Summary

Rekonstruktion af blod-hjerne-barrieren in vitro til modellering og terapeutisk målretning af neurologisk sygdom

Published: October 20, 2023
doi:

Summary

Blod-hjerne-barrieren (BBB) spiller en afgørende rolle for at opretholde et stabilt og sundt hjernemiljø. BBB dysfunktion er forbundet med mange neurologiske sygdomme. Vi har udviklet en 3D, stamcelleafledt model af BBB for at undersøge cerebrovaskulær patologi, BBB-integritet, og hvordan BBB ændres af genetik og sygdom.

Abstract

Blod-hjerne-barrieren (BBB) er en vigtig fysiologisk komponent i centralnervesystemet (CNS), opretholder næringsstoffer, rydder affald og beskytter hjernen mod patogener. BBB’s iboende barriereegenskaber udgør en udfordring for terapeutisk lægemiddellevering til CNS til behandling af neurologiske sygdomme. Nedsat BBB-funktion har været relateret til neurologisk sygdom. Cerebral amyloid angiopati (CAA), aflejring af amyloid i cerebral vaskulatur, der fører til en kompromitteret BBB, er en co-morbiditet i de fleste tilfælde af Alzheimers sygdom (AD), hvilket tyder på, at BBB dysfunktion eller nedbrydning kan være involveret i neurodegeneration. På grund af begrænset adgang til humant BBB-væv forbliver de mekanismer, der bidrager til korrekt BBB-funktion og BBB-degeneration, ukendte. For at løse disse begrænsninger har vi udviklet en human pluripotent stamcelleafledt BBB (iBBB) ved at inkorporere endotelceller, pericytter og astrocytter i en 3D-matrix. iBBB samler sig selv for at rekapitulere anatomien og cellulære interaktioner, der findes i BBB. Såning af iBBB’er med amyloid fanger nøgleaspekter af CAA. Derudover tilbyder iBBB en fleksibel platform til at modulere genetiske og miljømæssige faktorer, der er involveret i cerebrovaskulær sygdom og neurodegeneration, for at undersøge, hvordan genetik og livsstil påvirker sygdomsrisikoen. Endelig kan iBBB bruges til lægemiddelscreening og medicinalkemiske undersøgelser for at optimere terapeutisk levering til CNS. I denne protokol beskriver vi differentieringen af de tre typer celler (endotelceller, pericytter og astrocytter), der stammer fra humane pluripotente stamceller, hvordan man samler de differentierede celler i iBBB, og hvordan man modellerer CAA in vitro ved hjælp af eksogent amyloid. Denne model overvinder udfordringen med at studere levende menneskeligt hjernevæv med et system, der har både biologisk troskab og eksperimentel fleksibilitet, og muliggør forhør af den menneskelige BBB og dens rolle i neurodegeneration.

Introduction

Blod-hjerne-barrieren (BBB) er et vigtigt mikrovaskulært netværk, der adskiller centralnervesystemet (CNS) fra periferien for at opretholde et ideelt miljø for korrekt neuronal funktion. Det har en kritisk rolle i reguleringen af tilstrømning og udstrømning af stoffer til CNS ved at opretholde metabolisk homeostase 1,2,3,4, rydde affald 4,5,6 og beskytte hjernen mod patogener og toksiner 7,8.

Den primære celletype af BBB er endotelcellen (EC). Endotelceller, der stammer fra mesoderm-slægten, danner væggene i vaskulaturen 1,9. Mikrovaskulære EC’er danner tætte kryds med hinanden for i høj grad at reducere permeabiliteten af deres membran 10,11,12,13,14, mens de udtrykker transportører for at lette bevægelsen af næringsstoffer ind og ud af CNS 1,4,12,14 . Mikrovaskulære EC’er er omgivet af pericytter (PC’er)-vægmalerier, der regulerer mikrovaskulær funktion og homeostase og er kritiske for regulering af BBB’s permeabilitet for molekyler og immunceller 15,16,17. Astrocytten, en vigtig gliacelletype, er den endelige celletype, der omfatter BBB. Astrocyte endefødder vikles rundt om EC-PC-vaskulærrørene, mens cellelegemerne strækker sig ind i hjernens parenchyma og danner en forbindelse mellem neuroner og vaskulatur1. Forskellige opløste stoffer og substrattransportører er lokaliseret på astrocytendefødder (f.eks. aquaporin 4 [AQP-4]), der har en kritisk rolle i BBB-funktion 18,19,20,21.

BBB er afgørende for at opretholde korrekt hjernesundhedsfunktion, og dysfunktion af BBB er blevet rapporteret i mange neurologiske sygdomme, herunder Alzheimers sygdom (AD) 22,23,24,25, multipel sklerose 7,26,27,28, epilepsi 29,30 og slagtilfælde31,32. Det anerkendes i stigende grad, at cerebrovaskulære abnormiteter spiller en central rolle i neurodegeneration, hvilket bidrager til øget modtagelighed for iskæmiske og hæmoragiske hændelser. For eksempel har mere end 90% af AD-patienter cerebral amyloid angiopati (CAA), en tilstand karakteriseret ved aflejring af amyloid β (Aβ) langs cerebral vaskulatur. CAA øger BBB-permeabiliteten og nedsætter BBB-funktionen, hvilket efterlader CNS sårbar over for iskæmi, hæmoragiske hændelser og accelereret kognitiv tilbagegang33.

Vi har for nylig udviklet en in vitro-model af den humane BBB, afledt af patientinducerede pluripotente stamceller, som inkorporerer EC’er, PC’er og astrocytter indkapslet i en 3D-matrix (figur 1A). iBBB rekapitulerer fysiologisk relevante interaktioner, herunder vaskulær rørdannelse og lokalisering af astrocytendefødder med vaskulatur24. Vi anvendte iBBB til at modellere følsomheden af CAA medieret af APOE4 (figur 1B). Dette gjorde det muligt for os at identificere de kausale cellulære og molekylære mekanismer, hvormed APOE4 fremmer CAA, og udnytte disse indsigter til at udvikle terapeutiske strategier, der reducerer CAA-patologi og forbedrer læring og hukommelse in vivo hos APOE4-mus24. Her giver vi en detaljeret protokol og videovejledning til rekonstruktion af BBB fra humane iPSC’er og modellering af CAA in vitro.

Protocol

1. Differentiering af iPSC’er i iBBB-celler BEMÆRK: Disse differentieringsprotokoller er tidligere beskrevet i Mesentier-Louro et al.34. Belægning af cellekulturpladerOptøning af membranmatrix med reduceret vækstfaktor (GF) natten over ved 4 °C. Fortynd 500 μL kældermembranmatrix i 49,5 ml DMEM. Hold denne opløsning kold for at forhindre for tidlig polymerisation af belægningsopløsningen. Tilsæt 1-2 ml pr. hul af…

Representative Results

En korrekt formet iBBB størkner til en enkelt gennemskinnelig skive (figur 3A). Det er normalt, at iBBB løsner sig fra overfladen, hvorpå den først blev pipetteret efter et par dage. Dette kan ikke undgås, men er ikke et stort problem for den korrekte dannelse af iBBB, hvis man er forsigtig, når man skifter medie for ikke ved et uheld at aspirere iBBB. Efter 24 timer, jævnt fordelt, kan enkeltceller identificeres under et brightfield-mikroskop (figur 3B)….

Discussion

BBB dysfunktion er en co-morbiditet, og potentielt en årsag eller forværrende faktor i talrige neurologiske sygdomme 7,40,41. Det er imidlertid næsten umuligt at studere molekylær- og cellebiologien, der ligger til grund for dysfunktion og nedbrydning af BBB hos mennesker med neurovaskulær sygdom. Den inducerbare-BBB (iBBB), der præsenteres i denne protokol, tilvejebringer et in vitro-system, der rekapitulerer vig…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde er støttet af NIH 3-UG3-NS115064-01, R01NS14239, Cure Alzheimers Fund, NASA 80ARCO22CA004, Chan-Zuckerberg Initiative, MJFF / ASAP Foundation og Brain Injury Association of America. C.G. er støttet af NIH F31NS130909. Figur 1A blev oprettet med BioRender.com.

Materials

6e10 amyloid-β antibody Biolegend SIG-39320 Used at 1:1000
Accutase Innovative Cell Technologies AT104
Activin A Peprotech 20-14E
Alexa Fluor 488, 555, 647 secondary antibodies Invitrogen Various Used at 1:1000
Amyloid-beta 40 fibril AnaSpec AS-24235
Amyloid-beta 42 fibril AnaSpec AS-20276
Aquaporin-4 antibody Invitrogen PA5-53234 Used at 1:300
Astrocyte basal media and supplements ScienCell 1801
B-27 serum-free supplement Gibco 17504044
BMP4 Peprotech 120-05ET
CHIR99021 Cyamn Chemical 13112
DMEM/F12 with GlutaMAX medium Gibco 10565018
Doxycycline Millipore-Sigma D3072-1ML
FGF-basic Peprotech 100-18B
Fluoromount-G slide mounting medium VWR 100502-406
Forskolin R&D Systems 1099/10
GeltrexTM LDEV-Free hESC-qualified Reduced Growth Factor Basement  Gibco A1413302
Glass Bottom 48-well Culture Dishes Mattek Corporation P48G-1.5-6-F
GlutaMAX supplement Gibco 35050061
Hoechst 33342  Invitrogen H3570
Human Endothelial Serum-free medium Gibco 11111044
LDN193189 Tocris 6053
Minimum Essential Medium Non-essential Amino Acid Solution (MEM-NEAA)  Gibco 11140050
N-2 supplement Gibco 17502048
Neurobasal medium Gibco 21103049
Normal Donkey Serum Millipore-Sigma S30-100mL Use serum to match secondary antibody host
Paraformaldehyde (PFA)  ThermoFisher 28908
PDGF-BB Peprotech 100-14B
PDGFRB (Platelet-derived growth factor receptor beta) antibody R&D Systems AF385 Used at 1:500
Phosphate Buffered Saline (PBS), pH 7.4 Gibco 10010031
Pecam1 (Platelet endothelial cell adhesion molecule 1) antibody R&D Systems AF806 Used at 1:500
Penicillin-Streptomycin Gibco 15140122
PiggyBac plasmid (PB_iETV2_P2A_GFP_Puro) AddGene  Catalog #168805
S100B antibody Sigma-Aldrich S2532-100uL Used at 1:500
SB43152 Reprocell 04-0010
Thioflavin T Chem Impex 22870 Used at 25uM
Triton X-100  Sigma-Aldrich T8787-250mL
VE-cadherin (CD144) antibody R&D systems AF938 Used at 1:500
VEGF-A Peprotech 100-20
Y27632 R&D Systems 1254/10
ZO-1 Invitrogen MA3-39100-A488 Dilution = 1:500

References

  1. Daneman, R., Prat, A. The blood-brain barrier. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 7 (1), a020412 (2015).
  2. Segarra, M., Aburto, M. R., Acker-Palmer, A. Blood-brain barrier dynamics to maintain brain homeostasis. Trends in Neurosciences. 44 (5), 393-405 (2021).
  3. Campos-Bedolla, P., Walter, F. R., Veszelka, S., Deli, M. A. Role of the blood-brain barrier in the nutrition of the central nervous system. Archives of Medical Research. 45 (8), 610-638 (2014).
  4. Hladky, S. B., Barrand, M. A. Fluid and ion transfer across the blood-brain and blood-cerebrospinal fluid barriers; a comparative account of mechanisms and roles. Fluids and Barriers of the CNS. 13 (1), 19 (2016).
  5. Kaur, J., et al. Waste clearance in the brain. Frontiers in Neuroanatomy. 15, 665803 (2021).
  6. Verheggen, I. C. M., Van Boxtel, M. P. J., Verhey, F. R. J., Jansen, J. F. A., Backes, W. H. Interaction between blood-brain barrier and glymphatic system in solute clearance. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 90, 26-33 (2018).
  7. Weiss, N., Miller, F., Cazaubon, S., Couraud, P. O. The blood-brain barrier in brain homeostasis and neurological diseases. Biochimica et Biophysica Acta. 1788 (4), 842-857 (2009).
  8. Prinz, M., Priller, J. The role of peripheral immune cells in the cns in steady state and disease. Nature Neuroscience. 20 (2), 136-144 (2017).
  9. Weksler, B. B., et al. Blood-brain barrier-specific properties of a human adult brain endothelial cell line. FASEB Journal. 19 (13), 1872-1874 (2005).
  10. Liu, W. Y., Wang, Z. B., Zhang, L. C., Wei, X., Li, L. Tight junction in blood-brain barrier: An overview of structure, regulation, and regulator substances. CNS Neuroscience & Therapeutics. 18 (8), 609-615 (2012).
  11. Siegenthaler, J. A., Sohet, F., Daneman, R. Sealing off the cns’: Cellular and molecular regulation of blood-brain barriergenesis. Current Opinion in Neurobiology. 23 (6), 1057-1064 (2013).
  12. Brightman, M. W., Reese, T. S. Junctions between intimately apposed cell membranes in the vertebrate brain. Journal of Cell Biology. 40 (3), 648-677 (1969).
  13. Reese, T. S., Karnovsky, M. J. Fine structural localization of a blood-brain barrier to exogenous peroxidase. Journal of Cell Biology. 34 (1), 207-217 (1967).
  14. Mahringer, A., Fricker, G. Abc transporters at the blood-brain barrier. Expert Opinion on Drug Metabolism & Toxicology. 12 (5), 499-508 (2016).
  15. Armulik, A., Genove, G., Betsholtz, C. Pericytes: Developmental, physiological, and pathological perspectives, problems, and promises. Developmental Cell. 21 (2), 193-215 (2011).
  16. Armulik, A., et al. Pericytes regulate the blood-brain barrier. Nature. 468 (7323), 557-561 (2010).
  17. Daneman, R., Zhou, L., Kebede, A. A., Barres, B. A. Pericytes are required for blood-brain barrier integrity during embryogenesis. Nature. 468 (7323), 562-566 (2010).
  18. Abbott, N. J., Ronnback, L., Hansson, E. Astrocyte-endothelial interactions at the blood-brain barrier. Nature Reviews. Neuroscience. 7 (1), 41-53 (2006).
  19. Heithoff, B. P., et al. Astrocytes are necessary for blood-brain barrier maintenance in the adult mouse brain. Glia. 69 (2), 436-472 (2021).
  20. Verkman, A. S. Aquaporin water channels and endothelial cell function. Journal of Anatomy. 200 (6), 617-627 (2002).
  21. Wolburg, H., Lippoldt, A. Tight junctions of the blood-brain barrier: Development, composition and regulation. Vascular Pharmacology. 38 (6), 323-337 (2002).
  22. Sagare, A. P., Bell, R. D., Zlokovic, B. V. Neurovascular dysfunction and faulty amyloid beta-peptide clearance in alzheimer disease. Cold Spring Harbor Perspectives in Medicine. 2 (10), a011452 (2012).
  23. Kapasi, A., Schneider, J. A. Vascular contributions to cognitive impairment, clinical alzheimer’s disease, and dementia in older persons. Biochimica et Biophysica Acta. 1862 (5), 878-886 (2016).
  24. Blanchard, J. W., et al. Reconstruction of the human blood-brain barrier in vitro reveals a pathogenic mechanism of apoe4 in pericytes. Nature Medicine. 26 (6), 952-963 (2020).
  25. Huang, Z., et al. Blood-brain barrier integrity in the pathogenesis of alzheimer’s disease. Frontiers in Neuroendocrinology. 59, 100857 (2020).
  26. Morgan, L., et al. Inflammation and dephosphorylation of the tight junction protein occludin in an experimental model of multiple sclerosis. Neuroscience. 147 (3), 664-673 (2007).
  27. Kirk, J., Plumb, J., Mirakhur, M., Mcquaid, S. Tight junctional abnormality in multiple sclerosis white matter affects all calibres of vessel and is associated with blood-brain barrier leakage and active demyelination. Journal of Pathology. 201 (2), 319-327 (2003).
  28. Balasa, R., Barcutean, L., Mosora, O., Manu, D. Reviewing the significance of blood-brain barrier disruption in multiple sclerosis pathology and treatment. International Journal of Molecular Sciences. 22 (16), 8370 (2021).
  29. Marchi, N., Granata, T., Ghosh, C., Janigro, D. Blood-brain barrier dysfunction and epilepsy: Pathophysiologic role and therapeutic approaches. Epilepsia. 53 (11), 1877-1886 (2012).
  30. Kiani, L. Blood-brain barrier disruption following seizures. Nature Reviews. Neurology. 19 (4), 2023 (2023).
  31. Knowland, D., et al. Stepwise recruitment of transcellular and paracellular pathways underlies blood-brain barrier breakdown in stroke. Neuron. 82 (3), 603-617 (2014).
  32. Okada, T., Suzuki, H., Travis, Z. D., Zhang, J. H. The stroke-induced blood-brain barrier disruption: Current progress of inspection technique, mechanism, and therapeutic target. Current Neuropharmacology. 18 (12), 1187-1212 (2020).
  33. Gireud-Goss, M., Mack, A. F., Mccullough, L. D., Urayama, A. Cerebral amyloid angiopathy and blood-brain barrier dysfunction. Neuroscientist. 27 (6), 668-684 (2021).
  34. Mesentier-Louro, L. A., Suhy, N., Broekaart, D., Bula, M., Pereira, A. C., Blanchard, J. W. Modeling the blood-brain barrier using human-induced pluripotent stem cells. Methods in Molecular Biology. 2683, 135-151 (2023).
  35. Qian, T., et al. Directed differentiation of human pluripotent stem cells to blood-brain barrier endothelial cells. Science Advances. 3 (11), e1701679 (2017).
  36. Wang, K., et al. Robust differentiation of human pluripotent stem cells into endothelial cells via temporal modulation of etv2 with modified mrna. Science Advances. 6 (30), eaba7606 (2020).
  37. Patsch, C., et al. Generation of vascular endothelial and smooth muscle cells from human pluripotent stem cells. Nature Cell Biology. 17 (8), 994-1003 (2015).
  38. Chambers, S. M., et al. Highly efficient neural conversion of human es and ips cells by dual inhibition of smad signaling. Nature Biotechnology. 27 (3), 275-280 (2009).
  39. Tcw, J., et al. An efficient platform for astrocyte differentiation from human induced pluripotent stem cells. Stem Cell Reports. 9 (2), 600-614 (2017).
  40. Zlokovic, B. V. The blood-brain barrier in health and chronic neurodegenerative disorders. Neuron. 57 (2), 178-201 (2008).
  41. Daneman, R. The blood-brain barrier in health and disease. Annals of Neurology. 72 (5), 648-672 (2012).
  42. Cecchelli, R., et al. Modelling of the blood-brain barrier in drug discovery and development. Nature Reviews. Drug Discovery. 6 (8), 650-661 (2007).
  43. Helms, H. C., et al. In vitro models of the blood-brain barrier: An overview of commonly used brain endothelial cell culture models and guidelines for their use. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 36 (5), 862-890 (2016).
  44. Erickson, M. A., Wilson, M. L., Banks, W. A. In vitro modeling of blood-brain barrier and interface functions in neuroimmune communication. Fluids Barriers CNS. 17 (1), 26 (2020).
  45. Musafargani, S., et al. Blood brain barrier: A tissue engineered microfluidic chip. Journal of Neuroscience Methods. 331, 108525 (2020).
  46. Hajal, C., et al. Engineered human blood-brain barrier microfluidic model for vascular permeability analyses. Nature Protocols. 17 (1), 95-128 (2022).
  47. Oddo, A., et al. Advances in microfluidic blood-brain barrier (bbb) models. Trends in Biotechnology. 37 (12), 1295-1314 (2019).
check_url/65921?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Goldman, C., Suhy, N., Schwarz, J. E., Sartori, E. R., Rooklin, R. B., Schuldt, B. R., Mesentier-Louro, L. A., Blanchard, J. W. Reconstruction of the Blood-Brain Barrier In Vitro to Model and Therapeutically Target Neurological Disease. J. Vis. Exp. (200), e65921, doi:10.3791/65921 (2023).

View Video