, S., et al. The UbiB family member Cqd1 forms a novel membrane contact site in mitochondria. J Cell Sci. , (2023).
  29. Kemmerer, Z. A., et al. UbiB proteins regulate cellular CoQ distribution in Saccharomyces cerevisiae. Nature Communications. 12 (1), 4769 (2021).
  30. Pon, L., Moll, T., Vestweber, D., Marshallsay, B., Schatz, G. Protein import into mitochondria: ATP-dependent protein translocation activity in a submitochondrial fraction enriched in membrane contact sites and specific proteins. Journal of Cell Biology. 109, 2603-2616 (1989).
  31. Lithgow, T., Timms, M., Hj, P. B., Hoogenraad, N. J. Identification of a GTP-binding protein in the contact sites between inner and outer mitochondrial membranes. Biochemical and Biophysical Research Communications. 180 (3), 1453-1459 (1991).
  32. Harner, M. Isolation of contact sites between inner and outer mitochondrial membranes. Methods in Molecular Biology. 1567, 43-51 (2017).
  33. Adams, V., Bosch, W., Schlegel, J., Wallimann, T., Brdiczka, D. Further characterization of contact sites from mitochondria of different tissues: topology of peripheral kinases. BBA – Biomembranes. 981 (2), 213-225 (1989).
  34. Izawa, T., Unger, A. K. Isolation of mitochondria from Saccharomyces cerevisiae. Methods in Molecular Biology. 1567, 33-42 (2017).
  35. Gregg, C., Kyryakov, P., Titorenko, V. I. Purification of mitochondria from yeast cells. Journal of Visualized Experiments. (30), 17-19 (2009).
  36. Beavis, A. D., Brannan, R. D., Garlid, K. D. Swelling and Contraction of the Mitochondrial Matrix I. A structural interpretation of the relationship between light scattering and matrix volume. Journal of Biological Chemistry. 260 (25), 13424-13433 (1985).
  37. Born, M., Wolf, E. . Principles of optics electromagnetic theory of propagation, interference and diffraction of light. , (1999).
  38. Koontz, L. TCA precipitation. Methods in Enzymology. 541, 3-10 (2014).
  39. Laemmli, U. K. Cleavage of Structural Proteins during the Assembly of the Head of Bacteriophage T4. Nature. 227, 680-685 (1970).
  40. Renart, J., Reiser, J., Stark, G. R. Transfer of proteins from gels to diazobenzyloxymethyl-paper and detection with antisera: A method for studying antibody specificity and antigen structure. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 76 (7), 3116-3120 (1979).
  41. Al-Tubuly, A. A. SDS-PAGE and Western Blotting. Methods Mol Med. 40, 391-405 (2000).
  42. Kurien, B. T., Hal Scofield, R. Western blotting: Methods and protocols. Western Blotting: Methods and Protocols. (3), 1 (2015).
  43. Gallagher, S., Chakavarti, D. Immunoblot analysis. Journal of Visualized Experiments. (16), (2008).
  44. Sherman, F. Getting Started with Yeast. Methods in Enzymology. 194, 3-21 (1991).
  45. Howson, R., et al. Construction, verification and experimental use of two epitope-tagged collections of budding yeast strains. Comparative and Functional Genomics. 6 (1-2), 2-16 (2005).
  46. Knop, M., et al. Epitope tagging of yeast genes using a PCR-based strategy: More tags and improved practical routines. Yeast. 15, 963-972 (1999).
  47. Longtine, M. S., et al. Additional modules for versatile and economical PCR-based gene deletion and modification in Saccharomyces cerevisiae. Yeast. 14 (10), 953-961 (1998).
  48. Tsai, P. I., et al. PINK1 Phosphorylates MIC60/Mitofilin to Control Structural Plasticity of Mitochondrial Crista Junctions. Molecular Cell. 69 (5), 744-756 (2018).
  49. Xiao, T., et al. Identification of CHCHD10 Mutation in Chinese Patients with Alzheimer Disease. Molecular Neurobiology. 54 (7), 5243-5247 (2017).
  50. Bannwarth, S., et al. A mitochondrial origin for frontotemporal dementia and amyotrophic lateral sclerosis through CHCHD10 involvement. Brain. 137 (8), 2329-2345 (2014).
  51. Chaussenot, A., et al. Screening of CHCHD10 in a French cohort confirms the involvement of this gene in frontotemporal dementia with amyotrophic lateral sclerosis patients. Neurobiology of Aging. 35 (12), 1-4 (2014).
  52. Chiò, A., et al. CHCH10 mutations in an Italian cohort of familial and sporadic amyotrophic lateral sclerosis patients. Neurobiology of Aging. 36 (4), 3-6 (2015).
  53. Genin, E. C., et al. CHCHD 10 mutations promote loss of mitochondrial cristae junctions with impaired mitochondrial genome maintenance and inhibition of apoptosis. EMBO Molecular Medicine. 8 (1), 58-72 (2016).
  54. Bannwarth, S., et al. A mitochondrial origin for frontotemporal dementia and amyotrophic lateral sclerosis through CHCHD10 involvement. Brain. 137 (8), 2329-2345 (2014).

Play Video

Cite This Article
Khosravi, S., Frickel, J., Harner, M. E. An Improved Method to Isolate Mitochondrial Contact Sites. J. Vis. Exp. (196), e65444, doi:10.3791/65444 (2023).

View Video