Summary

Stabilisiertes Fenster für die intravitale Bildgebung der murinen Bauchspeicheldrüse

Published: October 06, 2023
doi:

Summary

Wir präsentieren ein Protokoll für die chirurgische Implantation eines stabilisierten optischen Bleibefensters für die subzellulär aufgelöste Bildgebung der murinen Bauchspeicheldrüse, das serielle und longitudinale Studien der gesunden und erkrankten Bauchspeicheldrüse ermöglicht.

Abstract

Die Physiologie und Pathophysiologie der Bauchspeicheldrüse ist komplex. Erkrankungen der Bauchspeicheldrüse, wie Pankreatitis und Pankreas-Adenokarzinom (PDAC), weisen eine hohe Morbidität und Mortalität auf. Die Intravital-Bildgebung (IVI) ist eine leistungsstarke Technik, die die hochauflösende Bildgebung von Geweben sowohl im gesunden als auch im erkrankten Zustand ermöglicht und eine Echtzeitbeobachtung der Zelldynamik ermöglicht. Die IVI der murinen Bauchspeicheldrüse stellt aufgrund der tiefen viszeralen und nachgiebigen Natur des Organs eine große Herausforderung dar, was es sehr anfällig für Schäden und Bewegungsartefakte macht.

Hier wird der Prozess der Implantation des Stabilisierten Window für die Intravitale Bildgebung des murinen P-Ankreas (SWIP) beschrieben. Das SWIP ermöglicht die IVI der murinen Bauchspeicheldrüse in normalen gesunden Zuständen, während der Transformation von der gesunden Bauchspeicheldrüse zu einer akuten Pankreatitis, die durch Cerulein induziert wird, und in malignen Zuständen wie Pankreastumoren. In Verbindung mit genetisch markierten Zellen oder der Verabreichung von Fluoreszenzfarbstoffen ermöglicht das SWIP die Messung der einzelligen und subzellulären Dynamik (einschließlich Einzelzell- und kollektiver Migration) sowie die serielle Bildgebung derselben interessierenden Region über mehrere Tage.

Die Fähigkeit, die Migration von Tumorzellen zu erfassen, ist von besonderer Bedeutung, da die Hauptursache für die krebsbedingte Mortalität bei PDAC die überwältigende Metastasierungslast ist. Das Verständnis der physiologischen Dynamik der Metastasierung bei PDAC ist ein kritischer ungedeckter Bedarf und entscheidend für die Verbesserung der Patientenprognose. Insgesamt bietet das SWIP eine verbesserte Bildgebungsstabilität und erweitert die Anwendung von IVI bei gesunden Erkrankungen der Bauchspeicheldrüse und der bösartigen Bauchspeicheldrüse.

Introduction

Gutartige und bösartige Erkrankungen der Bauchspeicheldrüse sind potenziell lebensbedrohlich und weisen erhebliche Lücken im Verständnis ihrer Pathophysiologie auf. Pankreatitis – eine Entzündung der Bauchspeicheldrüse – ist die dritthäufigste Ursache für Krankenhauseinweisungen und Wiedereinweisungen im Zusammenhang mit Magen-Darm-Erkrankungen in den USA und ist mit erheblicher Morbidität, Mortalität und sozioökonomischer Belastung verbunden1. Das duktale Adenokarzinom der Bauchspeicheldrüse (PDAC), das als dritthäufigste krebsbedingte Todesursache eingestuft wird 2, ist für die meisten Pankreasmalignomeverantwortlich 3 und weist eine schlechte 5-Jahres-Überlebensrate von nur 11 %2 auf2. Die Hauptursache für krebsbedingte Mortalität bei PDAC ist eine überwältigende metastasierende Belastung. Leider weisen die meisten Patienten eine metastasierende Erkrankung auf. Daher ist das Verständnis der Dynamik der Metastasierung bei PDAC ein kritischer ungedeckter Bedarf auf dem Gebiet der Krebsforschung.

Die Mechanismen, die der Entzündung und der Metastasierung der Bauchspeicheldrüse zugrunde liegen, sind nur unzureichend verstanden. Ein wesentlicher Faktor für diese Wissenslücke ist die Unfähigkeit, die zelluläre Dynamik der Bauchspeicheldrüse in vivo zu beobachten. Die direkte Beobachtung dieser zellulären Dynamik verspricht, wichtige Ziele zu enthüllen, um die Diagnose und Behandlung von Menschen mit Bauchspeicheldrüsenerkrankungen zu verbessern und zu verbessern.

Intravital Imaging (IVI) ist eine Mikroskopietechnik, die es Forschern ermöglicht, biologische Prozesse in lebenden Tieren in Echtzeit zu visualisieren und zu untersuchen. IVI ermöglicht eine hochauflösende, direkte Visualisierung der intrazellulären und mikroumgebungsbezogenen Dynamik in vivo und in der nativen Umgebung des jeweiligen biologischen Prozesses. Daher ermöglicht die IVI die In-vivo-Beobachtung gesunder und pathologischer Prozesse.

Moderne Ganzkörper-Bildgebungsverfahren wie MRT, PET und CT bieten hervorragende Ansichten ganzer Organe und können Pathologien aufdecken, noch bevor klinische Symptome auftreten4. Sie sind jedoch nicht in der Lage, eine Einzelzellauflösung zu erreichen oder die frühesten Stadien der Krankheit – Pankreatitis oder Malignität – aufzudecken.

Frühere Forschungen haben die IVI mit Einzelzellauflösung verwendet, um gutartige und bösartige Erkrankungen der Haut5,6, der Brust7, der Lunge8, der Leber9, des Gehirns10 und der Bauchspeicheldrüsentumoren 11 zu beobachten, was zu Einblicken in die Mechanismen des Krankheitsverlaufs führte12. Die murine Bauchspeicheldrüse stellt jedoch erhebliche Hindernisse für das Erreichen einer Einzelzellauflösung mit IVI dar, vor allem aufgrund ihrer tiefen viszeralen Lage und ihrer hohen Compliance. Darüber hinaus ist es ein verzweigtes, diffus verteiltes Organ innerhalb des Mesenteriums, das mit der Milz, dem Dünndarm und dem Magen verbunden ist, was den Zugang erschwert. Das Gewebe reagiert auch sehr empfindlich auf Bewegungen, die durch angrenzende Peristaltik und Atmung verursacht werden. Die Minimierung der Bewegung der Bauchspeicheldrüse ist für die Einzelzellauflösung von entscheidender Bedeutung, da Bewegungsartefakte von nur wenigen Mikrometern die Bilder verwischen und verzerren können, was es unmöglich macht, die Dynamik einzelner Zellen zu verfolgen13.

Um eine IVI durchführen zu können, muss ein abdominelles Bildgebungsfenster (AIW) chirurgisch implantiert werden 9,11. Um die AIW operativ zu implantieren, wird ein Fensterrahmen aus Metall in die Bauchdecke eingenäht. Anschließend wird das gewünschte Organ mit Cyanacrylat-Kleber am Rahmen befestigt. Während dies für einige starre innere Organe (z. B. Leber, Milz, starre Tumore) ausreichend ist, werden Versuche, die gesunde murine Bauchspeicheldrüse abzubilden, durch suboptimale laterale und axiale Stabilität aufgrund der nachgiebigen Textur des Gewebes und der komplexen Architektur beeinträchtigt14. Um dieser Einschränkung zu begegnen, entwickelten Park et al.14 ein Bildgebungsfenster, das speziell für die gesunde Bauchspeicheldrüse entwickelt wurde. Dieses Pankreas-Bildgebungsfenster (PIW) minimiert den Einfluss der Darmbewegung und der Atmung, indem es ein horizontales Metallregal in den Fensterrahmen, direkt unter dem Deckglas, integriert, das Gewebe stabilisiert und seinen Kontakt mit dem Deckglas aufrechterhält. Während das PIW eine erhöhte laterale Stabilität bietet, haben wir festgestellt, dass dieses Fenster immer noch eine axiale Drift aufweist und zusätzlich die Bildgebung großer solider Tumore aufgrund des schmalen Spalts zwischen dem Metallregal und dem Deckglas15 verhindert.

Um diesen Einschränkungen zu begegnen, haben wir das Stabilisierte Window für die intravitaleBildgebung des murinen P-Ankras (SWIP) entwickelt, ein implantierbares Bildgebungsfenster, das in der Lage ist, eine stabile Langzeitbildgebung sowohl der gesunden als auch der erkrankten Bauchspeicheldrüse zu erreichen (Abbildung 1)15. Hier stellen wir ein umfassendes Protokoll für den chirurgischen Eingriff zur Implantation des SWIP zur Verfügung. Obwohl das primäre Ziel darin bestand, die dynamischen Mechanismen der Metastasierung zu untersuchen, kann diese Methode auch verwendet werden, um verschiedene Aspekte der Biologie und Pathologie der Bauchspeicheldrüse zu untersuchen.

Protocol

Alle in diesem Protokoll beschriebenen Verfahren wurden in Übereinstimmung mit den Richtlinien und Vorschriften für die Verwendung von Wirbeltieren durchgeführt, einschließlich der vorherigen Genehmigung durch das Albert Einstein College of Medicine Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC). 1. Passivierung von Fenstern HINWEIS: Die Passivierung von Edelstahl reinigt das Metall von Verunreinigungen und erzeugt eine dünne Oxidschicht, di…

Representative Results

Abbildung 1, adaptiert von Du et al.15, zeigt Standbilder aus einem Zeitraffer-IVI-Film der murinen Bauchspeicheldrüse. Innerhalb der anfänglichen Eingewöhnungsphase (erste Stunde der Bildgebung, Abbildung 1A) kann eine gewisse Gewebebewegung beobachtet werden. Bei fortgesetzter Bildgebung nach dieser Eingewöhnungsphase (>75 min) beobachteten wir jedoch eine Zunahme der lateralen und axialen Stabilität (Abbildung…

Discussion

Das hier beschriebene SWIP-Protokoll bietet eine verbesserte Methode zur Stabilisierung des Bauchspeicheldrüsengewebes unter Verwendung einer Kreuzstichkorbtechnik. Frühe abdominale Bildgebungsfenster (AIWs) ermöglichten die intravitale Bildgebung (IVI) der inneren Organe des Abdomens, schränkten aber die Bewegung von Weichteilen wie der Bauchspeicheldrüse nicht ausreichend ein. Als Reaktion darauf entwickelten Park et al. ein Pankreas-Bildgebungsfenster (PIW), das eine horizontale Metallablage enthält und eine ver…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Die Evelyn Lipper Charitable Foundation, das Gruss-Lipper Biophotonics Center, das Integrated Imaging Program for Cancer Research, ein NIH T-32 Fellowship (CA200561) und ein Zuschuss des Department of Defense Pancreatic Cancer Research Program (PCARP) PA210223P1.

Materials

1% (w/v) solution of enzyme-active detergent Alconox Inc NA Concentrated, anionic detergent with protease enzymes for manual and ultrasonic cleaning
5% (w/v) solution of sodium hydroxide Sigma-Aldrich S8045 Passivation reagent
5 mm cover glass Electron Microscopy Sciences 72296-05 Round Glass Coverslips 
7% (w/v) solution of citric acid Sigma-Aldrich  251275 Passivation reagent
28G 1 mL BD Insulin Syringe BD 329410 Syringe for cell injection
Baytril 100 (enrofloxacin) Bayer (Santa Cruz Biotechnology) sc-362890Rx Antibiotic
Bench Mount Heat Lamp McMaster-Carr 3349K51 Heat lamp
Buprenorphine 0.3 mg/mL Covetrus North America 059122 Buprenorphine Analgesia
Castroviejo Curved Scissors World Precision Instruments WP2220 Scissor for cutting tissue
C57BL/6J Mouse Jackson Laboratory 000664  C57BL/6J Mouse
Chlorhexidine solution Durvet 7-45801-10258-3 Chlorhexidine Disinfectant Solution
Compressed air canister Falcon DPSJB-12 Compressed air for drying tissue
Cyano acrylate – Gel Superglue Staples 234790-6 Skin Glue
Cyano acrylate – Liquid Superglue Staples LOC1647358 Coverslip Glue
DPBS 1x Corning 21-031-CV DPBS for cerulein/cell injections
Gemini Cautery Kit Harvard Apparatus 726067 Cautery Pen
Germinator 500 CellPoint Scientific GER 5287-120V Bead Sterilizer
Graefe Micro Dissecting Forceps; Serrated; Slight Curve; 0.8 mm Tip Width; 4" Length Roboz Surgical RS-5135  Graefe Micro Dissecting Forceps
Imaging microscope NA NA See Entenberg et al. 2011 [27]
Imaging software NA NA See Entenberg et al. 2011 [27]
Isoethesia (isoflurane) Henry Schein Animal Health 50033 Isoflurane Anesthesia
Kim Wipes Fisher Scientific 06-666-A  Kim Wipes
Laboratory tape Fisher Scientific 159015R Laboratory Tape
Mouse Dissecting Kit World Precision Instruments MOUSEKIT Surgical Instruments
Mouse Paw Pulse Oximeter Sensor Kent Scientific Corpo MSTAT Sensor-MSE Pulse Oximeter
Mouse Surgisuite Kent Scientific SURGI-M04 Heated platform
Nair Hair Removal Lotion Amazon B001RVMR7K Depilatory Lotion
Oxygen TechAir OX TM Oxygen
PERMA-HAND Black Braided Silk Sutures, ETHICON Size 5-0 VWR 95056-872 Silk Suture
Phosphate Buffered Saline 1x Life Technologies 10010-023 PBS
PhysioSuite System Kent Scientific PhysioSuite Heated Platform Controller
Puralube Henry Schein Animal Health 008897 Eye Lubricant
Puritan Nonsterile Cotton-Tipped Swabs  Fisher Scientific 867WCNOGLUE Cotton Swabs
SHARP Precision Barrier Tips, For P-100, 100 µL Denville Scientific Inc. P1125 100 µL Pipet Tips
Tetramethylrhodamine isothiocyanate–Dextran Sigma-Aldrich T1287-500MG Vascular Label
Window-fixturing plate NA NA Custom made plate for window placement on microscope stage. Plate is made of 0.008 in stainless steel shim stock. For dimensions of plate see Entenberg et al., 2018 [8].
Window Frame NA NA The window is composed of a steel frame with a central aperture that accepts a 5 mm coverslip. A groove of 1.75 mm around the circumference of the frame provides space for the peritoneal muscle and skin layers to adhere to. See Entenberg et al., 2018 [8].

References

  1. Peery, A. F., et al. Burden and cost of gastrointestinal, liver, and pancreatic diseases in the United States: Update 2021. Gastroenterology. 162 (2), 621-644 (2022).
  2. Siegel, R. L., Miller, K. D., Wagle, N. S., Jemal, A. Cancer statistics, 2023. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 73 (1), 17-48 (2023).
  3. Adamska, A., Domenichini, A., Falasca, M. Pancreatic ductal adenocarcinoma: Current and evolving therapies. International Journal of Molecular Sciences. 18 (7), 1338 (2017).
  4. Coste, A., Oktay, M. H., Condeelis, J. S., Entenberg, D. Intravital imaging techniques for biomedical and clinical research. Cytometry A. 97 (5), 448-457 (2020).
  5. Peters, N. C., et al. In vivo imaging reveals an essential role for neutrophils in leishmaniasis transmitted by sand flies. Science. 321 (5891), 970-974 (2008).
  6. Alexander, S., Koehl, G. E., Hirschberg, M., Geissler, E. K., Friedl, P. Dynamic imaging of cancer growth and invasion: a modified skin-fold chamber model. Histochemistry and Cell Biology. 130 (6), 1147-1154 (2008).
  7. Harney, A. S., et al. Real-time imaging reveals local, transient vascular permeability, and tumor cell intravasation stimulated by TIE2hi macrophage-derived VEGFA. Cancer Discovery. 5 (9), 932-943 (2015).
  8. Entenberg, D., et al. A permanent window for the murine lung enables high-resolution imaging of cancer metastasis. Nature Methods. 15 (1), 73-80 (2018).
  9. Ritsma, L., et al. Intravital microscopy through an abdominal imaging window reveals a pre-micrometastasis stage during liver metastasis. Science Translational Medicine. 4 (158), 158ra145 (2012).
  10. Park, K., You, J., Du, C., Pan, Y. Cranial window implantation on mouse cortex to study microvascular change induced by cocaine. Quantitative Imaging in Medicine and Surgery. 5 (1), 97-107 (2015).
  11. Beerling, E., Oosterom, I., Voest, E., Lolkema, M., van Rheenen, J. Intravital characterization of tumor cell migration in pancreatic cancer. Intravital. 5 (3), e1261773 (2016).
  12. Entenberg, D., Oktay, M. H., Condeelis, J. S. Intravital imaging to study cancer progression and metastasis. Nature Reviews: Cancer. 23 (1), 25-42 (2023).
  13. Entenberg, D., et al. time-lapsed, large-volume, high-resolution intravital imaging for tissue-wide analysis of single cell dynamics. Methods. 128, 65-77 (2017).
  14. Park, I., Hong, S., Hwang, Y., Kim, P. A novel pancreatic imaging window for stabilized longitudinal in vivo observation of pancreatic islets in murine model. Diabetes & Metabolism Journal. 44 (1), 193-198 (2020).
  15. Du, W., et al. SWIP-a stabilized window for intravital imaging of the murine pancreas. Open Biology Journal. 12 (6), 210273 (2022).
  16. DeBold, T. A. M., James, W. . How To Passivate Stainless Steel Parts. , (2003).
  17. Drobizhev, M., Makarov, N. S., Tillo, S. E., Hughes, T. E., Rebane, A. Two-photon absorption properties of fluorescent proteins. Nature Methods. 8 (5), 393-399 (2011).
  18. Ueki, H., Wang, I. H., Zhao, D., Gunzer, M., Kawaoka, Y. Multicolor two-photon imaging of in vivo cellular pathophysiology upon influenza virus infection using the two-photon IMPRESS. Nature Protocols. 15 (3), 1041-1065 (2020).
  19. Ewald, A. J., Werb, Z., Egeblad, M. Monitoring of vital signs for long-term survival of mice under anesthesia. Cold Spring Harbor Protocols. 2011 (2), pdb prot5563 (2011).
  20. Moral, J. A., et al. ILC2s amplify PD-1 blockade by activating tissue-specific cancer immunity. Nature. 579 (7797), 130-135 (2020).
  21. Erstad, D. J., et al. Orthotopic and heterotopic murine models of pancreatic cancer and their different responses to FOLFIRINOX chemotherapy. Disease Models & Mechanisms. 11 (7), dmm034793 (2018).
  22. Harney, A. S., Wang, Y., Condeelis, J. S., Entenberg, D. Extended time-lapse intravital imaging of real-time multicellular dynamics in the tumor microenvironment. Journal of Visualized Experiments. (112), e54042 (2016).
  23. Entenberg, D., et al. Imaging tumor cell movement in vivo. Current Protocols in Cell Biology. Chapter 19, 19.7.1-19.7.19 (2013).
  24. Entenberg, D., et al. Setup and use of a two-laser multiphoton microscope for multichannel intravital fluorescence imaging. Nature Protocols. 6 (10), 1500-1520 (2011).
  25. Rodriguez-Tirado, C., et al. Long-term high-resolution intravital microscopy in the lung with a vacuum stabilized imaging window. Journal of Visualized Experiments. (116), 54603 (2016).
  26. Seynhaeve, A. L. B., Ten Hagen, T. L. M. Intravital microscopy of tumor-associated vasculature using advanced dorsal skinfold window chambers on transgenic fluorescent mice. Journal of Visualized Experiments. (131), 55115 (2018).
  27. Gorelick, F. S., Lerch, M. M. Do animal models of acute pancreatitis reproduce human disease. Cellular and Molecular Gastroenterology and Hepatology. 4 (2), 251-262 (2017).
  28. Dolai, S., et al. Depletion of the membrane-fusion regulator Munc18c attenuates caerulein hyperstimulation-induced pancreatitis. Journal of Biological Chemistry. 293 (7), 2510-2522 (2018).
  29. Niederau, C., Ferrell, L. D., Grendell, J. H. Caerulein-induced acute necrotizing pancreatitis in mice: protective effects of proglumide, benzotript, and secretin. Gastroenterology. 88 (5 Pt 1), 1192-1204 (1985).
  30. Dunphy, M. P., Entenberg, D., Toledo-Crow, R., Larson, S. M. In vivo microcartography and subcellular imaging of tumor angiogenesis: a novel platform for translational angiogenesis research. Microvascular Research. 78 (1), 51-56 (2009).
  31. Shanja-Grabarz, X., Coste, A., Entenberg, D., Di Cristofano, A. Real-time, high-resolution imaging of tumor cells in genetically engineered and orthotopic models of thyroid cancer. Endocrine-Related Cancer. 27 (10), 529-539 (2020).
check_url/65498?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Petersen, J., Du, W., Adkisson, C., Gravekamp, C., Oktay, M. H., Condeelis, J., Panarelli, N. C., McAuliffe, J. C., Entenberg, D. Stabilized Window for Intravital Imaging of the Murine Pancreas. J. Vis. Exp. (200), e65498, doi:10.3791/65498 (2023).

View Video