Summary

Gasskromatografi-massespektrometri-basert målrettet metabolomikk av harde korallprøver

Published: October 13, 2023
doi:

Summary

Her presenterer vi ekstraksjon og fremstilling av polare og semipolare metabolitter fra en korallholobiont, samt separert korallvertsvev og Symbiodiniaceae-cellefraksjoner, for gasskromatografi-massespektrometrianalyse.

Abstract

Gasskromatografi-massespektrometri (GC-MS) -baserte tilnærminger har vist seg å være kraftige for å belyse det metabolske grunnlaget for cnidar-dinoflagellatsymbiosen og hvordan koraller reagerer på stress (dvs. under temperaturindusert bleking). Steady-state metabolittprofilering av korallholobiont, som består av cnidarian verten og tilhørende mikrober (Symbiodiniaceae og andre protister, bakterier, archaea, sopp og virus), har blitt vellykket brukt under omgivelses- og stressforhold for å karakterisere korallens holistiske metabolske status.

For å svare på spørsmål rundt symbiotiske interaksjoner, er det imidlertid nødvendig å analysere metabolittprofilene til korallverten og dens algesymbionter uavhengig, noe som kun kan oppnås ved fysisk separasjon og isolering av vevet, etterfulgt av uavhengig ekstraksjon og analyse. Mens anvendelsen av metabolomikk er relativt ny for korallfeltet, har vedvarende innsats fra forskningsgrupper resultert i utvikling av robuste metoder for å analysere metabolitter i koraller, inkludert separasjon av korallvertsvev og algesymbionter.

Denne artikkelen presenterer en trinnvis veiledning for holobiontseparasjon og ekstraksjon av metabolitter for GC-MS-analyse, inkludert viktige optimaliseringstrinn for vurdering. Vi demonstrerer hvordan, når den er analysert uavhengig, er den kombinerte metabolittprofilen til de to fraksjonene (korall og Symbiodiniaceae) lik profilen til hele (holobiont), men ved å separere vevene, kan vi også få nøkkelinformasjon om metabolismen av og interaksjoner mellom de to partnerne som ikke kan oppnås fra helheten alene.

Introduction

Metabolitter representerer sluttproduktene av cellulære prosesser, og metabolomics – studiet av suiten av metabolitter produsert av en gitt organisme eller økosystem – kan gi et direkte mål på organismefunksjon1. Dette er spesielt viktig for å utforske økosystemer, symbiotiske interaksjoner og restaureringsverktøy, da målet med de fleste forvaltningsstrategier er å bevare (eller gjenopprette) spesifikke økosystemtjenestefunksjoner2. Korallrev er et akvatisk økosystem som demonstrerer den potensielle verdien av metabolomikk for å belyse symbiotiske interaksjoner og knytte korallfysiologiske responser til virkninger på samfunnsnivå og økosystemnivå3. Anvendelsen av gasskromatografi-massespektrometri med høy gjennomstrømning (GC-MS) er spesielt verdsatt på grunn av dens evne til raskt å analysere et bredt spekter av metabolittklasser samtidig med høy selektivitet og følsomhet, gi rask identifikasjon av forbindelser når spektralbiblioteker er tilgjengelige, og gi et høyt nivå av reproduserbarhet og nøyaktighet, med en relativt lav kostnad per prøve.

Koraller er holobionter som består av koralldyret, fotosyntetiske dinoflagellatendosymbionter (familie: Symbiodiniaceae4), og et komplekst mikrobiom 5,6. Samlet sett opprettholdes holobiontens egnethet primært gjennom utveksling av små molekyler og elementer for å støtte den metabolske funksjonen til hvert medlem 7,8,9,10. Metabolomiske tilnærminger har vist seg spesielt kraftige for å belyse det metabolske grunnlaget for symbiosespesifisitet9,11, blekingsresponsen på termisk stress 7,8,12,13, sykdomsresponser 14, forurensningseksponeringsresponser 15, fotoakklimatisering 16 og kjemisk signalering 17 i koraller, samt hjelpe til med biomarkøroppdagelse 18,19. I tillegg kan metabolomikk gi verdifull bekreftelse på konklusjonene utledet fra DNA- og RNA-baserte teknikker 9,20. Det er derfor et betydelig potensial for bruk av metabolomics for å vurdere revets helse og utvikle verktøy for bevaring av rev3, for eksempel gjennom påvisning av metabolske biomarkører for stress18,19 og for å undersøke potensialet for aktive forvaltningsstrategier som ernæringssubsidier21.

Å separere verts- og symbiontcellene og analysere deres metabolittprofiler uavhengig, i stedet for sammen som holobiont, kan gi mer informasjon om partnerinteraksjonene, uavhengige fysiologiske og metabolske statuser og potensielle molekylære mekanismer for tilpasning 11,12,22,23,24. Uten å skille koraller og Symbiodiniaceae, er det nesten umulig å belyse bidraget og metabolismen av koraller og / eller Symbiodiniaceae uavhengig, bortsett fra med kompleks genomrekonstruksjon og metabolsk modellering25, men dette har ennå ikke blitt brukt på korall-dinoflagellatsymbiosen. Videre kan forsøk på å trekke ut informasjon om den individuelle metabolismen til verten eller algesymbionten fra metabolittprofilen til holobionten føre til feiltolkning.

For eksempel, inntil nylig, ble tilstedeværelsen av C18: 3n-6, C18: 4n-3 og C16 flerumettede fettsyrer i ekstrakter fra koraller og holobiont vev antatt å være avledet fra algesymbioten, da koraller ble antatt å ikke ha ωx desaturaser som er essensielle for produksjon av omega-3 (ω3) fettsyrer; Nylige genomiske bevis tyder imidlertid på at flere nesledyr har evnen til å produsere ω3 PUFA de novo og videre biosyntetisere ω3 langkjedede PUFA26. Kombinere GC-MS med stabil isotopmerking (f.eks. 13 C-bikarbonat, NaH 13CO 3) kanbrukes til å spore skjebnen til fotosyntetisk fast karbon gjennom korallholobiont metabolske nettverk under både kontrollforhold og som svar på eksterne stressorer27,28. Imidlertid er et kritisk skritt i sporingen av 13 C-skjebnen separasjonen av korallvevet fra algecellene – først da kan tilstedeværelsen av en 13C-merket forbindelse i korallvertsfraksjonen utvetydig tildeles som en Symbiodiniaceae-avledet metabolitt translokalisert til korallen eller et nedstrømsprodukt av en translokalisert merket forbindelse. Denne teknikken har vist sin kraft ved å utfordre den langvarige antagelsen om at glyserol er den primære formen der fotosyntat overføres fra symbiont til vert29, samt å belyse hvordan ernæringsfluks mellom partnere endres under bleking27,28 og som svar på inkompatible Symbiodiniaceae-arter11.

Mens beslutningen om å skille vev primært drives av forskningsspørsmålet, er praktisk, pålitelighet og potensielle metabolske virkninger av denne tilnærmingen viktig å vurdere. Her gir vi detaljerte, demonstrerte metoder for ekstraksjon av metabolitter fra holobiont, samt separate verts- og symbiontfraksjoner. Vi sammenligner metabolittprofilene til verten og symbionten uavhengig av hverandre og hvordan disse profilene er sammenlignet med holobiont-metabolittprofilen.

Protocol

MERK: Den eksperimentelle designen, prøveinnsamlingen og lagringen er beskrevet i detalj andre steder 2,30,31. Tillatelse til innsamling av ville koraller må innhentes før innsamling og eksperimentering. Prøvene her ble samlet inn fra kolonier av Montipora mollis (grønn fargemorf) importert fra Batavia Coral Farms (Geraldton, WA), opprinnelig samlet inn fra et rev utenfor Abrohlosøyene (Western Australia; 28°52’4…

Representative Results

Alle data som produseres under dette arbeidet er tilgjengelige i tilleggsinformasjonen. Host-symbiont separasjon Figur 1: Oppsett og validering av separasjon av korallvertsvev og Symbiodiniaceae-celler. (A) Luftpistoloppsettet for fjerning av korallvev fra kora…

Discussion

Separasjonen av verten og symbionten er enkelt og raskt oppnåelig via enkel sentrifugering, og resultatene her viser at separasjon av fraksjonene kan gi verdifull informasjon som indikerer spesifikke holobiontmedlemsbidrag, noe som kan bidra til funksjonell analyse av korallhelse. I voksne koraller utføres lipidsyntese primært av den fastboende algesymbionten40, som leverer lipider (f.eks. triacylglycerol og fosfolipider)41 og fettsyrer som kan fremme stressrestitusjon <sup class="xref…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

J.L.M. ble støttet av et UTS Chancellor’s Research Fellowship.

Materials

100% LC-grade methanol Merck 439193 LC grade essential
2 mL microcentrifuge tubes, PP Eppendorf 30121880 Polypropylene provides high resistance to chemicals, mechanical stress and temperature extremes
2030 Shimadzu gas chromatograph Shimadzu GC-2030
710-1180 µm acid-washed glass beads Merck
G1152
This size is optimal for breaking the Symbiodiniaceae cells
AOC-6000 Plus Multifunctional autosampler Shimadzu AOC6000
Bradford reagent Merck B6916 Any protein colourimetric reagent is acceptable
Compressed air gun Ozito 6270636 Similar design acceptable. Having a fitting to fit a 1 mL tip over is critical.
 DB-5 column with 0.25 mm internal diameter column and 1 µm film thickness Agilent 122-5013
DMF Merck RTC000098
D-Sorbitol-6-13C and/or 13C515N Valine Merck 605514/ 600148 Either or both internal standards can be added to the methanol.
Flat bottom 96-well plate Merck CLS3614
Glass scintillation vials Merck V7130 20 mL, with non-plastic seal
Immunoglogin G Merck 56834 if not availbe, Bovine Serum Albumin is acceptable
Primer v4
R v4.1.2
Shimadzu LabSolutions Insight software v3.6
Sodium Hydroxide Merck S5881 Pellets to make 1 M solution
tidyverse v1.3.1 R package
TissueLyser LT Qiagen 85600 Or similar
TQ8050NX triple quadrupole mass spectrometer Shimadzu GCMS-TQ8050 NX
UV-96 well plate Greiner M3812
Whirl-Pak sample bag Merck WPB01018WA Sample collection bag; Size: big enough to house a ~5 cm coral fragment, but not too big that the water is too spread

References

  1. Bundy, J. G., Davey, M. P., Viant, M. R. Environmental metabolomics: A critical review and future perspectives. Metabolomics. 5 (1), 3-21 (2008).
  2. Matthews, J. L., Beale, D. J., Hillyer, K. E., Warden, A. C., Jones, O. A. H., et al. The metabolic significance of symbiont community composition in the coral-algal symbiosis. Applied Environmental Metabolomics. , 211-229 (2022).
  3. Lawson, C. A., van Oppen, M. J. H., Aranda Lastra, M., et al. Informing coral reef conservation through metabolomic approaches. Coral Reef Conservation and Restoration in the Omics Age. Coral Reefs of the World. , 179-202 (2022).
  4. LaJeunesse, T. C., et al. Systematic revision of Symbiodiniaceae highlights the antiquity and diversity of coral endosymbionts. Current Biology. 28 (16), 2570-2580 (2018).
  5. Rohwer, F., Seguritan, V., Azam, F., Knowlton, N. Diversity and distribution of coral-associated bacteria. Marine Ecology Progress Series. 243, 1-10 (2002).
  6. Maire, J., et al. Intracellular bacteria are common and taxonomically diverse in cultured and in hospite algal endosymbionts of coral reefs. The ISME Journal. 15 (7), 2028-2042 (2021).
  7. Hillyer, K. E., et al. Metabolite profiling of symbiont and host during thermal stress and bleaching in the coral Acropora aspera. Coral Reefs. 36, 105-118 (2016).
  8. Hillyer, K. E., Tumanov, S., Villas-Bôas, S., Davy, S. K. Metabolite profiling of symbiont and host during thermal stress and bleaching in a model cnidarian-dinoflagellate symbiosis. Journal of Experimental Biology. 219 (4), 516-527 (2016).
  9. Matthews, J. L., et al. Optimal nutrient exchange and immune responses operate in partner specificity in the cnidarian-dinoflagellate symbiosis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (50), 13194-13199 (2017).
  10. Rosset, S. L., et al. The molecular language of the cnidarian-dinoflagellate symbiosis. Trends in Microbiology. 29 (4), 320-333 (2020).
  11. Matthews, J. L., et al. Partner switching and metabolic flux in a model cnidarian-dinoflagellate symbiosis. Royal Society. 285 (1892), 20182336 (2018).
  12. González-Pech, R. A., et al. Physiological factors facilitating the persistence of Pocillopora aliciae and Plesiastrea versipora in temperate reefs of south-eastern Australia under ocean warming. Coral Reefs. 41, 1239-1253 (2022).
  13. Williams, A., et al. Metabolomic shifts associated with heat stress in coral holobionts. Science Advances. 7 (1), (2021).
  14. Deutsch, J. M., et al. Metabolomics of healthy and stony coral tissue loss disease affected Montastraea cavernosa corals. Frontiers in Marine Science. 8, 1421 (2021).
  15. Stien, D., et al. A unique approach to monitor stress in coral exposed to emerging pollutants. Scientific Reports. 10 (1), 9601 (2020).
  16. Lohr, K. E., et al. Resolving coral photoacclimation dynamics through coupled photophysiological and metabolomic profiling. Journal of Experimental Biology. 222 (8), (2019).
  17. Jorissen, H., et al. Coral larval settlement preferences linked to crustose coralline algae with distinct chemical and microbial signatures. Scientific Reports. 11 (1), 14610 (2021).
  18. Roach, T. N., Dilworth, J., Jones, A. D., Quinn, R. A., Drury, C. Metabolomic signatures of coral bleaching history. Nature Ecology & Evolution. 5 (4), 495-503 (2021).
  19. Parkinson, J. E., et al. Molecular tools for coral reef restoration: Beyond biomarker discovery. Conservation Letters. 13 (1), 12687 (2020).
  20. Jiang, J., et al. How Symbiodiniaceae meets the challenges of life during coral bleaching. Coral Reefs. 40, 1339-1353 (2021).
  21. Guerra, F. D., Attia, M. F., Whitehead, D. C., Alexis, F. Nanotechnology for environmental remediation: materials and applications. Molecules. 23 (7), 1760 (2018).
  22. Matthews, J. L., et al. Metabolite pools of the reef building coral Montipora capitata are unaffected by Symbiodiniaceae community composition. Coral Reefs. 39, 1727-1737 (2020).
  23. Papina, M., Meziane, T., van Woesik, R. Symbiotic zooxanthellae provide the host-coral Montipora digitata with polyunsaturated fatty acids. Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Biochemistry and Molecular Biology. 135 (3), 533-537 (2003).
  24. Kellogg, R., Patton, J. Lipid droplets, medium of energy exchange in the symbiotic anemone Condylactis gigantea: A model coral polyp. Marine Biology. 75, 137-149 (1983).
  25. Ankrah, N. Y., Chouaia, B., Douglas, A. E. The cost of metabolic interactions in symbioses between insects and bacteria with reduced genomes. mBio. 9 (5), e01433 (2018).
  26. Kabeya, N., et al. Genes for de novo biosynthesis of omega-3 polyunsaturated fatty acids are widespread in animals. Science Advances. 4 (5), (2018).
  27. Hillyer, K. E., Dias, D., Lutz, A., Roessner, U., Davy, S. K. 13C metabolomics reveals widespread change in carbon fate during coral bleaching. Metabolomics. 14 (1), 12 (2018).
  28. Hillyer, K. E., Dias, D. A., Lutz, A., Roessner, U., Davy, S. K. Mapping carbon fate during bleaching in a model cnidarian symbiosis: the application of 13C metabolomics. New Phytologist. 214 (4), 1551-1562 (2017).
  29. Burriesci, M. S., Raab, T. K., Pringle, J. R. Evidence that glucose is the major transferred metabolite in dinoflagellate-cnidarian symbiosis. Journal of Experimental Biology. 215 (19), 3467-3477 (2012).
  30. Thurber, R. V., et al. Unified methods in collecting, preserving, and archiving coral bleaching and restoration specimens to increase sample utility and interdisciplinary collaboration. PeerJ. 10, 14176 (2022).
  31. Grottoli, A. G., et al. Increasing comparability among coral bleaching experiments. Ecological Applications. 31 (4), 02262 (2020).
  32. Mushtaq, M. Y., Choi, Y. H., Verpoorte, R., Wilson, E. G. Extraction for metabolomics: access to the metabolome. Phytochemical Analysis. 25 (4), 291-306 (2014).
  33. Bradford, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry. 72 (1), 248-254 (1976).
  34. Peterson, G. L., et al. A simplification of the protein assay method of Lowry et al. which is more generally applicable. Analytical Biochemistry. 83 (2), 346-356 (1977).
  35. Lowry, O. H., Rosebrough, N. J., Farr, A. L., Randall, R. J. Protein measurement with the Folin phenol reagent. Journal of Biological Chemistry. 193 (1), 265-275 (1951).
  36. Zamer, W. E., Shick, J. M., Tapley, D. W. Protein measurement and energetic considerations: Comparisons of biochemical and stoichiometric methods using bovine serum albumin and protein isolated from sea anemones. Limnology and Oceanography. 34 (1), 256-263 (1989).
  37. Smart, K. F., Aggio, R. B., Van Houtte, J. R., Villas-Boas, S. G. Analytical platform for metabolome analysis of microbial cells using methyl chloroformate derivatization followed by gas chromatography-mass spectrometry. Nature Protocols. 5 (10), 1709-1729 (2010).
  38. Pang, Z., et al. Using MetaboAnalyst 5.0 for LC-HRMS spectra processing, multi-omics integration and covariate adjustment of global metabolomics data. Nature Protocols. 17 (8), 1735-1761 (2022).
  39. Tibshirani, R., Walther, G., Hastie, T. Estimating the number of clusters in a data set via the gap statistic. Journal of the Royal Statistical Society: Series B (Statistical Methodology). 63 (2), 411-423 (2001).
  40. Chen, W. -. N., et al. Diel rhythmicity of lipid-body formation in a coral-Symbiodinium endosymbiosis). Coral Reefs. 31 (2), 521-534 (2012).
  41. Imbs, A. Fatty acids and other lipids of corals: composition, distribution, and biosynthesis. Russian Journal of Marine Biology. 39 (3), 153-168 (2013).
  42. Rosset, S., et al. Lipidome analysis of Symbiodiniaceae reveals possible mechanisms of heat stress tolerance in reef coral symbionts. Coral Reefs. 38 (6), 1241-1253 (2019).
  43. Carreón-Palau, L., Parrish, C. C., Del Angel-Rodriguez, J. A., Perez-Espana, H. Seasonal shifts in fatty acids and sterols in sponges, corals, and bivalves, in a southern Gulf of Mexico coral reef under river influence. Coral Reefs. 40 (2), 571-593 (2021).
  44. Imbs, A. B., Dang, L. T. Seasonal dynamics of fatty acid biomarkers in the soft coral Sinularia flexibilis, a common species of Indo-Pacific coral reefs. Biochemical Systematics and Ecology. 96, 104246 (2021).
  45. Oku, H., Yamashiro, H., Onaga, K., Sakai, K., Iwasaki, H. Seasonal changes in the content and composition of lipids in the coral Goniastrea aspera. Coral Reefs. 22 (1), 83-85 (2003).
  46. Weis, V. M. Cell biology of coral symbiosis: foundational study can inform solutions to the coral reef crisis. Integrative and Comparative Biology. 59 (4), 845-855 (2019).
  47. Oakley, C., Davy, S., van Oppen, M., Lough, J. Cell biology of coral bleaching. Coral Bleaching. , 189-211 (2018).
  48. Lu, W., et al. Metabolite measurement: Pitfalls to avoid and practices to follow. Annual Review of Biochemistry. 86, 277-304 (2017).
  49. Lawson, C. A., et al. Heat stress decreases the diversity, abundance and functional potential of coral gas emissions. Global Change Biology. 27 (4), 879-891 (2021).
  50. Olander, A., et al. Comparative volatilomics of coral endosymbionts from one-and comprehensive two-dimensional gas chromatography approaches. Marine Biology. 168 (5), 76 (2021).
  51. Wuerz, M., et al. Symbiosis induces unique volatile profiles in the model cnidarian Aiptasia. Journal of Experimental Biology. 225 (19), (2022).
check_url/65628?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Matthews, J. L., Bartels, N., Elahee Doomun, S. N., Davy, S. K., De Souza, D. P. Gas Chromatography-Mass Spectrometry-Based Targeted Metabolomics of Hard Coral Samples. J. Vis. Exp. (200), e65628, doi:10.3791/65628 (2023).

View Video