Summary

Murine Chimeric Antigen Receptor (CAR)-T Cells को कुशल उत्पादन

Published: February 02, 2024
doi:

Summary

यह प्रोटोकॉल रेट्रोवायरल वेक्टर उत्पादन और murine टी सेल पारगमन को सुव्यवस्थित करता है, माउस CAR-T कोशिकाओं की कुशल पीढ़ी की सुविधा प्रदान करता है।

Abstract

काइमेरिक एंटीजन रिसेप्टर (सीएआर) -टी कोशिकाओं का उपयोग करने वाले इंजीनियर सेल थेरेपी ने हेमटोलॉजिकल विकृतियों वाले व्यक्तियों में उल्लेखनीय प्रभावशीलता हासिल की है और वर्तमान में विविध ठोस ट्यूमर के उपचार के लिए विकास के दौर से गुजर रहे हैं। अब तक, उपन्यास CAR-T सेल उत्पादों का प्रारंभिक मूल्यांकन मुख्य रूप से इम्यूनोडेफिशिएंसी चूहों का उपयोग करके xenograft ट्यूमर मॉडल में हुआ है। इस दृष्टिकोण प्रयोगात्मक सेटिंग में मानव CAR-T कोशिकाओं के सफल engraftment की सुविधा के लिए चुना जाता है. हालांकि, सिनजेनिक माउस मॉडल, जिसमें ट्यूमर और सीएआर-टी कोशिकाएं एक ही माउस तनाव से प्राप्त होती हैं, एक कार्यात्मक प्रतिरक्षा प्रणाली और व्यापक ट्यूमर माइक्रोएन्वायरमेंट (टीएमई) के संदर्भ में नई सीएआर प्रौद्योगिकियों के मूल्यांकन की अनुमति देती हैं। यहाँ वर्णित प्रोटोकॉल रेट्रोवायरल पारगमन और पूर्व विवो टी सेल संस्कृति के लिए मानकीकृत तरीकों को पेश करके माउस CAR-T सेल पीढ़ी की प्रक्रिया को कारगर बनाने के उद्देश्य से है. इस प्रोटोकॉल में वर्णित विधियों को प्रतिरक्षा-सक्षम प्रणालियों में नई सीएआर प्रौद्योगिकियों के नियमित मूल्यांकन को सक्षम करने के लिए इस अध्ययन में उपयोग किए जाने वाले लोगों से परे अन्य सीएआर निर्माणों पर लागू किया जा सकता है।

Introduction

चिमेरिक एंटीजन रिसेप्टर्स (सीएआर) को व्यक्त करने वाले दत्तक टी सेल थेरेपी ने विशेष रूप से एंटीजन-पॉजिटिवकैंसर कोशिकाओं को लक्षित करने और खत्म करने के लिए अनुकूली प्रतिरक्षा प्रणाली की शक्ति का उपयोग करके कैंसर इम्यूनोथेरेपी के क्षेत्र में क्रांति ला दी है। जबकि बी सेल दुर्दमताओं को लक्षित करने वाले सीएआर-टी सेल थेरेपी की सफलता को चिकित्सकीय रूप से मान्य किया गया है, पशु मॉडल में किए गए प्रीक्लिनिकल अध्ययन ठोस ट्यूमर को लक्षित करने वाले नए सीएआर के विकास के लिए महत्वपूर्ण हैं। हालांकि, सीमित नैदानिक प्रभावकारिता ठोस ट्यूमर संकेत इस प्रकार अब तक में प्रदर्शन किया गया है, और यह तेजी से स्पष्ट हो रहा है कि व्यक्तिगत preclinical मॉडल सही pharmacodynamics और एक जीवित दवा 2,3 की नैदानिक प्रभावकारिता की भविष्यवाणी नहीं करते. इसलिए, जांचकर्ताओं ने क्रमशः मानव और murine कैंसर के xenograft और syngeneic मॉडल में समानांतर आकलन शामिल करने के लिए CAR-T सेल उत्पादों के प्रीक्लिनिकल अध्ययन का विस्तार करना शुरू कर दिया है।

ज़ेनोग्राफ्ट मॉडल के विपरीत, जहां मानव ट्यूमर और टी कोशिकाओं को इम्यूनोडेफिशिएंसी चूहों में उकेरा जाता है, सिनजेनिक मॉडल एक कार्यात्मक प्रतिरक्षा प्रणाली के संदर्भ में सीएआर-टी सेल प्रतिक्रियाओं की परीक्षा को सक्षम करते हैं। विशेष रूप से, प्रतिरक्षा-सक्षम चूहों असर syngeneic ट्यूमर दत्तक स्थानांतरित टी कोशिकाओं और संदर्भ-विशिष्ट milieus के बीच बातचीत का अध्ययन करने के लिए एक प्रणाली प्रदान – ट्यूमर जुड़े मैक्रोफेज (टीएएम) और नियामक टी कोशिकाओं (Tregs) ट्यूमर microenvironment (टीएमई)4,5,6 में टी सेल समारोह को दबाने के लिए जाना जाता है. इसके अलावा, syngeneic मॉडल पर लक्ष्य का आकलन करने के लिए एक अतिरिक्त मंच की पेशकश, ऑफ-ट्यूमर विषाक्तता, और मेजबान कारकों है कि अतिरिक्त विषाक्तता के लिए नेतृत्व कर सकते हैं के साथ CAR-T सेल बातचीत, साइटोकिन रिलीज सिंड्रोम7 सहित.

इन फायदों के बावजूद, syngeneic CAR-T सेल अध्ययन की संख्या सीमित रहती है। विशेष रूप से, syngeneic मॉडल एक ही माउस तनाव से CAR-T कोशिकाओं के ऑटोलॉगस इंजीनियरिंग की आवश्यकता होती है और इस प्रकार कुशल murine टी सेल पारगमन और पूर्व vivo विस्तार 2,8 के लिए कार्यप्रणाली की कमी के कारण एक अतिरिक्त चुनौती पेश करते हैं. यह प्रोटोकॉल रेट्रोवायरल वैक्टर के उत्पादन और अनुकूलित टी सेल पारगमन के माध्यम से स्थिर कार अभिव्यक्ति प्राप्त करने के तरीकों की रूपरेखा तैयार करता है। पूरी प्रक्रिया का एक योजनाबद्ध चित्रा 1 में दिखाया गया है. इस दृष्टिकोण का उपयोग murine CAR-T कोशिकाओं के कुशल रेट्रोवायरल पारगमन और ultracentrifugation के माध्यम से वायरल एकाग्रता की आवश्यकता के बिना उच्च कार अभिव्यक्ति की उपलब्धि को दर्शाता है। सीएआर निर्माण की एंटीजन-विशिष्टता को बदलने के लिए रणनीतियों पर अतिरिक्त ट्रांसजीन की सह-अभिव्यक्ति के अलावा चर्चा की जाती है।

Protocol

सभी पशु प्रक्रियाओं संस्थागत पशु की देखभाल और उपयोग समिति से अनुमोदन के साथ प्रदर्शन किया गया (कोलंबिया विश्वविद्यालय, प्रोटोकॉल एसी AABQ5551 और एसी-AAAZ4470) 6-8 सप्ताह पुरानी महिला BALB / सी या CF57BL / 6 चूहों के बीच वजन 20-2…

Representative Results

यहाँ वर्णित प्रोटोकॉल माउस CAR-T कोशिकाओं की पीढ़ी के लिए murine टी सेल पारगमन की प्रक्रिया मानकीकृत करना है. चित्रा 1 शामिल चरणों का विस्तृत विवरण प्रदान करता है। प्रक्रिया फीनिक्स इको कोशिकाओं म…

Discussion

यह प्रोटोकॉल विवो अध्ययनों में CAR-T कोशिकाओं को उत्पन्न करने के लिए murine T कोशिकाओं के रेट्रोवायरल पारगमन के लिए आवश्यक चरणों और अभिकर्मकों का वर्णन करता है। रेट्रोवायरल ट्रांसडक्शन स्थितियों का अनु?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम पांडुलिपि की महत्वपूर्ण समीक्षा के लिए एल ब्रॉकमैन को धन्यवाद देते हैं। यह काम एनआईएच 1R01EB030352 और UL1 TR001873 द्वारा समर्थित किया गया था।

Materials

0.45 μm filters MilliporeSigma SLHVR33RS
1 mL syringe  Fisher Scientific  14-955-450
1.5 mL microcentrifuge tubes  Fisher Scientific  05-408-135
10 mL syringe  BD 14-823-16E
100 μm strainer Corning 07-201-432
15 cm TC treated cell culture dishes ThermoFisher Scientific  130183
15 mL conical tubes  Falcon 14-959-70C
40 μm strainer  Corning 07-201-430
50 mL conical tubes  Falcon 14-959-49A
70 μm strainer Corning 07-201-431
Attune NxT Flow Cytometer  ThermoFisher Scientific 
BALB/C, 6-8 week old  Jackson Laboratory 651
B-Mercaptoethanol  Gibco 21985023
Bovine Serum Albumin  GOLDBIO A-420-500
DMEM Medium Gibco 11965092
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (PBS), without Calcium and Magnesium  Gibco 14-190-250
DynaMag-2 Magnet  Invitrogen 12-321-D
EasySep Magnet  Stemcell Technologies 18000
EasySep Mouse T cell Isolation Kit Stemcell Technologies 19851
FACS buffer  BD BDB554657
Fetal bovine serum (FBS)  Corning MT35011CV
GlutaMAX Gibco 35-050-061
G-Rex6 Wilson Wolf 80240M 
HEPES Buffer Solution  Gibco 15-630-080
Human recombinant IL-15  Miltenyi Biotec 130-095-765
Human recombinant IL-2 Miltenyi Biotec 130-097-748
Human recombinant IL-7 Miltenyi Biotec 130-095-363
Lipofectamine 3000 Invitrogen L3000008
MEM Non-Essential Amino Acids Solution  Gibco 11140-050
Mouse Anti-CD3 BV421 Biolegend 100228
Mouse Anti-CD3/CD28 Dynabeads Gibco 11-453-D
Mouse Anti-CD4 BV605 BD 563151
Mouse Anti-CD44 APC  Biolegend 103011
Mouse Anti-CD62L PE-Cy7 Tonbo SKU 60-0621-U025
Mouse Anti-CD8 APC-Cy7 Tonbo SKU 25-0081-U025
Nikon Ti2 with Prime 95B camera  Nikon
Non-treated 24 well plates  CytoOne CC7672-7524
Opti-MEM Gibco 31-985-062
pCL-Eco Addgene #12371
Penicillin/Streptomycin Solution Gibco 15-070-063
Phoenix Eco cells ATCC CRL-3214
pMDG.2 Addgene #12259
pMSCV_PGK_GFP28z N/A Produced by R.LV.
Purified sfGFP N/A Produced by R.LV.
RetroNectin ('transduction reagent') Takara Bio T100B
RPMI 1640 Gibco 21875
Serological pipette 10 mL Fisher Scientific  13-678-11E
Serological pipette 25 mL Fisher Scientific  13-678-11
Serological pipette 5 mL Fisher Scientific  13-678-11D
Sodium Pyruvate Gibco 11-360-070
TC-treated 24 well plates  Corning 08-772-1
Trypan blue  Gibco 15-250-061

References

  1. June, C. H., Sadelain, M. Chimeric antigen receptor therapy. N Engl J Med. 379 (1), 64-73 (2018).
  2. Duncan, B. B., Dunbar, C. E., Ishii, K. Applying a clinical lens to animal models of car-t cell therapies. Mol Ther Methods Clin Dev. 27, 17-31 (2022).
  3. Hou, A. J., Chen, L. C., Chen, Y. Y. Navigating CAR-T cells through the solid-tumour microenvironment. Nat Rev Drug Discov. 20 (7), 531-550 (2021).
  4. Campesato, L. F., et al. Blockade of the ahr restricts a treg-macrophage suppressive axis induced by l-kynurenine. Nat Commun. 11 (1), 4011 (2020).
  5. Kaneda, M. M., et al. Pi3kgamma is a molecular switch that controls immune suppression. Nature. 539 (7629), 437-442 (2016).
  6. Hyrenius-Wittsten, A., Roybal, K. T. Paving new roads for cars. Trends Cancer. 5 (10), 583-592 (2019).
  7. Giavridis, T., et al. CAR T cell-induced cytokine release syndrome is mediated by macrophages and abated by il-1 blockade. Nat Med. 24 (6), 731-738 (2018).
  8. Lanitis, E., et al. Optimized gene engineering of murine CAR-T cells reveals the beneficial effects of il-15 coexpression. J Exp Med. 218 (2), e20192203 (2021).
  9. Lambeth, C. R., White, L. J., Johnston, R. E., De Silva, A. M. Flow cytometry-based assay for titrating dengue virus. J Clin Microbiol. 43 (7), 3267-3272 (2005).
  10. Agarwal, S., Wellhausen, N., Levine, B. L., June, C. H. Production of human crispr-engineered CAR-T cells. J Vis Exp. 169, e62299 (2021).
  11. JoVE Science Education Database. Lab Animal Research. Sterile Tissue Harvest. , (2023).
  12. Giordano-Attianese, G., et al. A computationally designed chimeric antigen receptor provides a small-molecule safety switch for t-cell therapy. Nat Biotechnol. 38 (4), 426-432 (2020).
  13. Kuhn, N. F., et al. Cd40 ligand-modified chimeric antigen receptor T cells enhance antitumor function by eliciting an endogenous antitumor response. Cancer Cell. 35 (3), 473-488.e6 (2019).
  14. Jin, C., Ma, J., Ramachandran, M., Yu, D., Essand, M. CAR T cells expressing a bacterial virulence factor trigger potent bystander antitumour responses in solid cancers. Nat Biomed Eng. 6 (7), 830-841 (2022).
  15. Kurachi, M., et al. Optimized retroviral transduction of mouse T cells for in vivo assessment of gene function. Nat Protoc. 12 (9), 1980-1998 (2017).
  16. Jafarzadeh, L., Masoumi, E., Fallah-Mehrjardi, K., Mirzaei, H. R., Hadjati, J. Prolonged persistence of chimeric antigen receptor (CAR) T cell in adoptive cancer immunotherapy: Challenges and ways forward. Front Immunol. 11, 702 (2020).
  17. Elkassar, N., Gress, R. E. An overview of IL-7 biology and its use in immunotherapy. J Immunotoxicol. 7 (1), 1-7 (2010).
  18. Osinalde, N., et al. Simultaneous dissection and comparison of IL-2 and IL-15 signaling pathways by global quantitative phosphoproteomics. Proteomics. 15 (2-3), 520-531 (2015).
  19. Eremenko, E., et al. An optimized protocol for the retroviral transduction of mouse CD4 T cells. STAR Protoc. 2 (3), 100719 (2021).
  20. Lewis, M. D., et al. A reproducible method for the expansion of mouse CD8+ T lymphocytes. J Immunol Methods. 417, 134-138 (2015).
check_url/65887?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Vincent, R. L., Li, F., Ballister, E. R., Arpaia, N., Danino, T. Efficient Generation of Murine Chimeric Antigen Receptor (CAR)-T Cells. J. Vis. Exp. (204), e65887, doi:10.3791/65887 (2024).

View Video