Summary

マウス膵臓の生体内イメージングのための安定化ウィンドウ

Published: October 06, 2023
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Summary

マウス膵臓の細胞内分解能イメージングのための安定化された留置光学窓の外科的移植のプロトコルを提示し、健康な膵臓と病気の膵臓の連続的および縦断的研究を可能にします。

Abstract

膵臓の生理学と病態生理学は複雑です。膵炎や膵臓腺癌(PDAC)などの膵臓の疾患は、罹患率と死亡率が高い。生体内イメージング(IVI)は、健康な状態と病気の状態の両方の組織の高解像度イメージングを可能にする強力な技術であり、細胞動態のリアルタイム観察を可能にします。マウス膵臓のIVIは、臓器の深い内臓とコンプライアンスの性質により、損傷や運動アーチファクトが非常に起こりやすいため、重大な課題を提示します。

ここで説明するのは、マウスPancreas(SWIP)のIntravitalイメージングのためのStabilized Wインドウの移植プロセスです。SWIPは、正常な健康な状態、健康な膵臓からセルレインによって誘発される急性膵炎への転換中、および膵臓腫瘍などの悪性状態におけるマウス膵臓のIVIを可能にします。SWIPは、遺伝子標識細胞または蛍光色素の投与と組み合わせて、単一細胞および細胞内動態(単一細胞および集団移動を含む)の測定、および数日間にわたる同じ関心領域の連続イメージングを可能にします。

PDACにおけるがん関連死亡率の主な原因は圧倒的な転移性負担であるため、腫瘍細胞の移動を捕捉する能力は特に重要です。PDACにおける転移の生理学的動態を理解することは、満たされていない重要なニーズであり、患者の予後を改善するために重要です。全体として、SWIPはイメージングの安定性を向上させ、健康な膵臓および悪性膵臓疾患におけるIVIの適用を拡大します。

Introduction

良性および悪性の膵臓疾患は生命を脅かす可能性があり、その病態生理学の理解にはかなりのギャップがあります。膵炎(膵臓の炎症)は、米国における消化器疾患関連の入院および再入院の第3大原因であり、かなりの罹患率、死亡率、および社会経済的負担に関連しています1。膵管腺がん(PDAC)は、がん関連死因の第3位2にランクされており、膵臓悪性腫瘍の大半を占めており3 、5年生存率はわずか11%2と低いことを示しています。PDACにおけるがん関連死亡率の主な原因は、圧倒的な転移性負担です。残念ながら、ほとんどの患者は転移性疾患を呈します。したがって、PDACにおける転移の動態を理解することは、がん研究の分野における重要なアンメットニーズです。

炎症と膵臓の転移カスケードを支えるメカニズムは十分に理解されていません。この知識のギャップの主な原因は、 in vivoで膵臓の細胞動態を観察できないことです。これらの細胞動態を直接観察することで、膵臓疾患患者の診断と治療を活用し、改善するための重要な標的を明らかにすることが期待されます。

生体内イメージング(IVI)は、研究者が生きている動物の生物学的プロセスをリアルタイムで視覚化して研究できるようにする顕微鏡技術です。IVIは、生体内および生体プロセスの天然環境内の細胞 および微小環境のダイナミクスを高解像度で直接可視化することができます。したがって、IVIは、健康および病理学的プロセスの in vivo 観察を可能にします。

MRI、PET、CTなどの現代の全身画像モダリティは、臓器全体の優れたビューを提供し、臨床症状の発症前でも病状を明らかにすることができます4。しかし、単一細胞の分解能を達成したり、膵炎や悪性腫瘍などの疾患の初期段階を明らかにしたりすることはできません。

これまでの研究では、皮膚5,6、乳房7、肺8、肝臓9、脳10、膵臓腫瘍11の良性および悪性疾患を単細胞分解能IVIで観察し、疾患の進行メカニズムに関する洞察を得ています12しかし、マウスの膵臓は、主に内臓の奥深くに位置し、コンプライアンスが高いため、IVIを使用して単一細胞の解像度を達成する上で大きな障害となっています。さらに、腸間膜内の枝分かれしたびまん性に分布する器官であり、脾臓、小腸、胃に接続しているため、アクセスが困難です。組織はまた、隣接する蠕動運動と呼吸によって引き起こされる動きに対して非常に敏感です。膵臓の動きを最小限に抑えることは、数ミクロンの動きでさえ画像をぼやけさせ、歪ませ、個々の細胞の動態を追跡することを不可能にするため、単一細胞分解能顕微鏡検査に不可欠です13

IVIを実施するには、腹部イメージングウィンドウ(AIW)を外科的に埋め込む必要があります9,11。AIWを外科的に移植するには、金属製の窓枠を腹壁に縫合します。その後、シアノアクリレート接着剤を使用して目的の臓器をフレームに取り付けます。これは一部の硬い内臓(肝臓、脾臓、硬い腫瘍など)には十分であるが、健康なマウスの膵臓を画像化する試みは、組織の準拠したテクスチャと複雑な構造のために最適ではない側方向および軸方向の安定性によって損なわれる14。この制限に対処するために、Parkらは、健康な膵臓用に特別に設計されたイメージングウィンドウを開発しました14。この膵臓イメージングウィンドウ(PIW)は、カバーガラスのすぐ下の窓枠内に水平な金属製の棚を組み込み、組織を安定させ、カバーガラスとの接触を維持することで、腸の動きと呼吸の影響を最小限に抑えます。PIWは横方向の安定性を高めているが、この窓は依然として軸方向のドリフトを示し、さらに金属製の棚とカバーガラス15の間の狭い隙間のために大きな固形腫瘍のイメージングを妨げることがわかった。

これらの制限に対処するために、私たちは、健康な膵臓と病気の膵臓の両方の安定した長期イメージングを達成できる埋め込み型イメージングウィンドウである、マウスPancreas(SWIP)のIntravitalイメージング用のStabilized Windowを開発しました(図1)15。ここでは、SWIPを埋め込むために使用される外科的処置の包括的なプロトコルを提供します。主な目的は転移に関与する動的メカニズムを研究することでしたが、この方法は、膵臓の生物学と病理学のさまざまな側面を探求するためにも利用できます。

Protocol

このプロトコルに記載されているすべての手順は、アルバートアインシュタイン医科大学の施設動物ケアおよび使用委員会(IACUC)による事前承認を含む、脊椎動物の使用に関するガイドラインと規制に従って実行されています。 1.窓の不動態化 注:ステンレス鋼の不動態化処理は、金属の汚染物質を洗浄し、薄い酸化物層を形成して、チタ?…

Representative Results

図1は、Du et al.15から引用したもので、マウスの膵臓のタイムラプスIVI動画の静止画を示しています。初期の整定期間(イメージングの最初の1時間、図1A)内にいくつかの組織の動きが観察されます。しかし、このセトリング期間(>75分)後もイメージングを継続すると、横方向および軸方向の安定性の向上が観察されました(<strong class=…

Discussion

ここで説明するSWIPプロトコルは、クロスステッチバスケット技術を利用して、膵臓組織を安定化するための改良された方法を提供します。初期の腹部画像窓(AIW)は、腹部の内臓の生体内画像(IVI)を可能にしたが、膵臓などの軟部組織の動きを適切に制限していなかった。これに対応して、Parkらは、水平の金属棚を組み込んで、ガラスカバーガラスとの接触を維持しながら膵臓組織の安定性を?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Evelyn Lipper Charitable Foundation、Gruss-Lipper Biophotonics Center、Integrated Imaging Program for Cancer Research、NIH T-32 Fellowship (CA200561)、および国防総省の膵臓がん研究プログラム (PCARP) 助成金PA210223P1。

Materials

1% (w/v) solution of enzyme-active detergent Alconox Inc NA Concentrated, anionic detergent with protease enzymes for manual and ultrasonic cleaning
5% (w/v) solution of sodium hydroxide Sigma-Aldrich S8045 Passivation reagent
5 mm cover glass Electron Microscopy Sciences 72296-05 Round Glass Coverslips 
7% (w/v) solution of citric acid Sigma-Aldrich  251275 Passivation reagent
28G 1 mL BD Insulin Syringe BD 329410 Syringe for cell injection
Baytril 100 (enrofloxacin) Bayer (Santa Cruz Biotechnology) sc-362890Rx Antibiotic
Bench Mount Heat Lamp McMaster-Carr 3349K51 Heat lamp
Buprenorphine 0.3 mg/mL Covetrus North America 059122 Buprenorphine Analgesia
Castroviejo Curved Scissors World Precision Instruments WP2220 Scissor for cutting tissue
C57BL/6J Mouse Jackson Laboratory 000664  C57BL/6J Mouse
Chlorhexidine solution Durvet 7-45801-10258-3 Chlorhexidine Disinfectant Solution
Compressed air canister Falcon DPSJB-12 Compressed air for drying tissue
Cyano acrylate – Gel Superglue Staples 234790-6 Skin Glue
Cyano acrylate – Liquid Superglue Staples LOC1647358 Coverslip Glue
DPBS 1x Corning 21-031-CV DPBS for cerulein/cell injections
Gemini Cautery Kit Harvard Apparatus 726067 Cautery Pen
Germinator 500 CellPoint Scientific GER 5287-120V Bead Sterilizer
Graefe Micro Dissecting Forceps; Serrated; Slight Curve; 0.8 mm Tip Width; 4" Length Roboz Surgical RS-5135  Graefe Micro Dissecting Forceps
Imaging microscope NA NA See Entenberg et al. 2011 [27]
Imaging software NA NA See Entenberg et al. 2011 [27]
Isoethesia (isoflurane) Henry Schein Animal Health 50033 Isoflurane Anesthesia
Kim Wipes Fisher Scientific 06-666-A  Kim Wipes
Laboratory tape Fisher Scientific 159015R Laboratory Tape
Mouse Dissecting Kit World Precision Instruments MOUSEKIT Surgical Instruments
Mouse Paw Pulse Oximeter Sensor Kent Scientific Corpo MSTAT Sensor-MSE Pulse Oximeter
Mouse Surgisuite Kent Scientific SURGI-M04 Heated platform
Nair Hair Removal Lotion Amazon B001RVMR7K Depilatory Lotion
Oxygen TechAir OX TM Oxygen
PERMA-HAND Black Braided Silk Sutures, ETHICON Size 5-0 VWR 95056-872 Silk Suture
Phosphate Buffered Saline 1x Life Technologies 10010-023 PBS
PhysioSuite System Kent Scientific PhysioSuite Heated Platform Controller
Puralube Henry Schein Animal Health 008897 Eye Lubricant
Puritan Nonsterile Cotton-Tipped Swabs  Fisher Scientific 867WCNOGLUE Cotton Swabs
SHARP Precision Barrier Tips, For P-100, 100 µL Denville Scientific Inc. P1125 100 µL Pipet Tips
Tetramethylrhodamine isothiocyanate–Dextran Sigma-Aldrich T1287-500MG Vascular Label
Window-fixturing plate NA NA Custom made plate for window placement on microscope stage. Plate is made of 0.008 in stainless steel shim stock. For dimensions of plate see Entenberg et al., 2018 [8].
Window Frame NA NA The window is composed of a steel frame with a central aperture that accepts a 5 mm coverslip. A groove of 1.75 mm around the circumference of the frame provides space for the peritoneal muscle and skin layers to adhere to. See Entenberg et al., 2018 [8].

References

  1. Peery, A. F., et al. Burden and cost of gastrointestinal, liver, and pancreatic diseases in the United States: Update 2021. Gastroenterology. 162 (2), 621-644 (2022).
  2. Siegel, R. L., Miller, K. D., Wagle, N. S., Jemal, A. Cancer statistics, 2023. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 73 (1), 17-48 (2023).
  3. Adamska, A., Domenichini, A., Falasca, M. Pancreatic ductal adenocarcinoma: Current and evolving therapies. International Journal of Molecular Sciences. 18 (7), 1338 (2017).
  4. Coste, A., Oktay, M. H., Condeelis, J. S., Entenberg, D. Intravital imaging techniques for biomedical and clinical research. Cytometry A. 97 (5), 448-457 (2020).
  5. Peters, N. C., et al. In vivo imaging reveals an essential role for neutrophils in leishmaniasis transmitted by sand flies. Science. 321 (5891), 970-974 (2008).
  6. Alexander, S., Koehl, G. E., Hirschberg, M., Geissler, E. K., Friedl, P. Dynamic imaging of cancer growth and invasion: a modified skin-fold chamber model. Histochemistry and Cell Biology. 130 (6), 1147-1154 (2008).
  7. Harney, A. S., et al. Real-time imaging reveals local, transient vascular permeability, and tumor cell intravasation stimulated by TIE2hi macrophage-derived VEGFA. Cancer Discovery. 5 (9), 932-943 (2015).
  8. Entenberg, D., et al. A permanent window for the murine lung enables high-resolution imaging of cancer metastasis. Nature Methods. 15 (1), 73-80 (2018).
  9. Ritsma, L., et al. Intravital microscopy through an abdominal imaging window reveals a pre-micrometastasis stage during liver metastasis. Science Translational Medicine. 4 (158), 158ra145 (2012).
  10. Park, K., You, J., Du, C., Pan, Y. Cranial window implantation on mouse cortex to study microvascular change induced by cocaine. Quantitative Imaging in Medicine and Surgery. 5 (1), 97-107 (2015).
  11. Beerling, E., Oosterom, I., Voest, E., Lolkema, M., van Rheenen, J. Intravital characterization of tumor cell migration in pancreatic cancer. Intravital. 5 (3), e1261773 (2016).
  12. Entenberg, D., Oktay, M. H., Condeelis, J. S. Intravital imaging to study cancer progression and metastasis. Nature Reviews: Cancer. 23 (1), 25-42 (2023).
  13. Entenberg, D., et al. time-lapsed, large-volume, high-resolution intravital imaging for tissue-wide analysis of single cell dynamics. Methods. 128, 65-77 (2017).
  14. Park, I., Hong, S., Hwang, Y., Kim, P. A novel pancreatic imaging window for stabilized longitudinal in vivo observation of pancreatic islets in murine model. Diabetes & Metabolism Journal. 44 (1), 193-198 (2020).
  15. Du, W., et al. SWIP-a stabilized window for intravital imaging of the murine pancreas. Open Biology Journal. 12 (6), 210273 (2022).
  16. DeBold, T. A. M., James, W. . How To Passivate Stainless Steel Parts. , (2003).
  17. Drobizhev, M., Makarov, N. S., Tillo, S. E., Hughes, T. E., Rebane, A. Two-photon absorption properties of fluorescent proteins. Nature Methods. 8 (5), 393-399 (2011).
  18. Ueki, H., Wang, I. H., Zhao, D., Gunzer, M., Kawaoka, Y. Multicolor two-photon imaging of in vivo cellular pathophysiology upon influenza virus infection using the two-photon IMPRESS. Nature Protocols. 15 (3), 1041-1065 (2020).
  19. Ewald, A. J., Werb, Z., Egeblad, M. Monitoring of vital signs for long-term survival of mice under anesthesia. Cold Spring Harbor Protocols. 2011 (2), pdb prot5563 (2011).
  20. Moral, J. A., et al. ILC2s amplify PD-1 blockade by activating tissue-specific cancer immunity. Nature. 579 (7797), 130-135 (2020).
  21. Erstad, D. J., et al. Orthotopic and heterotopic murine models of pancreatic cancer and their different responses to FOLFIRINOX chemotherapy. Disease Models & Mechanisms. 11 (7), dmm034793 (2018).
  22. Harney, A. S., Wang, Y., Condeelis, J. S., Entenberg, D. Extended time-lapse intravital imaging of real-time multicellular dynamics in the tumor microenvironment. Journal of Visualized Experiments. (112), e54042 (2016).
  23. Entenberg, D., et al. Imaging tumor cell movement in vivo. Current Protocols in Cell Biology. Chapter 19, 19.7.1-19.7.19 (2013).
  24. Entenberg, D., et al. Setup and use of a two-laser multiphoton microscope for multichannel intravital fluorescence imaging. Nature Protocols. 6 (10), 1500-1520 (2011).
  25. Rodriguez-Tirado, C., et al. Long-term high-resolution intravital microscopy in the lung with a vacuum stabilized imaging window. Journal of Visualized Experiments. (116), 54603 (2016).
  26. Seynhaeve, A. L. B., Ten Hagen, T. L. M. Intravital microscopy of tumor-associated vasculature using advanced dorsal skinfold window chambers on transgenic fluorescent mice. Journal of Visualized Experiments. (131), 55115 (2018).
  27. Gorelick, F. S., Lerch, M. M. Do animal models of acute pancreatitis reproduce human disease. Cellular and Molecular Gastroenterology and Hepatology. 4 (2), 251-262 (2017).
  28. Dolai, S., et al. Depletion of the membrane-fusion regulator Munc18c attenuates caerulein hyperstimulation-induced pancreatitis. Journal of Biological Chemistry. 293 (7), 2510-2522 (2018).
  29. Niederau, C., Ferrell, L. D., Grendell, J. H. Caerulein-induced acute necrotizing pancreatitis in mice: protective effects of proglumide, benzotript, and secretin. Gastroenterology. 88 (5 Pt 1), 1192-1204 (1985).
  30. Dunphy, M. P., Entenberg, D., Toledo-Crow, R., Larson, S. M. In vivo microcartography and subcellular imaging of tumor angiogenesis: a novel platform for translational angiogenesis research. Microvascular Research. 78 (1), 51-56 (2009).
  31. Shanja-Grabarz, X., Coste, A., Entenberg, D., Di Cristofano, A. Real-time, high-resolution imaging of tumor cells in genetically engineered and orthotopic models of thyroid cancer. Endocrine-Related Cancer. 27 (10), 529-539 (2020).
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Cite This Article
Petersen, J., Du, W., Adkisson, C., Gravekamp, C., Oktay, M. H., Condeelis, J., Panarelli, N. C., McAuliffe, J. C., Entenberg, D. Stabilized Window for Intravital Imaging of the Murine Pancreas. J. Vis. Exp. (200), e65498, doi:10.3791/65498 (2023).

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