Summary

Rask og effektiv anrikning av mus ryggmargen microglia

Published: September 22, 2023
doi:

Summary

Mikroglia regnes som noen av de mest allsidige cellene i kroppen, i stand til morfologisk og funksjonell tilpasning. Deres heterogenitet og multifunksjonalitet muliggjør vedlikehold av hjernens homeostase, samtidig som de er knyttet til ulike nevrologiske patologier. Her beskrives en teknikk for rensing av ryggmargsmikroglia.

Abstract

Virvelsøylen definerer et virveldyr og former ryggraden, et hulrom som omslutter og beskytter ryggmargen. Riktig utvikling og funksjon av pattedyrs sentralnervesystem er avhengig av aktiviteten til bosatt makrofager kjent som mikroglia. Mikroglia viser heterogenitet og multifunksjonalitet, noe som muliggjør distinkt genuttrykk og oppførsel i ryggmargen og hjernen. Tallrike studier har utforsket cerebral mikroglia-funksjon, og beskriver rensingsmetoder omfattende. Rensingen av mikroglia fra ryggmargen hos mus mangler imidlertid en omfattende beskrivelse. I motsetning til dette mangler bruken av en høyt renset kollagenase, i motsetning til et uraffinert ekstrakt, rapportering i vev i sentralnervesystemet. I denne studien ble virvelsøylen og ryggmargen skåret ut fra 8-10 uker gamle C57BL/6-mus. Påfølgende fordøyelse benyttet en svært renset kollagenase, og mikrogliarensing benyttet en tetthetsgradient. Cellene gjennomgikk farging for flowcytometri, og vurderte levedyktighet og renhet gjennom CD11b- og CD45-farging. Resultatene ga en gjennomsnittlig levedyktighet på 80% og en gjennomsnittlig renhet på 95%. Avslutningsvis involverte manipulering av musemikroglia fordøyelsen med en høyt renset kollagenase, etterfulgt av en tetthetsgradient. Denne tilnærmingen produserte effektivt betydelige ryggmargsmikrogliapopulasjoner.

Introduction

Den definerende egenskapen til vertebrater er vertebral kolonnen eller ryggraden, hvor notokordet er erstattet av en sekvens av segmenterte bein kalt ryggvirvler, delt med intervertebrale skiver. Denne rekkefølgen av osseous materiale former spinalkanalen, et hulrom som omslutter og beskytter ryggmargen1. I slekten Rodentia er ryggraden vanligvis dannet av syv nakkevirvler, tretten thoraxvirvler, seks lumbale ryggvirvler og et variabelt antall kaudale ryggvirvler 2,3. Lengden på ryggmargen er lik ryggraden, og det terminale filum er en ikke-nervøs struktur som forankrer ryggmargen til sakrummet. I tillegg går nervefibrene ut gjennom det intervertebrale foramen1.

Utviklingen og riktig funksjon av sentralnervesystemet hos pattedyr er kritisk avhengig av aktiviteten til nervesystemets fastboende makrofager, kalt mikroglia4. Selv om mikroglia opprinnelig ble beskrevet som hjernebosatte fagocytter, har nyere forskning tilskrevet mange dynamiske funksjoner til disse cellene 5,6. Microglias størrelse varierer fra 7 til 10 μm i homeostase; De regnes blant de mest allsidige cellene i kroppen og kan tilpasse seg morfologisk og funksjonelt til deres stadig skiftende miljø7. Disse cellene viser høy heterogenitet under både embryonale og voksne stadier8,9, mens de i voksenstadiet også viser kompleks funksjonell heterogenitet basert på deres spatiotemporale kontekst10. Heterogeniteten og flere funksjoner av mikroglia tillater differensielt genuttrykk og oppførsel i ryggmargen og hjernen. Det har vist seg at CD11b, CD45, CD86 og CCR9-uttrykk er høyere i ryggmargen sammenlignet med hjernen 8,9.

Det finnes flere protokoller for isolering av cerebral mikroglia11,12; Imidlertid finnes det bare noen få for ryggmargsmikroglia13,14. Optimalisering av en metode for rensing av mikroglia fra ryggmargen letter utviklingen av flere studier fokusert på å oppdage mikrogliafysiologi. Denne protokollen tar sikte på å beskrive en enkel og svært reproduserbar ekstraksjon av musens ryggmarg og rensing av mikroglia (figur 1).

Protocol

Studien ble utført i samsvar med den offisielle meksikanske standarden NOM-062-ZOO-1999 og veiledningen for omsorg og bruk av laboratoriedyr. Godkjenning for studien ble innhentet fra forsknings-, etikk- og biosikkerhetskomiteene ved Mexico Children’s Hospital (HIM/2023/006) og forsknings- og bioetikkkomiteen ved General Hospital of Mexico Eduardo Liceaga (DI/21/501/04/62). Tre C57BL/6-mus i alderen 6 til 8 uker ble hentet fra Mexico Children’s Hospital, hvor de ble oppdratt under isolerte forhold i ventilerte stativer,…

Representative Results

Ved bruk av musryggmargsvev ble enzymatisk fordøyelse utført ved bruk av en blanding som var sterkt beriket med kollagenase og termolysin. Det resulterende fordøyde vevet gjennomgikk passasje gjennom et 40 μm filter for å eliminere ufordøyd materiale. De oppsamlede cellene ble anriket gjennom en Percoll-tetthetsgradient, med 90% i den nedre delen og 45% i den øvre delen. De mikrogliaberikede cellene i grenseflaten ble deretter farget med CD45- og CD11b-antistoffer og utsatt for flowcytometrisk analyse (<strong cla…

Discussion

Tallrike protokoller er utviklet for studier av mikroglia på grunn av deres betydning i hjernens homeostase. I disse metodene kommer mikroglia vanligvis fra hjernehalvdelene hos embryonale eller neonatale rotter og mus17. Et begrenset antall studier har adressert rensing av mikroglia fra ryggmargen hos voksne mus13,14. Disse teknikkene involverer enzymatisk fordøyelse ved bruk av kollagenase og/eller papain sammen med DNAse, ofte kombine…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av stipend gitt av National Council of Science and Technology (CONACYT) (702361). Forfatterne anerkjenner Ph.D. program i biologiske kjemiske vitenskaper ved National School of Biological Sciences ved National Polytechnic Institute.

Materials

15 mL collection tubes Corning, USA 430790
2 mL microtubes Axygen, USA MCT-200-G
2.4G2 anti-FcR BioLegend, USA 101302
50 mL collection tubes Corning, USA 430829
70% ethanol
Antibiotic-Antimycotic (penicillin, streptomycin, amphotericin b) Gibco, USA 15240062
Antibody CD11b eFluor 450 anti-mouse eBioscience, USA 48-0112
Antibody CD45 PerCP anti-mouse   BioLegend, USA 103130
Balanced salt solution (PBS) calcium- magnesium-free Corning, USA 46-013-CM
Blue Cell Strainer 40 μm Corning, USA 352340
Costar 6-well Clear Not Treated  Corning, USA CLS3736
Coverslips
Digital Heating Shaking Drybath  Thermo Scientific Digital HS Drybath, USA 88870001
Dissecting forceps for microsurgery FT by DUMONT
DNase Roche, USA 4536282001
Dulbecco´s Modified Eagle´s Medium-high glucose (DMEM)  Merck, USA D6429
Electric shaver
FACS tube Thermo, USA 352058
Fetal bovine serum (FBS) PAN Biotech, Alemania P30-3306
Flow cytometer Cytoflex  Beckman Coulter
Hank’s balanced salt solution  Merck, USA H2387
L-glutamine Corning, USA  15393631
Liberase TM  Roche, USA 5401119001
Neubauer chamber Counting Chambers China 1103
Pentobarbital
Percoll  Merck, USA 17089101 density gradient centrifugation 
Poly-L-lysine solution  Merck, USA P8920
Scalpel No. 25  HERGOM, Mexico H23
Snaplock Microcentrifuge Tubes 2 mL Axygen, USA 10011-680
Stereoscopic microscope Velab, Mexico HG927831
Straight surgical scissors (10 cm) HERGOM, Mexico
Straight Vannas scissors HERGOM, Mexico
Triton X100 Merck, USA X100
Trypan blue Stain 0.4%  Merck, USA 15250-061
Vortex mixer DLAB, China 8031102000
Zombie Aqua Fixable Viability Kit BioLegend, USA 423102 amine-reactive fluorescent dye staining 

References

  1. Schröder, H., Schröder, , Moser, , Huggenberger, , et al. . Neuroanatomy of the Mouse. , 59-78 (2020).
  2. Sengul, G., et al. Cytoarchitecture of the spinal cord of the postnatal (P4) mouse. Anat Rec. 295, 837-845 (2012).
  3. Bab, I., et al. . Microtomographic atlas of the mouse skeleton. VIII, 205 (2007).
  4. Nayak, D., et al. Microglia development and function. Annu Rev Immunol. 32, 367-402 (2014).
  5. Martinez, F. O., et al. Macrophage activation and polarization. Front Biosci. 13, 453-461 (2008).
  6. Masuda, T., et al. Microglia heterogeneity in the single-cell era. Cell Rep. 30 (5), 1271-1281 (2020).
  7. Prinz, M. Microglia biology: one century of evolving concepts. Cell. 179 (2), 292-311 (2019).
  8. de Haas, A. H., et al. Region-specific expression of immunoregulatory proteins on microglia in the healthy CNS. Glia. 56 (8), 888-894 (2008).
  9. Xuan, F. L., et al. Differences of microglia in the brain and the spinal cord. Front Cell Neurosci. 13, 504 (2019).
  10. Paolicelli, R. Microglia states and nomenclature: A field at its crossroads. Neuron. 110 (21), 3458-3483 (2022).
  11. Li, Q., et al. Spinal IL-36γ/IL-36R participates in the maintenance of chronic inflammatory pain through astroglial JNK pathway. Glia. 67 (3), 438-451 (2019).
  12. Prinz, M., et al. Microglia and central nervous system-associated macrophages-from origin to disease modulation. Annu Rev Immunol. 39, 251-277 (2021).
  13. Yip, P. K., et al. Rapid isolation and culture of primary microglia from adult mouse spinal cord. J Neurosci Methods. 183 (2), 223-237 (2009).
  14. Akhmetzyanova, E. R., et al. Severity- and time-dependent activation of microglia in spinal cord injury. Int J Mo. Sci. 24 (9), 1-16 (2023).
  15. Mahadevan, V. Anatomy of the vertebral column. Surgery. 36 (7), 327-332 (2018).
  16. Krukowski, K., et al. Temporary microglia-depletion after cosmic radiation modifies phagocytic activity and prevents cognitive deficits. Sci Rep. 8 (1), 1-13 (2018).
  17. Cardona, A., et al. Isolation of murine microglial cells for RNA analysis or flow cytometry. Nat Protoc. 1, 1947-1951 (2006).
  18. Schmidt, V. M., et al. Comparison of the enzymatic efficiency of Liberase TM and tumor dissociation enzyme: effect on the viability of cells digested from fresh and cryopreserved human ovarian cortex. Reprod Biol Endocrinol. 16 (57), 1-14 (2018).
  19. Kusminski, C. M., et al. MitoNEET-parkin effects in pancreatic α- and β-cells, cellular survival, and intrainsular cross talk. Diabetes. 65 (6), 1534-1555 (2016).
check_url/65961?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Gutiérrez-Román, C. I., Meléndez Camargo, M. E., García Rojas, C. C., Jimenez Olvera, M., Gutiérrez Román, S. H., Medina-Contreras, O. Rapid and Efficient Enrichment of Mouse Spinal Cord Microglia. J. Vis. Exp. (199), e65961, doi:10.3791/65961 (2023).

View Video