Summary

Modelo de Olho Seco de Rato com Disfunção da Glândula Lacrimal Induzida por Escopolamina

Published: February 09, 2024
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Summary

Aqui, estabelecemos um modelo de disfunção da glândula lacrimal em ratos para fornecer uma base para o estudo do olho seco aquoso-deficiente.

Abstract

O olho seco aquoso-deficiente (ADDE) é um tipo de doença do olho seco que pode resultar na redução da quantidade e qualidade da secreção lacrimal. A produção anormal prolongada de lágrimas pode levar a um distúrbio no ambiente da superfície ocular, incluindo danos na córnea e inflamação. Em casos graves, o ADDE pode causar perda de visão ou até cegueira. Atualmente, o tratamento do olho seco é limitado a colírios ou fisioterapia, que só podem aliviar os sintomas de desconforto ocular e não podem fundamentalmente curar a síndrome do olho seco. Para restaurar a função da glândula lacrimal no olho seco, criamos um modelo animal de disfunção da glândula lacrimal em ratos induzida por escopolamina. Através da avaliação abrangente da glândula lacrimal, córneas, conjuntivas e outros fatores, pretendemos fornecer uma compreensão completa das alterações patológicas do ADDE. Comparado com o modelo atual de olho seco em camundongos, este modelo animal de ADDE inclui uma avaliação funcional da glândula lacrimal, fornecendo uma melhor plataforma para estudar a disfunção da glândula lacrimal no ADDE.

Introduction

Em 2021, aproximadamente 12% das pessoas são significativamente afetadas pelo olho seco1, tornando-se uma das doenças oculares crônicas mais comuns. O olho seco pode ser dividido em dois tipos: olho seco aquoso-deficiente (ADDE) e olho seco evaporativo (EDE)2, dependendo dos diferentes fatores que afetam a doença. O ADDE é subdividido em síndrome de Sjögren (SS) e não-SS, mas a maioria dos pacientes com olho seco são pacientes não SS na clínica3. Os sintomas crônicos de olho seco afetam seriamente a qualidade visual dos pacientes. Atualmente, o tratamento convencional da DED envolve a aplicação de lágrimas artificiais para lubrificar a superfície ocular e fisioterapia das pálpebras. No entanto, a síndrome do olho seco pode não oferecer uma cura completa em muitos casos. Portanto, estudar a patogênese da doença do olho seco é crucial para o desenvolvimento de novas terapias e drogas. Modelos animais da síndrome do olho seco fornecem uma base para pesquisas futuras.

Existem muitas maneiras de construir modelos animais da síndrome do olho seco4, incluindo a alteração dos níveis de secreção lacrimal alterando os níveis hormonais. Por exemplo, a remoção dos testículos de ratos pode reduzir a secreção androgênica, aumentar a secreção lacrimal e diminuir a concentração de componente secretor livre (CS) e IgA nas lágrimas 5,6. Outro método é indicar reações autoimunes na glândula lacrimal, removendo os nervos da superfície ocular que controlam a glândula. Além disso, a redução direta da secreção lacrimal pode ser obtida com a remoção cirúrgica da glândula lacrimal7. A mudança das condições ambientais também pode acelerar a evaporação da lágrima. Por exemplo, a cultura de animais em condições de baixa umidade e ventilação seca pode estabelecer um modelo de olho seco evaporativo excessivo8, que pode ser combinado com outros métodos para aumentar a severidade do olho seco. Os principais fármacos utilizados para induzir modelos experimentais de olho seco são a atropina e aescopolamina9. Como inibidores parassimpáticos, ambos podem induzir bloqueio farmacológico dos receptores colinérgicos (muscarínicos) na glândula lacrimal e inibir a secreção lacrimal. Em comparação com os olhos secos causados pela injeção do músculo atropina10, a escopolamina tem um efeito inibitório mais forte sobre as glândulas de secreção, uma duração mais longa da ação da droga e efeitos mais fracos sobre os músculos cardíacos, intestino delgado e lisos brônquicos. É uma das drogas mais maduras para modelos animais de olho seco.

Diferentes métodos podem ser utilizados para induzir o olho seco com escopolamina, como injeção subcutânea, bomba de fármaco ou aplicação de adesivos 4,11,12. A fim de reduzir a frequência de administração de drogas a animais experimentais, muitos pesquisadores aplicam adesivos transdérmicos na cauda de camundongos ou usam bombas de drogas. No entanto, ambos os métodos têm limitações. Por exemplo, a absorção de adesivos transdérmicos precisa levar em conta a absorção individual de camundongos, o que pode levar a uma dosagem inconsistente da droga. Embora as bombas de fármacos possam controlar com precisão a dosagem de cada administração, nem sempre são compatíveis com o fármaco que está sendo administrado ou com a concentração que está sendo utilizada. Eles também precisam ser colocados cirurgicamente – o que é mais invasivo para o animal, exigindo um evento anestésico, e há potencial para complicações pós-cirúrgicas, como deiscências. A injeção subcutânea, embora mais pesada, pode garantir a dosagem precisa para cada administração e manter a consistência na administração do medicamento entre diferentes ratos. Ao mesmo tempo, tem um custo mais baixo e é adequado para a realização de um grande número de experimentos com animais.

Este estudo aplica repetidas injeções subcutâneas de escopolamina para estabelecer um modelo de olho seco em ratos. Analisamos indicadores de olho seco como defeitos corneanos, níveis de secreção lacrimal e morfologia patológica da córnea, conjuntiva e glândula lacrimal. Ao combinar concentração de drogas, manifestações patológicas e sintomas de olho seco, elaboramos o modelo de rato de olho seco em detalhes, fornecendo dados experimentais mais precisos para o estudo do tratamento do olho seco e mecanismos patológicos. Também descrevemos o processo de modelagem em detalhes para futuros pesquisadores.

Protocol

Todos os experimentos com animais realizados seguindo este protocolo são realizados sob a aprovação do Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais (IACUC). 1. Preparo dos animais Preparar 12 ratas Wistar saudáveis com FPS de 6 semanas de idade, pesando 160 g ± 20 g. Use uma lâmpada de fenda e oftalmoscópio para examinar as condições oculares de todos os ratos, garantindo que não haja doenças do segmento anterior ou da retina. Cri…

Representative Results

Teste Schirmer I, SIT IO volume lacrimal dos ratos foi medido nos dias 0, 3, 5, 7, 11, 15 e 19 após o início do experimento. Os resultados experimentais mostraram que a secreção lacrimal do grupo escopolamina (grupo 2,5, grupo 5, grupo 7,5), em comparação com o grupo controle (grupo 0), estava significativamente diminuída, e a diferença foi estatisticamente significativa (P 0,05). Não houve diferença significa…

Discussion

O olho seco aquoso-deficiente (EDDA) é um importante tipo de olho seco, correspondendo a cerca de 1/3 da população total de olhoseco17, e a principal causa de EDDA é o dano patológico e a inflamação da glândula lacrimal13. Para esse tipo de olho seco, os métodos de tratamento clínico mais comuns são as lágrimas artificiais para aliviar os sintomas ou a aplicação tópica de esteroides ou ciclosporina18, enquanto há poucas opções de tr…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este estudo foi apoiado pela Guangdong Provincial High-level Clinical Key Specialties (SZGSP014) e Shenzhen Natural Science Foundation (JCYJ20210324125805012).

Materials

0.9% sodium chloride solution SJZ No.4 Pharmaceutical H13023201
4% paraformaldehyde Wuhan Servicebio Technology Co., Ltd G1113
Absolute ethanol Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd. 10009218
Fluorescein sodium ophthalmic strips Tianjin Yinuoxinkang Medical Device Tech Co., Ltd YN-YG-I
Hematoxylin and eosin Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute D006
Neutral balsam Beijing Solarbio Science & Technology Co., Ltd.  G8590
Paraffin Beijing Solarbio Science & Technology Co., Ltd. YA0012
Periodic Acid-Schiff Staining Kit Beyotime Biotechnology C0142S
Schirmer tear test strips Tianjin Yinuoxinkang Medical Device Tech Co., Ltd YN-LZ-I
Scopolamine hydrobromide Shanghai Macklin Biochemical Co., Ltd S860151
Small animal microscope Head Biotechnology Co,. Ltd ZM191
Xylene Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd. 10023418

References

  1. Papas, E. B. The global prevalence of dry eye disease: A Bayesian view. Ophthalmic Physiol Opt. 41 (6), 1254-1266 (2021).
  2. Sy, A., et al. Expert opinion in the management of aqueous deficient dry eye disease (DED). BMC Ophthalmol. 15 (1), 133 (2015).
  3. Seo, Y., et al. Activation of HIF-1alpha (hypoxia inducible factor-1alpha) prevents dry eye-induced acinar cell death in the lacrimal gland. Cell Death Dis. 5 (6), 1309 (2014).
  4. Rahman, M. M., Kim, D. H., Park, C. -. K., Kim, Y. H. Experimental models, induction protocols, and measured parameters in dry eye disease: Focusing on practical implications for experimental research. Int J Mol Sci. 22 (22), 12102 (2021).
  5. Sullivan, D. A., Bloch, K. J., Allansmith, M. R. Hormonal influence on the secretory immune system of the eye: androgen regulation of secretory component levels in rat tears. J Immunol. 132 (3), 1130-1135 (1984).
  6. Sullivan, D. A., Allansmith, M. R. Hormonal modulation of tear volume in the rat. Exp Eye Res. 42 (2), 131-139 (1986).
  7. Maitchouk, D. Y., Beuerman, R. W., Ohta, T., Stern, M., Varnell, R. J. Tear production after unilateral removal of the main lacrimal gland in squirrel monkeys. Arch Ophthalmol. 118 (2), 246-252 (2000).
  8. Barabino, S., et al. The controlled-environment chamber: a new mouse model of dry eye. Invest Ophthalmol Vis Sci. 46 (8), 2766-2771 (2005).
  9. Viau, S., et al. Time course of ocular surface and lacrimal gland changes in a new scopolamine-induced dry eye model. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 246 (6), 857-867 (2008).
  10. Altinors, D. D., Bozbeyoglu, S., Karabay, G., Akova, Y. A. Evaluation of ocular surface changes in a rabbit dry eye model using a modified impression cytology technique. Curr Eye Res. 32 (4), 301-307 (2007).
  11. Daull, P., et al. Efficacy of a new topical cationic emulsion of cyclosporine A on dry eye clinical signs in an experimental mouse model of dry eye. Exp Eye Res. 153, 159-164 (2016).
  12. Dursun, D., et al. A mouse model of keratoconjunctivitis sicca. Invest Ophthalmol Vis Sci. 43 (3), 632-638 (2002).
  13. Fischer, A. H., Jacobson, K. A., Rose, J., Zeller, R. Cutting sections of paraffin-embedded tissues. CSH Protoc. 2008, (2008).
  14. Fischer, A. H., Jacobson, K. A., Rose, J., Zeller, R. Hematoxylin and eosin staining of tissue and cell sections. CSH Protoc. 2008, (2008).
  15. Shinomiya, K., Ueta, M., Kinoshita, S. A new dry eye mouse model produced by exorbital and intraorbital lacrimal gland excision. Sci Rep. 8 (1), 1483 (2018).
  16. Ramos, M. F., et al. Nonproliferative and Proliferative Lesions of the Rat and Mouse Special Sense Organs(Ocular [eye and glands], Olfactory and Otic). J Toxicol Pathol. 31, (2018).
  17. Stapleton, F., et al. TFOS DEWS II Epidemiology report. Ocul Surf. 15 (3), 334-365 (2017).
  18. Foulks, G. N., et al. Clinical guidelines for management of dry eye associated with Sjogren disease. Ocul Surf. 13 (2), 118-132 (2015).
  19. Huang, W., Tourmouzis, K., Perry, H., Honkanen, R. A., Rigas, B. Animal models of dry eye disease: Useful, varied and evolving (Review). Exp Ther Med. 22 (6), 1394 (2021).
  20. Brayer, J. B., Humphreys-Beher, M. G., Peck, A. B. Sjogren’s syndrome: immunological response underlying the disease. Arch Immunol Ther Exp (Warsz. 49 (5), 353-360 (2001).
  21. Lin, Z., et al. A mouse dry eye model induced by topical administration of benzalkonium chloride). Mol Vis. 17, 257-264 (2011).
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Cite This Article
Li, S., Xiao, Y., Tang, Y., Zhang, Y., Ma, Y., Wang, L., Ye, L. A Rat Dry Eye Model with Lacrimal Gland Dysfunction Induced by Scopolamine. J. Vis. Exp. (204), e66036, doi:10.3791/66036 (2024).

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