Summary

Leverglukosproduktion, ureagenes och lipolys kvantifierad med hjälp av den perfunderade muslevermodellen

Published: October 06, 2023
doi:

Summary

Här presenterar vi en robust metod för in situ perfusion av muslever för att studera den akuta och direkta regleringen av levermetabolismen utan att störa leverarkitekturen men i frånvaro av extrahepatiska faktorer.

Abstract

Levern har många funktioner, bland annat näringsmetabolism. Till skillnad från andra in vitro – och in vivo-modeller för leverforskning möjliggör den isolerade perfunderade levern studier av leverbiologi och metabolism i hela levern med en intakt leverarkitektur, separerad från påverkan av extrahepatiska faktorer. Leverperfusioner utvecklades ursprungligen för råttor, men metoden har anpassats även till möss. Här beskriver vi ett protokoll för in situ-perfusion av muslevern. Levern perfunderas antegradivt genom portvenen med syresatt Krebs-Henseleit bikarbonatbuffert, och utflödet samlas upp från den suprahepatiska nedre hålvenen med fastspänning av den infrahepatiska nedre hålvenen för att sluta kretsloppet. Med hjälp av denna metod kan de direkta effekterna i levern av en testförening utvärderas med en detaljerad tidsupplösning. Leverfunktionen och livsdugligheten är stabila i minst 3 timmar, vilket gör det möjligt att inkludera interna kontroller i samma experiment. De experimentella möjligheterna med denna modell är många och kan ge insikt i leverfysiologi och leversjukdomar.

Introduction

Levern är ett viktigt organ i ämnesomsättningen. Det spelar en nyckelroll i kontrollen av hela kroppens energibalans genom att reglera glukos-, lipid- och aminosyrametabolismen. Ökningen av leversjukdomar världen över framstår som en stor global hälsobörda, och mer kunskap behövs om patofysiologin och dess konsekvenser för leverfunktioner.

Olika in vitro-modeller har utvecklats för forskning på levern för att komplettera in vivo-studier. Isolerade och odlade primära hepatocyter från gnagare och människor används i stor utsträckning. Icke-parenkymala celler kan separeras från hepatocyter med hjälp av differentiell och gradient -centrifugering, och samodling av olika celltyper är användbar för att studera intercellulär överhörning1. Även om primära humana hepatocyter anses vara den gyllene standarden för att testa läkemedelstoxicitet, har flera studier visat att hepatocyterna snabbt dedifferentieras i vävnadsodling vilket resulterar i förlust av leverfunktioner 2,3,4. Hepatocytodling i ett 3D-sfäroidsystem förbättrar dedifferentieringen, är mer stabil och verkar efterlikna levern in vivo i högre grad än de traditionella 2D-odlingssystemen5. Precisionsskurna leverskivor är en annan väletablerad in vitro-modell som håller vävnadsarkitekturen intakt och innehåller de icke-parenkymala cellerna som finns i levern6. Mer avancerade in vitro-modeller inkluderar lever-on-a-chip7 och leverorganoider8. Men med alla dessa tillvägagångssätt finns det en förlust av strukturell integritet och flödesdynamik, inklusive vektoriellt portal-hepatiskt venflöde, vilket sannolikt påverkar generaliserbarheten.

Den isolerade perfunderade råttlevern beskrevs första gången av Claude Bernard18559 och används fortfarande inom olika vetenskapliga områden för studier av leverbiologi, toxikologi och patofysiologi. Fördelarna med den perfunderade levern jämfört med de ovan nämnda in vitro-modellerna inkluderar upprätthållandet av leverarkitekturen, det vaskulära flödet, hepatocyternas polaritet och zonering samt interaktionerna mellan hepatocyter och icke-parenkymala celler. Jämfört med in vivo-studier gör den perfunderade levern det möjligt att studera levermetabolismen på ett isolerat sätt genom att undvika extrahepatiska faktorer som bärs av blodet och med fullständig kontroll över de experimentella förhållandena. Flera modifieringar har gjorts för att förbättra råttleverperfusionsmodellen under åren10,11,12,13. Även om möss har använts för isolerade perfunderade leverstudier finns mindre litteratur tillgänglig. Här presenterar vi en metod för in situ perfusion av muslevern genom kanylering av portvenen och den suprahepatiska vena cava inferior för att studera de akuta och direkta metabola svaren på metabola substrat och hormoner mätt i levervenöst levervatten från muslever i realtid.

Protocol

Alla djurförsök har utförts med tillstånd från Djurförsöksinspektionen, Danmarks miljö- och livsmedelsministerium (tillstånd 2018-15-0201-01397) och den lokala etiska kommittén i enlighet med EU-direktivet 2010/63/EU, National Institutes of Health (publikation nr 85-3) och enligt riktlinjerna i dansk lagstiftning om djurförsök (1987). Detta är ett terminalt ingrepp, och dödsorsaken är blodförgiftning och perforering av diafragman under djup anestesi. 1. Försöksdjur</str…

Representative Results

En stadig baslinje krävs för att avgöra om en stimulans eller ett substrat leder till frisättning av molekylen av intresse. Figur 3A visar ett exempel på ett lyckat experiment. Produktionen av urea i den perfunderade levern mäts i 2 minuters intervaller och visas som medelvärde ± SEM. Baslinjeperioderna som föregår var och en av de två stimuleringsperioderna är stabila. Den genomsnittliga ureaproduktionen under de två stimuleringsperioderna och d…

Discussion

Den isolerade perfunderade muslevern är ett starkt forskningsverktyg för studier av dynamiken och de molekylära mekanismerna i levermetabolismen. Möjligheten att samla in prover minut för minut ger en detaljerad utvärdering av den direkta effekten av en testförening på levern. Jämfört med in vivo-studier gör den perfunderade levern det möjligt för oss att studera levermetabolismen på ett isolerat sätt och undvika extrahepatiska faktorer som bärs av blodet och med fullständig kontroll över de ex…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Studierna och Nicolai J. Wewer Albrechtsen stöddes av Novo Nordisk Foundation Excellence Emerging Investigator Grant – Endocrinology and Metabolism (Application No. NNF19OC0055001), European Foundation for the Study of Diabetes Future Leader Award (NNF21SA0072746) och den oberoende forskningsfonden i Danmark, Sapere Aude (1052-00003B). Novo Nordisk Foundation Center for Protein Research stöds ekonomiskt av Novo Nordisk Foundation (Grant agreement NNF14CC0001). Figur 1B skapades med biorender.com. Vi tackar Dr. Rune E. Kuhre (Novo Nordisk A/S) för givande diskussioner om den perfunderade muslevern.

References

  1. Bale, S. S., Geerts, S., Jindal, R., Yarmush, M. L. Isolation and co-culture of rat parenchymal and non-parenchymal liver cells to evaluate cellular interactions and response. Scientific Reports. 6, 25329 (2016).
  2. Lauschke, V. M., et al. Massive rearrangements of cellular MicroRNA signatures are key drivers of hepatocyte dedifferentiation. Hepatology. 64 (5), 1743-1756 (2016).
  3. Seirup, M., et al. Rapid changes in chromatin structure during dedifferentiation of primary hepatocytes in vitro. Genomics. 114 (3), 110330 (2022).
  4. Gupta, R., et al. Comparing in vitro human liver models to in vivo human liver using RNA-Seq. Archive of Toxicology. 95 (2), 573-589 (2021).
  5. Bell, C. C., et al. Characterization of primary human hepatocyte spheroids as a model system for drug-induced liver injury, liver function, and disease. Scientific Reports. 6, 25187 (2016).
  6. Dewyse, L., Reynaert, H., van Grunsven, L. A. Best practices and progress in precision-cut liver slice cultures. International Journal of Molecular Sciences. 22 (13), 7137 (2021).
  7. Li, X., George, S. M., Vernetti, L., Gough, A. H., Taylor, D. L. A glass-based, continuously zonated and vascularized human liver acinus microphysiological system (vLAMPS) designed for experimental modeling of diseases and ADME/TOX. Lab on a Chip. 18 (17), 2614-2631 (2018).
  8. Broutier, L., et al. Culture and establishment of self-renewing human and mouse adult liver and pancreas 3D organoids and their genetic manipulation. Nature Protocols. 11 (9), 1724-1743 (2016).
  9. Bartošek, I., Guaitani, A., Miller, L. L. . Isolated Liver Perfusion and its Applications. , (1973).
  10. Gores, G. J., Kost, L. J., LaRusso, N. F. The isolated perfused rat liver: conceptual and practical considerations. Hepatology. 6 (3), 511-517 (1986).
  11. Mischinger, H. J., et al. An improved technique for isolated perfusion of rat livers and an evaluation of perfusates. Journal of Surgical Research. 53 (2), 158-165 (1992).
  12. Vairetti, M., et al. Correlation between the liver temperature employed during machine perfusion and reperfusion damage: role of Ca2. Liver Transplantation. 14 (4), 494-503 (2008).
  13. Ferrigno, A., Richelmi, P., Vairetti, M. Troubleshooting and improving the mouse and rat isolated perfused liver preparation. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 67 (2), 107-114 (2013).
  14. Zawada, R. J. X., Kwan, P., Olszewski, K. L., Llinas, M., Huang, S. -. G. Quantitative determination of urea concentrations in cell culture medium. Biochemistry and Cell Biology. 87 (3), 541-544 (2009).
check_url/65596?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Winther-Sørensen, M., Kemp, I. M., Bisgaard, H. C., Holst, J. J., Wewer Albrechtsen, N. J. Hepatic Glucose Production, Ureagenesis, and Lipolysis Quantified using the Perfused Mouse Liver Model. J. Vis. Exp. (200), e65596, doi:10.3791/65596 (2023).

View Video