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Methodenartikel

Chemische affinitätsbasierte Isolierung extrazellulärer Vesikel aus Bioflüssigkeiten für die Proteomik- und Phosphoproteomik-Analyse

3.8K Aufrufe

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DOI:

10.3791/65844

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27. Oktober 2023

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Das vorliegende Protokoll enthält detaillierte Beschreibungen für die effiziente Isolierung von extrazellulären Vesikeln im Urin unter Verwendung funktionalisierter magnetischer Beads. Darüber hinaus umfasst es nachfolgende Analysen, einschließlich Western Blotting, Proteomik und Phosphoproteomik.

Zusammenfassung

Extrazelluläre Vesikel (EVs) aus Bioflüssigkeiten haben in jüngster Zeit im Bereich der Flüssigbiopsie große Aufmerksamkeit erlangt. Sie werden von fast allen Zelltypen freigesetzt, liefern eine Echtzeit-Momentaufnahme der Wirtszellen und enthalten eine Fülle molekularer Informationen, darunter Proteine, insbesondere solche mit posttranslationalen Modifikationen (PTMs) wie Phosphorylierung, als Hauptakteur der zellulären Funktionen und des Ausbruchs und Fortschreitens von Krankheiten. Die Isolierung von Elektrofahrzeugen aus Bioflüssigkeiten ist jedoch aufgrund der geringen Ausbeuten und Verunreinigungen der derzeitigen Isolationsmethoden für Elektrofahrzeuge nach wie vor eine Herausforderung, was die nachgelagerte Analyse von EV-Fracht, wie z. B. EV-Phosphoproteinen, erschwert. Hier beschreiben wir eine schnelle und effektive EV-Isolierungsmethode, die auf funktionalisierten magnetischen Beads für die EV-Isolierung aus Bioflüssigkeiten wie menschlichem Urin und der nachgeschalteten Proteomik- und Phosphoproteomik-Analyse nach der EV-Isolierung basiert. Das Protokoll ermöglichte eine hohe Rückgewinnungsausbeute von EVs im Urin und empfindliche Profile des EV-Proteoms und Phosphoproteoms. Darüber hinaus werden hier auch auf die Vielseitigkeit dieses Protokolls und relevante technische Überlegungen eingegangen.

Einleitung

Extrazelluläre Vesikel (EVs) sind membranverkapselte Nanopartikel, die von allen Arten von Zellen abgesondert werden und in Bioflüssigkeiten wie Blut, Urin, Speichel usw. vorhanden sind.1,2,3,4. EVs tragen eine Ladung verschiedener bioaktiver Moleküle, die den physiologischen und pathologischen Zustand ihrer Wirtszellen widerspiegeln und daher als entscheidende Faktoren für das Fortschreiten der Krankheit fungieren 4,5,6. Darüber hinaus haben umfang....

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Protokoll

Alle Urinproben wurden von gesunden Probanden nach Einverständniserklärung entnommen. Die Experimente entsprachen allen ethischen Standards mit menschlichen Proben und den Richtlinien des Purdue University Human Research Protection Program.

1. Probenentnahme

  1. Zentrifugieren Sie 12 ml Urinprobe in einem konischen 15-ml-Zentrifugenröhrchen für 10 Minuten bei 2.500 x g, 4 °C, um Zelltrümmer und große apoptotische Körper zu entfernen.
  2. 10 ml des Überstandes in ein neues 15-ml-Röhrchen überführen und mit der EV-Isolierung fortfahren.
    HINWEIS: Das Protokoll kann hier pausiert werden, und die Proben k....

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Ergebnisse

Dieses Protokoll demonstriert einen umfassenden Arbeitsablauf von der Isolierung von EVs bis hin zu nachgeschalteten Proteomik- und Phosphoproteomik-Analysen (Abbildung 1). Die dreifachen Urinproben wurden einer EV-Isolierung unterzogen. Die isolierten EVs wurden mittels Western Blot charakterisiert und anschließend für die massenspektrometriebasierte Proteomik-Probenvorbereitung einschließlich Proteinextraktion, enzymatischer Verdauung und Peptidaufreinigung verarbeitet. Für die Phosphoprot.......

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Diskussion

Eine effektive EV-Isolierung ist eine wesentliche Voraussetzung für den Nachweis von Proteinen und Phosphoproteinen mit geringer Häufigkeit in EVs. Trotz der Entwicklung zahlreicher Methoden, um diesen Bedarf zu decken, leidet die Mehrheit immer noch unter Einschränkungen wie schlechter Erholung oder geringer Reproduzierbarkeit, die ihren Einsatz in groß angelegten Studien und klinischen Routineumgebungen behindern. DUC wird im Allgemeinen als die gebräuchlichste Methode zur Isolierung von Elektrofahrzeugen angesehen, un.......

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Offenlegungen

Die Autoren erklären ein konkurrierendes finanzielles Interesse. Anton Iliuk und W. Andy Tao sind Mitbegründer von Tymora Analytical Operations, einem Unternehmen, das EVtrap-Beads entwickelt und das PolyMAC-Phosphopeptid-Anreicherungskit auf den Markt gebracht hat.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde zum Teil durch die NIH-Zuschüsse 3RF1AG064250 und R44CA239845 finanziert.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
1,5 mL MikrozentrifugenröhrchenLife Science ProductsM-1700C-LB
1,5 mL Röhrchen MagnetabscheidergestellSergi Lab Supplies1005
15 mL konisches ZentrifugenröhrchenCorning 
15-ml-Röhrchen-MagnetabscheidergestellSergi Lab Supplies1002
Anti-Kaninchen-IgG, HRP-verknüpfteAntikörper-Zellsignaltechnologie7074P2
Tischschüttler mit InkubationBioerDIS-87999-3367802Bioer Thermocell Mischblock MB-101
CD9 (D3H4P) Kaninchen-mAb-Zellsignaltechnologie13403S
ChloracetamidSigma-AldrichC0267-100GWird zur Alkylierung von reduzierten Sulfidgruppen verwendet. 400 mM in Wasser als Stammlösung frisch zubereiten.
Ethylacetat Fisher Wissenschaftlich E145-4Fällt Reinigungsmittel
Evosep One EvosepFlüssigchromatographie-System
EvotipsEvosepEV2013Probenbeladung für Evosep One System 
EVtrapTymora AnalyticalFunktionalisierte magnetische Kügelchen, Ladepuffer und Waschpuffer 
Immobilon-FL PVDF-MembranSigma -AldrichIPFL00010Blotting-Membran 
NuPAGE 4-12% Bis-Tris GelInvitrogenNP0322BOXInvitrogen NuPAGE 4 bis 12%, Bis-Tris, 1,0 mm, Mini Protein Gel, 12-well
NuPAGE LDS Probenpuffer (4X)InvitrogenNP0007
PBSThermoFisher10010023
Pepsep C18 15 x 75 x 1,9Bruker 1893473Trennsäule 
Phosphatase-Inhibitor Cocktail 2Sigma-AldrichP5726-5ML100X, Phosphotase-Inhibitor.
Phosphatase-Inhibitor-Cocktail 3Sigma -AldrichP0044-1ML100X,  Phosphotase-Hemmer.
Pierce BCA Protein Assay KitThermoFisher23225
Pierce ECL Western Blotting SubstratThermoFisher32106HRP Substrat 
PolyMAC Phosphopeptid-AnreicherungskitTymora AnalyticalPolymer-based Metallionen-Affinitätserfassung (PolyMAC) für die Phosphopeptid-Anreicherung
Natriumdesoxycholat Sigma -AldrichD6750-10GReinigungsmittel für Lysepuffer. Bereiten Sie 120 mM in Wasser als Stammlösung vor.
Natriumlauroylsarkosinat Sigma -AldrichL9150-50GReinigungsmittel für Lysepuffer. Bereiten Sie 120 mM in Wasser als Stammlösung vor.
timsTOF HTBrukerIonen-Mobilität Flugzeit-Massenspektrometrie mit gefangenen
Ionen TopTip C-18 (10-200 μ L) Tipps GlygenTT2C18.96Entsalzungsmethode
TriethylaminSigma -Aldrich471283-100MLFür die EV-Elution. 
Triethylammoniumbicabonat-PufferSigma -AldrichT7408-100ML1 M
TrifluoressigsäureSigma -Aldrich302031-100ML
Tris-(2-carboxyethyl)phosphinhydrochloridSigma -AldrichC4706Wird zur Reduktion von Disulfidbindungen verwendet. Bereiten Sie 200 mM in Wasser als Stammlösung vor. Aliquotieren Sie die Stammlösung in ein kleines Volumen und lagern Sie sie bei -20 Grad; C (mehrfache Frost-Tau-Zyklen vermeiden).
Trypsin/Lys-C MIXThermoFisherPIA41007
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Referenzen

  1. Abels, E. R., Breakefield, X. O. Introduction to extracellular vesicles: Biogenesis, RNA cargo selection, content, release, and uptake. Cell Mol Neurobiol. 36 (3), 301-312 (2016).
  2. Maacha, S., et al.

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Nachdrucke und Genehmigungen

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