Summary

En 3D-visualiseringsteknik för benremodellering i en suturexpansionsmusmodell

Published: August 18, 2023
doi:

Summary

Detta protokoll presenterar en standardiserad suturexpansionsmusmodell och en 3D-visualiseringsmetod för att studera de mekanobiologiska förändringarna i suturen och benombyggnad under dragkraftsbelastning.

Abstract

Kraniofaciala suturer spelar en avgörande roll utöver att vara fibrösa leder som förbinder kraniofaciala ben; De fungerar också som den primära nischen för kalvariell och ansiktsbentillväxt, och innehåller mesenkymala stamceller och osteoprogenitorer. Eftersom de flesta kraniofaciala ben utvecklas genom intramembranös förbening, fungerar suturernas marginella regioner som initieringspunkter. På grund av denna betydelse har dessa suturer blivit spännande mål i ortopediska terapier som fjäderassisterad kranialvalvsexpansion, snabb maxillär expansion och maxillär protraktion. Under ortopedisk spårningskraft aktiveras suturstamceller snabbt och blir en dynamisk källa för benombyggnad under expansion. Trots deras betydelse är de fysiologiska förändringarna under benombyggnadsperioder fortfarande dåligt förstådda. Traditionella snittningsmetoder, främst i sagittal riktning, fångar inte de omfattande förändringar som sker genom hela suturen. Denna studie etablerade en standardmusmodell för sagittal suturexpansion. För att fullt ut visualisera förändringar i benombyggnad efter suturexpansion kombinerades PEGASOS-vävnadsrensningsmetoden med helmonterad EdU-färgning och dubbelmärkning av kalciumkelatering. Detta möjliggjorde visualisering av celler med hög tillväxt och nybildning av ben över hela kalvarialbenet efter expansion. Detta protokoll erbjuder en standardiserad suturexpansionsmusmodell och en 3D-visualiseringsmetod, som belyser de mekanobiologiska förändringarna i suturer och benombyggnad under dragkraftsbelastning.

Introduction

Kraniofaciala suturer är fibrösa vävnader som förbinder kraniofaciala ben och spelar viktiga roller i tillväxten och ombyggnaden av kraniofaciala ben. Suturens struktur liknar en flod, vilket ger ett flöde av cellresurser för att ge näring och bygga “flodbanken”, känd som de osteogena fronterna, som bidrar till bildandet av kraniofaciala ben via intramembranös osteogenes1.

Intresset för kraniofaciala suturer har drivits av kliniska behov av att förstå för tidig stängning av kranialsuturer och ansiktssuturdysfunktion, vilket kan leda till kraniofaciala missbildningar och till och med livshotande tillstånd hos barn. Öppen suturektomi används rutinmässigt vid klinisk behandling, men långtidsuppföljning har visat ofullständiga återfall av benbildning hos vissa patienter2. Minimalinvasiv kraniotomi med hjälp av expansionsfjädrar eller endoskopisk ranjeektomi kan ge ett säkrare tillvägagångssätt för att bevara den potentiella suturen snarare än att kassera vävnaderna3. På liknande sätt har ortopediska terapier som ansiktsmasker och expansionsapparater använts i stor utsträckning för att behandla sagittal eller horisontell maxillär hypoplasi, med vissa studier som utvidgar åldersgränsen till att behandla vuxna patienter via miniskruvassisterade palatala expanders 4,5,6. Dessutom är kranial suturregenerering med mesenkymala stamceller (MSC) i kombination med biologiskt nedbrytbara material en potentiell terapi i framtiden, vilket erbjuder en ny riktning för behandling av relaterade sjukdomar7. Funktionsprocessen eller regleringsmekanismen för suturer är dock fortfarande svårfångad.

Benremodellering består huvudsakligen av en balans mellan benbildning utförd av osteoblaster och benresorption utförd av osteoklaster, där osteogen differentiering av stamceller stimulerad av mekaniska signaler spelar en viktig roll. Efter årtionden av forskning har det visat sig att kraniofaciala suturer är mycket plastiska mesenkymala stamcellsnischer8. Suturstamceller (SuSC) är en heterogen grupp av stamceller som tillhör mesenkymala stamceller (MSC) eller benstamceller (SSC). SuSC märks in vivo med fyra markörer, inklusive Gli1, Axin2, Prrx1 och Ctsk. Gli1+ SuSCs, i synnerhet, har strikt verifierat stamcellernas biologiska egenskaper, inte bara genom att uppvisa ett högt uttryck av typiska MSC-markörer utan också genom att uppvisa utmärkt osteogen och kondrogen potential9. Tidigare forskning har visat att Gli1+ SuSC aktivt bidrar till nybildning av ben under dragkraft, och identifierar dem som suturstamcellskällan som stöder distraktionsosteogenes10.

Tidigare har omfattande mekaniska egenskaper hos stamceller studerats in vitro via Flexcell, fyrpunktsböjning, mikromagnetladdningssystem och andra. Även om mesenkymala celler från mösskraniella suturer har identifierats in vitro11, och humana suturmesenkymala stamceller också har isolerats nyligen12, är suturkurcellernas biomekaniska respons fortfarande oklar i in vitro-systemet. För att ytterligare undersöka benremodelleringsprocessen har en suturexpansionsmodell baserad på isolerad calvaria-organkultur etablerats, vilket banar väg för att etablera en användbar in vivo suturexpansionsmodell 1,13. Kaniner14 och råttor15 har varit de mest använda djuren i grundforskning för suturexpansion. Möss är dock föredragna djurmodeller för att utforska mänskliga sjukdomar på grund av deras mycket homologa genom med människor, många genmodifieringslinjer och starka reproduktiva hybridiseringsförmåga. Befintliga musmodeller av kranial suturexpansion förlitar sig vanligtvis på ortodontiska fjädertrådar av rostfritt stål för att applicera dragkraft på den sagittala suturen16,17. I dessa modeller görs två hål på varje sida av parietalbenen för att fixera expansionsanordningen, och trådarna är inbäddade under huden, vilket kan påverka cellaktiveringsläget.

När det gäller visualiseringsmetoden har den tvådimensionella observationen av skivor i sagittal riktning varit allmänt antagen i årtionden. Men med tanke på att benremodellering är en komplex tredimensionell dynamisk process har det blivit ett akut behov att få fullständig tredimensionell information. PEGASOS-tekniken för vävnadstransparens visade sig uppfylla detta krav18,19. Det erbjuder unika fördelar för transparensen hos hårda och mjuka vävnader, vilket gör att hela benombyggnadsprocessen kan reproduceras i tredimensionellt utrymme.

För att få en djupare och mer omfattande förståelse för de fysiologiska förändringarna i benombyggnadsperioderna etablerades en standard sagittal suturexpansionsmusmodell med en fjäderinställning mellan de handgjorda hållarna10. Med en standardiserad syraetsning och bindningsprocedur kan expansionsanordningen bindas ordentligt till kranialbenet, vilket genererar en dragkraft vinkelrätt mot den sagittala suturen. Vidare tillämpades PEGASOS-vävnadsrensningsmetoden efter dubbelmärkning av det mineraliserade benet efter expansion för att fullt ut visualisera benmodelleringsförändringarna efter suturexpansion.

Protocol

Alla experimentella procedurer som beskrivs här har godkänts av Animal Care Committee of Shanghai Ninth People’s Hospital, Shanghai Jiao Tong University School of Medicine (SH9H-2023-A616-SB). 4 veckor gamla C57BL/6 hanmöss användes i denna studie. Alla instrument som användes steriliserades före ingreppet. 1. Förberedelse av suturexpansionsmodellen Förberedelse av två retentionshållare.Använd 0,014 ” australisk tråd eller tråd av rostfritt stå…

Representative Results

Med hjälp av detta protokoll har en musmodell för sagittal suturexpansion etablerats (Figur 1-2). För 3D-visualisering av förändringar i benmodellering efter suturexpansion tillämpades PEGASOS-vävnadsrensningsmetoden på hela kalvarbenen efter expansion. Efter perfusion separerades kalvarben (Figur 3A) och den lämpliga PEGASOS-processen fortsatte (Tabell 1 och Tabell 2). Anmärkningsvär…

Discussion

Vi tillämpade en standardmodell av suturexpansionsmus för att observera de regelbundna morfologiska förändringar som sker varje vecka under hela den månadslånga ombyggnadscykeln10. Denna modell är användbar för att forska om kalvvariell benremodellering och regenerering genom att expandera kalvvariala suturer, samt för att studera olika suturceller in vivo. För att fullt ut presentera resultaten av sådan forskning behövs tredimensionell visualisering av färgade vävnader. D?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar för laboratorieplattformen och hjälpen från Ear Institute, Shanghai Jiaotong University School of Medicine. Detta arbete stöddes av Shanghai Pujiang Program (22PJ1409200); Kinas nationella naturvetenskapliga stiftelse (nr 11932012); Postdoktoral vetenskaplig forskningsstiftelse vid Shanghai Ninth People’s Hospital, Shanghai Jiao Tong University School of Medicine; Finansiering av grundforskningsprogram för Ninth People’s Hospital som är anslutet till Shanghai Jiao Tong University School of Medicine (JYZZ154).

Materials

37% Acid etching Xihubiom E10-02/1807011
Alizarin red Sigma-Aldrich A3882
AUSTRALIAN WIRE A.J.WILCOCK 0.014''
Benzyl benzoate Sigma-Aldrich B6630
Calcein green Sigma-Aldrich C0875
Copper(II) sulfate, anhydrous Sangon Biotech A603008
Dynamometer Sanliang SF-10N
EDTA Sigma-Aldrich E9884
EdU Invitrogen E104152
Laser Confocal Microscope Leica SP8
PBS Sangon Biotech E607008
PEG-MMA 500 Sigma-Aldrich 447943
PFA Sigma-Aldrich P6148 
pH Meters Mettler Toledo S220
Quadrol Sigma-Aldrich 122262
Sodium Ascorbate Sigma-Aldrich A4034
Sodium bicarbonate Sangon Biotech A500873
Sodium chloride Sangon Biotech A610476
Sodium hydroxide Sigma-Aldrich S5881
Spring TAOBAO 0.2*1.5*1*7
Sulfo-Cyanine3 azide Lumiprobe A1330
tert-Butanol Sigma-Aldrich 360538  Protect from light. Do not freeze.
Transbond MIP
Moisture Insensitive Primer
3M Unitek 712-025
Transbond XT
Light Cure Adhesive Paste
3M Unitek 712-035
Triethanolamine Sigma-Aldrich V900257
Tris-buffered saline Sangon Biotech A500027

References

  1. Opperman, L. A. Cranial sutures as intramembranous bone growth sites. Developmental Dynamics. 219 (4), 472-485 (2000).
  2. Thenier-Villa, J. L., Sanromán-Álvarez, P., Miranda-Lloret, P., Plaza Ramírez, M. E. Incomplete reossification after craniosynostosis surgery-incidence and analysis of risk factors: a clinical-radiological assessment study. Journal Of Neurosurgery-pediatrics. 22 (2), 120-127 (2018).
  3. Markiewicz, M. R., Recker, M. J., Reynolds, R. M. Management of sagittal and lambdoid craniosynostosis: open cranial vault expansion and remodeling. Oral And Maxillofacial Surgery Clinics Of North America. 34 (3), 395-419 (2022).
  4. Mao, J. J., Wang, X., Kopher, R. A. Biomechanics of craniofacial sutures: orthopedic implications. Angle Orthodontist. 73 (2), 128-135 (2003).
  5. Shayani, A., Sandoval Vidal, P., Garay Carrasco, I., Merino Gerlach, M. Midpalatal suture maturation method for the assessment of maturation before maxillary expansion: a systematic review. Diagnostics (Basel). 12 (11), 2774 (2022).
  6. Suzuki, H., et al. Miniscrew-assisted rapid palatal expander (MARPE): the quest for pure orthopedic movement. Dental Press Journal Of Orthodontics. 21 (4), 17-23 (2016).
  7. Yu, M., et al. Cranial suture regeneration mitigates skull and neurocognitive defects in craniosynostosis. Cell. 184 (1), 243-256 (2021).
  8. Roth, D. M., Souter, K., Graf, D. Craniofacial sutures: Signaling centres integrating mechanosensation, cell signaling, and cell differentiation. European Journal of Cell Biology. 101 (3), 151258 (2022).
  9. Zhao, H., et al. The suture provides a niche for mesenchymal stem cells of craniofacial bones. Nature Cell Biology. 17 (4), 386-396 (2015).
  10. Jing, D., et al. Response of Gli1(+) suture stem cells to mechanical force upon suture expansion. Journal of Bone And Mineral Research. 37 (7), 1307-1320 (2022).
  11. Xu, Y., Malladi, P., Chiou, M., Longaker, M. T. Isolation and characterization of posterofrontal/sagittal suture mesenchymal cells in vitro. Plastic and Reconstructive Surgery. 119 (3), 819-829 (2007).
  12. Kong, L., et al. Isolation and characterization of human suture mesenchymal stem cells in vitro. International Journal of Stem Cells. 13 (3), 377-385 (2020).
  13. Ikegame, M., et al. Tensile stress induces bone morphogenetic protein 4 in preosteoblastic and fibroblastic cells, which later differentiate into osteoblasts leading to osteogenesis in the mouse calvariae in organ culture. Journal of Bone And Mineral Research. 16 (1), 24-32 (2001).
  14. Liu, S. S., Opperman, L. A., Buschang, P. H. Effects of recombinant human bone morphogenetic protein-2 on midsagittal sutural bone formation during expansion. American Journal of Orthodontics And Dentofacialorthopedics. 136 (6), 768-769 (2009).
  15. Liang, W., Ding, P., Li, G., Lu, E., Zhao, Z. Hydroxyapatite nanoparticles facilitate osteoblast differentiation and bone formation within sagittal suture during expansion in rats. Drug Design Development and Therapy. 15, 905-917 (2021).
  16. Morinobu, M., et al. Osteopontin expression in osteoblasts and osteocytes during bone formation under mechanical stress in the calvarial suture in vivo. Journal of Bone And Mineral Research. 18 (9), 1706-1715 (2003).
  17. Hwang, S., Chung, C. J., Choi, Y. J., Kim, T., Kim, K. H. The effect of cetirizine, a histamine 1 receptor antagonist, on bone remodeling after calvarial suture expansion. Korean Journal of Orthodontics. 50 (1), 42-51 (2020).
  18. Jing, D., et al. Tissue clearing of both hard and soft tissue organs with the PEGASOS method. Cell Research. 28 (8), 803-818 (2018).
  19. Jing, D., et al. Tissue clearing and its application to bone and dental tissues. Journal of Dental Research. 98 (6), 621-631 (2019).
  20. Luo, W., et al. Investigation of postnatal craniofacial bone development with tissue clearing-based three-dimensional imaging. Stem Cells Development. 28 (19), 1310-1321 (2019).
check_url/65709?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Ding, Z., Li, R., Duan, Y., Li, Z., Fang, B., Jing, D. A 3-D Visualization Technique for Bone Remodeling in a Suture Expansion Mouse Model. J. Vis. Exp. (198), e65709, doi:10.3791/65709 (2023).

View Video