Summary

Valorisering av Red Seaweed Gracilaria gracilis gjennom en bioraffineri tilnærming

Published: November 21, 2023
doi:

Summary

Her beskriver vi flere protokoller som tar sikte på en integrert valorisering av Gracilaria gracilis: høsting av ville arter, intern vekst og utvinning av bioaktive ingredienser. Ekstraktenes antioksidanter, antimikrobielle og cytotoksiske effekter evalueres, sammen med ernærings- og stabilitetsvurdering av mat beriket med hel tangbiomasse og pigmenter.

Abstract

Interessen for tang og tare som et rikt råstoff for å oppnå verdifulle og multitarget bioaktive ingredienser vokser kontinuerlig. I dette arbeidet undersøker vi potensialet til Gracilaria gracilis, en spiselig rød tang dyrket over hele verden for sin kommersielle interesse som en kilde til agar og andre ingredienser for kosmetiske, farmakologiske, mat og fôrapplikasjoner.

G. gracilis-vekstforholdene ble optimalisert gjennom vegetativ forplantning og sporulering mens man manipulerte de fysisk-kjemiske forholdene for å oppnå en stor biomassebestand. Grønne ekstraksjonsmetoder med etanol og vann ble utført over tangbiomassen. Det bioaktive potensialet til ekstrakter ble vurdert gjennom et sett in vitro-analyser vedrørende deres cytotoksisitet, antioksidanter og antimikrobielle egenskaper. I tillegg ble tørket tangbiomasse inkorporert i pastaformuleringer for å øke matens næringsverdi. Pigmenter ekstrahert fra G. gracilis har også blitt innlemmet i yoghurt som et naturlig fargestoff, og deres stabilitet ble evaluert. Begge produktene ble sendt til takknemlighet for et halvtrent sensorisk panel med sikte på å oppnå den beste endelige formuleringen før de nådde markedet.

Resultatene støtter allsidigheten til G. gracilis enten den brukes som en hel biomasse, ekstrakter og / eller pigmenter. Gjennom implementering av flere optimaliserte protokoller, gjør dette arbeidet det mulig å utvikle produkter med potensial til å tjene mat-, kosmetikk- og akvakulturmarkedene, fremme miljømessig bærekraft og en blå sirkulær økonomi.

Videre, og i tråd med en bioraffineritilnærming, vil den gjenværende tangbiomassen bli brukt som biostimulant for plantevekst eller omdannes til karbonmaterialer som skal brukes i vannrensing av de interne akvakultursystemene til MARE-Polytechnic i Leiria, Portugal.

Introduction

Tang og tare kan betraktes som et interessant naturlig råmateriale som skal profitteres av farmasøytiske, mat-, fôr- og miljøsektorer. De biosyntetiserer en rekke molekyler, mange som ikke finnes i terrestriske organismer, med relevante biologiske egenskaper 1,2. Imidlertid må tangoptimaliserte dyrkingsprotokoller implementeres for å sikre en stor biomassebestand.

Dyrkingsmetoder må alltid ta hensyn til tangens thalli og generell morfologi. Gracilaria gracilis er et klonalt takson, noe som betyr at festeorganet produserer flere vegetative akser. Forplantning ved fragmentering (vegetativ reproduksjon) oppnås dermed, da hver av disse aksene er fullt i stand til å vedta et uavhengig liv fra hovedthallus3. Klonal taxa kan med hell integreres med enkle og raske ett-trinns dyrkingsmetoder, da store mengder biomasse oppnås ved å splitte thallus i små fragmenter som raskt regenererer og vokser til nye, genetisk identiske individer. Både haplontiske og diplontiske thalli kan brukes i denne prosessen. Selv om slekten viser en kompleks haplo-diplontisk isomorf trifasisk livssyklus, er sporulering sjelden nødvendig, bortsett fra når genetisk fornyelse av bestandene er nødvendig for å oppnå forbedrede avlinger. I dette tilfellet gir både tetrasporer (haplontiske sporer dannet av meiose) og karposporer (diplontiske sporer dannet av mitose) opphav til makroskopiske talli som deretter kan dyrkes og forplantes ved vegetativ reproduksjon4. Vekstsykluser dikteres av miljøforhold og individets fysiologiske tilstand, blant annet biologiske faktorer som fremveksten av epifytter og adhesjon av andre organismer. Derfor er optimalisering av vekstforhold avgjørende for å sikre høy produktivitet og produsere biomasse av god kvalitet5.

Ekstraksjon av bioaktive forbindelser fra tang, inkludert G. gracilis, kan oppnås ved ulike metoder 6,7. Valget av ekstraksjonsmetoden avhenger av de spesifikke forbindelsene av interesse, målapplikasjonen og egenskapene til tangen. I denne studien fokuserte vi på løsningsmiddelekstraksjon, som innebærer bruk av grønne løsningsmidler, som vann eller etanol, for å oppløse og trekke ut bioaktive forbindelser fra tangbiomassen. Ekstraksjonen kan utføres gjennom maserasjon på en allsidig og effektiv måte og kan brukes til et bredt spekter av forbindelser. Det er en enkel og mye brukt metode som involverer bløtlegging av biomasse i et løsningsmiddel i en lengre periode, vanligvis ved rom- eller litt forhøyede temperaturer. Oppløsningsvæsken omrøres for å forbedre ekstraksjonsprosessen. Etter ønsket ekstraksjonstid separeres løsningsmidlet fra det faste materialet ved filtrering eller sentrifugering.

Vann er et vanlig løsningsmiddel i næringsmiddelapplikasjoner på grunn av dets sikkerhet, tilgjengelighet og kompatibilitet med et bredt spekter av matvarer. Vannekstraksjon er egnet for polare forbindelser som polysakkarider, peptider og visse fenoler. Det kan imidlertid ikke effektivt trekke ut ikke-polare forbindelser. Etanol er også et mye brukt løsningsmiddel i matapplikasjoner og kan være effektivt for å ekstrahere en rekke bioaktive molekyler, inkludert fenolforbindelser, flavonoider og visse pigmenter. Etanol er generelt anerkjent som trygt for bruk i mat og kan lett fordampes, etterlater de ekstraherte forbindelsene. Det er verdt å merke seg at valg av utvinningsmetode bør ta hensyn til faktorer som effektivitet, selektivitet, kostnadseffektivitet og miljøpåvirkning. Optimalisering av ekstraksjonsparametere, som løsningsmiddelkonsentrasjon, ekstraksjonstid, temperatur og trykk, er avgjørende for å oppnå optimale utbytter av bioaktive forbindelser fra G. gracilis eller andre tang.

Tang har vist seg å vise antimikrobiell aktivitet mot et bredt spekter av mikroorganismer, inkludert bakterier, sopp og virus8. Denne aktiviteten tilskrives bioaktive komponenter, inkludert fenoler, polysakkarider, peptider og fettsyrer. Flere studier har vist sin effekt mot patogener som Escherichia coli, Staphylococcus aureus, Salmonella sp. og Pseudomonas aeruginosa, blant andre9. Den antimikrobielle aktiviteten til tang tilskrives tilstedeværelsen av bioaktive forbindelser som kan forstyrre mikrobielle cellevegger, membraner, enzymer og signalveier10. Disse forbindelsene kan forstyrre mikrobiell vekst, hemme biofilmdannelse og modulere immunresponser.

Røde tang, også kjent som rhodophytes, er en gruppe alger som kan utvise antimikrobiell aktivitet mot en rekke mikroorganismer. Innenfor denne gruppen inneholder G. gracilis forskjellige bioaktive forbindelser som kan bidra til den rapporterte antimikrobielle aktiviteten. Mens de spesifikke molekylene kan variere, er de vanlige klassene som er rapportert i G. gracilis og kan ha antimikrobielle egenskaper, polysakkarider, fenoler, terpenoider og pigmenter11. Det er imidlertid viktig å merke seg at tilstedeværelsen og mengdene av disse komponentene kan variere avhengig av faktorer som plasseringen av tangsamling, sesongmessighet, fysiologisk tilstand av thalli og miljøforhold. Derfor kan den spesifikke klassen og konsentrasjonen av antimikrobielle forbindelser i G. gracilis variere tilsvarende.

G. gracilis har også blitt funnet å holde antioksidantegenskaper, som inneholder forskjellige fenolforbindelser, som har vist seg å scavenge frie radikaler og redusere oksidativt stress12.Antioksidanter bidrar til å beskytte celler mot skade forårsaket av reaktive oksygenarter og har potensielle helsemessige fordeler. Antioksidantkapasiteten kan evalueres direkte gjennom forskjellige metoder, inkludert 2,2-difenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) renseaktivitet for frie radikaler og indirekte gjennom kvantifisering av totalt polyfenolisk innhold (TPC)13.

Selv om en ingrediens er rapportert å ha en fremtredende bioaktivitet, er cytotoksisitetsvurderingen uunnværlig for å vurdere naturlige og syntetiske stoffer som skal brukes i kontakt med levende celler eller vev. Det finnes flere metoder for måling av cytotoksisitet, hver med fordeler og begrensninger. Samlet sett tilbyr de en rekke alternativer for å evaluere de skadelige effektene av mange stoffer på celler og samtidig undersøke mekanismene for celleskader og død14.

I dette arbeidet bruker vi 3-(4,5-dimetyltiazol-2-yl)-2,5-difenyltetrazoliumbromid (MTT)-analysen, en kolorimetrisk metode introdusert av Mosmann (1983)15. Denne metoden måler reduksjonen av tetrazoliumsalter til et lilla formazanprodukt av metabolsk aktive celler. Jo høyere mengden formazankrystaller, desto høyere er antall levedyktige celler, og gir dermed et indirekte mål for cytotoksisitet14. Siden G. gracilis vann- og etanolekstrakter i dette arbeidet er ment å bli inkorporert i dermo-kosmetiske formuleringer, utføres in vitro cytotoksisitetsevalueringen i en keratinocytt (HaCaT) cellelinje.

Når det gjelder matapplikasjonen, er tang generelt lavt i kalorier og ernæringsmessig rik på kostfibre, essensielle elementer og aminosyrer, polysakkarider, flerumettede fettsyrer, polyfenoler og vitaminer 2,16. G. gracilis er ikke noe unntak, og har en interessant næringsverdi. Freitas et al. (2021)4 fant at dyrket G. gracilis hadde høyere nivåer av protein og vitamin C og opprettholdt nivået av totale lipider sammenlignet med vill tang. Dette kan representere en økonomisk og miljømessig fordel, da næringsmessig sett er produksjon å foretrekke fremfor utnyttelse av ville ressurser. I tillegg er forbrukerne i økende grad opptatt av hvilken type mat de spiser, så det er viktig å introdusere nye ingredienser for matberikelse og bruke nye ressurser for å skaffe ekstrakter som kan tilføre verdi til et produkt og kreve en “ren etikett.” Dessuten er dagens marked svært konkurransedyktig, og krever utvikling av nye produkter og innovative strategier for å skille produsenter fra sine konkurrenter17.

Berikelse av produkter med dårlig næringsverdi, som pasta, med marine ressurser, inkludert tang, er en strategi for å introdusere denne ressursen som en ny matvare og en markedsdifferensieringsstrategi gjennom et produkt med tydelig næringsverdi. På den annen side er G. gracilis en kilde til naturlige røde pigmenter som phycobiliproteins18, som har stort potensial for applikasjoner i næringsmiddelindustrien. Denne tangen har vist stor interesse på flere områder, og anvendelsen kan gjøres ved hjelp av hele tangen, ekstrakter og/eller den gjenværende biomassen. I dette arbeidet viser vi noen eksempler på slike applikasjoner.

Protocol

1. Biomasse høsting og forberedelse Høst prøvene av G. gracilis under lavvann og transporter dem raskt til laboratoriet i mørke, avkjølte bokser for å unngå tørking, lys og lufteksponering. I laboratoriet, vask hver tallus med rennende sjøvann og rengjør grundig for å fjerne rusk, nekrotiske deler, epifytter og andre organismer fra overflaten. Oppbevar villbiomassen i konstant luftet sjøvann (31-35 psu) i et klimarom (20 ± 1 °C) med lav innstråling fra dagslys, kjøli…

Representative Results

Antimikrobiell aktivitet Ved tolkning av de oppnådde resultatene bør man huske på at jo høyere prosentandel av inhibering, desto større er effekten av ekstraktet ved å hemme veksten av den spesifikke stammen, og følgelig jo mer interessant ekstraktet er som et antimikrobielt middel. Gjennom denne metodikken kan vi raskt identifisere hvilke ekstrakter som har større aktivitet på visse bakteriestammer, og…

Discussion

De antimikrobielle aktivitetstestene i et flytende medium brukes til å evaluere effektiviteten av antimikrobielle stoffer mot mikroorganismer suspendert i et flytende medium og utføres vanligvis for å bestemme et stoffs evne til å hemme vekst eller drepe mikroorganismer35,36,37,38. De brukes til å evaluere mikroorganismers følsomhet overfor antimikrobielle midler og utføres i reagensrør…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av den portugisiske stiftelsen for vitenskap og teknologi (FCT) gjennom de strategiske prosjektene gitt til MARE-Marine and Environmental Sciences Centre (UIDP/04292/2020 og UIDB/04292/2020), og Associate Laboratory ARNET (LA/P/0069/2020). FCT finansierte også de individuelle doktorgradsstipendene til Marta V. Freitas (UI/BD/150957/2021) og Tatiana Pereira (2021. 07791. BD). Dette arbeidet ble også støttet økonomisk av prosjektet HP4A – HEALTHY PASTA FOR ALL (co-promotion nr. 039952), delfinansiert av ERDF – European Regional Development Fund, under Portugal 2020-programmet, gjennom COMPETE 2020 – Competitiveness and Internationalisation Operational Programme.

Materials

Absolute Ethanol Aga, Portugal 64-17-5
Ammonium Chloride PanReac 12125-02-9
Amphotericin B Sigma-Aldrich 1397-89-3
Analytical scale balance Sartorius, TE124S 22105307
Bacillus subtilis subsp. spizizenii German Collection of Microorganisms and Cell Cultures (DSMZ) DSM 347
Biotin Panreac AppliChem 58-85-5
Centrifuge Eppendorf, 5810R 5811JH490481
Chloramphenicol PanReac 56-75-7
CO2 Chamber Memmert N/A
Cool White Fluorescent Lamps OSRAM Lumilux Skywhite N/A
Densitometer McFarland Grant Instruments N/A
DMEM medium Sigma-Aldrich D5796
DMSO Sigma-Aldrich 67-68-5
DPPH Sigma, Steinheim, Germany 1898-66-4
Escherichia coli (DSM 5922) German Collection of Microorganisms and Cell Cultures (DSMZ) DSM5922
Ethanol 96% AGA-Portugal 64-17-5
Ethylenediaminetetraacetic Acid Disodium Salt Dihydrate (Na2EDTA) J.T.Baker 6381-92-6
Fetal Bovine Serum (FBS) Sigma-Aldrich F7524
Filter Paper (Whatman No.1) Whatman WHA1001320
Flasks VWR International, Alcabideche, Portugal  N/A
Folin-Ciocalteu VWR Chemicals 31360.264
Gallic Acid  Merck 149-91-7
Germanium (IV) Oxide, 99.999% AlfaAesar 1310-53-8
HaCaT cells – 300493 CLS-Cell Lines Services, Germany  300493
Hot Plate Magnetic Stirrer IKA, C-MAG HS7 06.090564
Iron Sulfate VWR Chemicals 10124-49-9
Laminar flow hood TelStar, Portugal 526013
LB Medium  VWR Chemicals J106
Listonella anguillarum German Collection of Microorganisms and Cell Cultures (DSMZ)  DSM 21597
Manganese Chloride VWR Chemicals 7773.01.5
Micropipettes  Eppendorf, Portugal N/A
Microplates VWR International, Alcabideche, Portugal  10861-666
Microplates Greiner 738-0168
Microplates (sterile) Fisher Scientific 10022403
Microplate reader  Epoch Microplate Spectrophotometer, BioTek, Vermont, USA 1611151E
MTT Sigma-Aldrich 289-93-1
Muller-Hinton Broth (MHB) VWR Chemicals 90004-658
Oven Binder, FD115 12-04490
Oven Binder, BD115 04-62615
Penicillin Sigma-Aldrich 1406-05-9
pH meter Inolab  VWR International, Alcabideche, Portugal  15212099
Pippete tips Eppendorf, Portugal 5412307
Pyrex Bottles Media Storage  VWR International, Alcabideche, Portugal  16157-169
Rotary Evaporator Heidolph, Laborota 4000 80409287
Rotavapor IKA HB10, VWR International, Alcabideche, Portugal 07.524254
Sodium Carbonate (Na2CO3) Chem-Lab 497-19-8
Sodium Chloride (NaCl)  Normax Chem 7647-14-5
Sodium Phosphate Dibasic Riedel-de Haën 7558-79-4
SpectraMagic NX Konica Minolta, Japan color data analysis software
Spectrophotometer Evolution 201, Thermo Scientific, Madison, WI, USA 5A4T092004
Streptomycin Sigma-Aldrich 57-92-1
Thiamine Panreac AppliChem 59-43-8
Trypsin-EDTA Sigma-Aldrich T4049
Tryptic Soy Agar (TSA) VWR Chemicals ICNA091010617
Tryptic Soy Broth (TSB)  VWR Chemicals 22091
Ultrapure water  Advantage A10 Milli-Q lab, Merck, Darmstadt, Germany F5HA17360B
Vacuum pump Buchi, Switzerland FIS05-402-103
Vitamin B12 Merck 68-19-9

References

  1. Charoensiddhi, S., Abraham, R. E., Su, P., Zhang, W. Seaweed and seaweed-derived metabolites as prebiotics. Advances in Food and Nutrition Research. 91, 97-156 (2020).
  2. Roohinejad, S., Koubaa, M., Barba, F. J., Saljoughian, S., Amid, M., Greiner, R. Application of seaweeds to develop new food products with enhanced shelf-life, quality, and health-related beneficial properties. Food Research International. 99, 1066-1083 (2017).
  3. Hurd, C. L., Harrison, P. J., Bischof, K., Lobban, C. S. . Seaweed Ecology and Physiology. (second). , (2014).
  4. Freitas, M. V., Mouga, T., Correia, A. P., Afonso, C., Baptista, T. New insights on the sporulation, germination, and nutritional profile of Gracilaria gracilis (Rhodophyta) grown under controlled conditions. Journal of Marine Science and Engineering. 9 (6), 562 (2021).
  5. Friedlander, M. Advances in cultivation of Gelidiales. Journal of Applied Phycology. 20 (5), 451-456 (2008).
  6. Matos, G. S., Pereira, S. G., Genisheva, Z. A., Gomes, A. M., Teixeira, J. A., Rocha, C. M. R. Advances in extraction methods to recover added-value compounds from seaweeds: Sustainability and functionality. Foods. 10, 516 (2021).
  7. Ummat, V., Sivagnanam, S. P., Rajauria, G., O’Donnell, C., Tiwari, B. K. Advances in pre-treatment techniques and green extraction technologies for bioactives from seaweeds. Trends in Food Science & Technology. 110, 90-106 (2021).
  8. Pérez, M. J., Falqué, E., Domínguez, H., Ravishankar, G., Ambati, R. R. Seaweed Antimicrobials, Present Status and Future Perspectives. Handbook of Algal Technologies andPhytochemicals:Volume I Food, Health and Nutraceutical Applications. , (2019).
  9. Cavallo, R. A., Acquaviva, M. I., Stabili, L., Cecere, E., Petrocelli, A., Narracci, M. Antibacterial activity of marine macroalgae against fish pathogenic Vibrio species. Central European Journal of Biology. 8, 646-653 (2013).
  10. Shannon, E., Abu-Ghannam, N. Antibacterial derivatives of marine algae: An overview of pharmacological mechanisms and applications. Marine Drugs. 14 (4), 81 (2016).
  11. Capillo, G., et al. New insights into the culture method and antibacterial potential of Gracilaria gracilis. Marine Drugs. 16 (12), 492 (2018).
  12. Francavilla, M., Franchi, M., Monteleone, M., Caroppo, C. The red seaweed Gracilaria gracilis as a multi products source. Marine Drugs. 11 (10), 3754-3776 (2013).
  13. Sánchez-Ayora, H., Pérez-Jiménez, J., Pérez-Correa, J. R., Mateos, R., Domínguez, R. Antioxidant Capacity of Seaweeds: In Vitro and In Vivo Assessment. Marine Phenolic Compounds. , 299-341 (2023).
  14. Anil, S., Sweety, V. K., Vikas, B., Betsy-Joseph, B. . Cytotoxicity and Cell Viability Assessment of Biomaterials. Cytotoxicity. , 111822 (2023).
  15. Mosmann, T. Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: Application to proliferation and cytotoxicity assays. Journal of Immunological Methods. 65 (1-2), 55-63 (1983).
  16. Roleda, M. Y., et al. Variations in polyphenol and heavy metal contents of wild-harvested and cultivated seaweed bulk biomass: Health risk assessment and implication for food applications. Food Control. 95, 121-134 (2019).
  17. Souza, K. D., et al. Gastronomy and the development of new food products: Technological prospection. International Journal of Gastronomy and Food Science. 33, 100769 (2023).
  18. Pereira, T., et al. Optimization of phycobiliprotein pigments extraction from red algae Gracilaria gracilis for substitution of synthetic food colorants. Food Chemistry. 321, 126688 (2020).
  19. Redmond, S., Green, L., Yarish, C., Kim, J., Neefus, C., Redmond, S., Green, L., Yarish, C., Kim, J., Neefus, C. . New England Seaweed Culture Handbook-Nursery Systems. , (2014).
  20. Yong, Y. S., Yong, W. T. L., Anton, A. Analysis of formulae for determination of seaweed growth rate. Journal of Applied Phycology. 25 (6), 1831-1834 (2013).
  21. Patarra, R. F., Carreiro, A. S., Lloveras, A. A., Abreu, M. H., Buschmann, A. H., Neto, A. I. Effects of light, temperature and stocking density on Halopteris scoparia growth. Journal of Applied Phycology. 29 (1), 405-411 (2017).
  22. NCCLS, National Committee for Clinical Laboratory Standards, Clinical and Laboratory Standards Institute. . Performance Standards for Antimicrobial Disk Susceptibility Tests: Approved Standard. 32, M02-M11 (2012).
  23. Singleton, V. L., Rossi, J. A. J. Colorimetry to total phenolics with phosphomolybdic acid reagents. American Journal of Enology and Viticulture. 16, 144-158 (1965).
  24. Duan, X. J., Zhang, W. W., Li, X. M., Wang, B. G. Evaluation of antioxidant property of extract and fractions obtained from a red alga, Polysiphonia urceolata. Food Chemistry. 95 (1), 37-43 (2006).
  25. Freitas, R., et al. Highlighting the biological potential of the brown seaweed Fucus spiralis for skin applications. Antioxidants. 9 (7), 611 (2020).
  26. Duarte, A., et al. Seasonal study of the nutritional composition of unexploited and low commercial value fish species from the Portuguese coast. Food Science and Nutrition. 10 (10), 3368-3379 (2020).
  27. Folch, J., Lees, M., Stanley, G. A simple method for the isolation and purification of total lipides from animal tissues. Journal of Biological Chemistry. 226 (1), 497-509 (1957).
  28. ISO 6865. Animal feeding stuffs – Determination of crude fibre content – Method with intermediate filtration. Bureau of Indian Standards (BIS). , (2000).
  29. Fernández, A., Grienke, U., Soler-Vila, A., Guihéneuf, F., Stengel, D. B., Tasdemir, D. Seasonal and geographical variations in the biochemical composition of the blue mussel (Mytilus edulis L.) from Ireland. Food Chemistry. 177, 43-52 (2015).
  30. Pinto, F., et al. Annual variations in the mineral element content of five fish species from the Portuguese coast. Food Research International. 158, 111482 (2022).
  31. Food energy – methods of analysis and conversion factors. Available from: https://www.fao.org/fileadmin/templates/food_composition/documents/book_abstracts/Food_energy.pdf (2003)
  32. . 1169/2011 of the European Parliament and of the Council of 25 -10-2011 Available from: https://eur-lex.europa.eu/legal-content/EN/ALL/?uri=CELEX%3A32011R1169 (2011)
  33. Pathare, P. B., Opara, U. L., Al-Said, F. A. J. Colour measurement and analysis in fresh and processed foods: A review. Food and Bioprocess Technology. 6 (1), 36-60 (2013).
  34. ISO 4120. Sensory analysis – Methodology – Triangle test. International Standard. , (2004).
  35. Reller, L. B., Weinstein, M., Jorgensen, J. H., Ferraro, M. J. Antimicrobial susceptibility testing: A review of general principles and contemporary practices. Clinical Infectious Diseases. 49 (11), 1749-1755 (2009).
  36. Balouiri, M., Sadiki, M., Ibnsouda, S. K. Methods for in vitro evaluating antimicrobial activity: A review. Journal of Pharmaceutical Analysis. 6 (2), 71-79 (2016).
  37. Gajic, I., et al. Antimicrobial susceptibility testing: A comprehensive review of currently used methods. Antibiotics. 11 (4), 427 (2022).
  38. Gonzalez-Pastor, R., et al. Current landscape of methods to evaluate antimicrobial activity of natural extracts. Molecules. 28 (3), 1068 (2023).
  39. Li, J., et al. Antimicrobial activity and resistance: Influencing factors. Frontiers in Pharmacology. 13 (8), 364 (2017).
  40. Silva, A., et al. Macroalgae as a source of valuable antimicrobial compounds: Extraction and applications. Antibiotics. 9 (10), 642 (2020).
  41. Munteanu, I. G., Apetrei, C. Analytical methods used in determining antioxidant activity: A review. International Journal of Molecular Sciences. 22 (7), 3380 (2021).
  42. Ma, S., et al. Comparison of common analytical methods for the quantification of total polyphenols and flavanols in fruit juices and ciders. Journal of Food Science. 84 (8), 2147-2158 (2019).
  43. Tziveleka, L. A., Tammam, M. A., Tzakou, O., Roussis, V., Ioannou, E. Metabolites with antioxidant activity from marine macroalgae. Antioxidants. 10 (9), 1431 (2021).
  44. Ghasemi, M., Turnbull, T., Sebastian, S., Kempson, I. The MTT assay: Utility, limitations, pitfalls, and interpretation in bulk and single-cell analysis. International Journal of Molecular Sciences. 22 (23), 12827 (2021).
  45. Pereira, T., Barroso, S., Mendes, S., Gil, M. M. Stability, kinetics, and application study of phycobiliprotein pigments extracted from red algae Gracilaria gracilis. Journal of Food Science. 85 (10), 3400-3405 (2020).
check_url/65923?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Martins, A., Pinto, F. R., Barroso, S., Pereira, T., Mouga, T., Afonso, C., Freitas, M. V., Pinteus, S., Pedrosa, R., Gil, M. M. Valorization of the Red Seaweed Gracilaria gracilis Through a Biorefinery Approach. J. Vis. Exp. (201), e65923, doi:10.3791/65923 (2023).

View Video