我们提供了一种通过输注脂多糖建立猪实验性内毒素血症休克模型的实验方案。
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我们提供了一种通过输注脂多糖建立猪实验性内毒素血症休克模型的实验方案。
脓毒症和脓毒性休克在重症监护病房(ICU)接受治疗的患者中十分常见,是这些患者死亡的主要原因之一。其病因是机体对感染产生的免疫反应失调。即使采用优化治疗,病死率仍然很高,因此有必要进一步深入了解其病理生理机制并开发新的治疗方案。脂多糖(LPS)是革兰氏阴性菌细胞膜的组成部分,而这类细菌常导致引发脓毒症和脓毒性休克的感染。
脓毒症和脓毒性休克的严重性及高死亡率使得在人体中开展标准化实验研究成为不可能。因此,需要借助动物模型进行深入研究。猪在解剖结构、生理特征和体型方面与人类高度相似,特别适合用于此目的。
本方案通过输注脂多糖(LPS)建立猪内毒素血症休克的实验模型。我们能够可靠地诱导出脓毒性休克患者中常见的多种变化,包括血流动力学不稳定、呼吸衰竭和酸中毒。这将使研究人员能够深入理解这一高度相关的临床状况,并在实验环境中评估新的治疗策略。
脓毒症和脓毒性休克是接受重症监护治疗患者死亡的主要原因之一1,2,3。当感染引发免疫反应失调并导致多器官功能衰竭时,即发生脓毒症。其特征为危及生命的症状,包括血流动力学不稳定、呼吸窘迫、肝肾功能衰竭以及认知障碍4,5。脓毒性休克是脓毒症的一个亚型,症状尤为严重,显著增加死亡风险。这些症状包括持续性低血压,需使用血管加压药物治疗,以及血清乳酸水平超过 2 mmol∙L-1 4,5。即使接受住院治疗,脓毒性休克患者的死亡率估计仍高达 40%1,3,5。
革兰氏阴性菌(如Pseudomonas和Escherichia coli)常引起感染,从而触发这种失调的免疫反应4。其潜在的病理生理机制复杂,尚未完全阐明。其中一个已有明确描述的方面是病原体相关分子模式(PAMPs)激活免疫细胞上的Toll样受体,导致肿瘤坏死因子-α(TNFα)或白细胞介素1(IL 1)等细胞因子的释放4。其中一种PAMP是脂多糖(LPS),它是革兰氏阴性菌细胞膜的组成成分6。LPS已在动物模型中被用于诱导内毒素血症及内毒素性休克7,8。
动物模型为开发和研究新的治疗策略提供了可控且标准化的环境。由于猪模型具有与人类相似的解剖结构、免疫生理特性以及相近的血流动力学参数,因此特别适用于研究内毒素性休克的影响9,10。此外,由于猪的气道和血管尺寸与人类相近,临床上常用于人类患者的标准化医疗设备可直接应用于猪,从而便于实施各种介入操作和血流动力学监测。
通过本方案,我们提供了一种通过静脉输注来源于大肠杆菌(E. coli)的脂多糖(LPS)在猪体内建立内毒素血症休克的实验模型。为监测其效应,我们测量了血流动力学和肺功能参数,包括动脉血压、心率、外周血氧饱和度、肺动脉压和气道压力。为评估内毒素血症对脑部氧供的影响,我们采用了近红外光谱技术(NIRS)。该方法可通过贴于前额的粘附电极无创评估脑组织氧饱和度11。
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本方案中的实验已获得德国莱茵兰-普法尔茨州国家及机构动物护理委员会(Landesuntersuchungsamt Rheinland-Pfalz,科布伦茨,德国,TVA G21-1-080)的批准。实验实施遵循ARRIVE指南。本研究使用了六只健康的雄性德国兰德雷斯猪,年龄为2-3个月,体重为30-35 kg。实验时间线详见图1。本方案中使用的所有材料和仪器的详细信息列于材料表中。

图1:实验时间线。 在动物准备完成并经过30分钟稳定期后,采集基线健康指标。通过30分钟内的LPS注射诱导内毒素血症,并在另30分钟后采集0小时测量值;此后每小时持续测量,共4小时。缩写:BLH = 基线健康状态;LPS = 脂多糖。请点击此处查看该图的放大版本。
1. 动物准备
2. 麻醉与机械通气
3. 仪器设备
4. 诱导休克
注意:操作 LPS 时,务必佩戴手套、防护眼镜、口罩和实验服。避免与 LPS 直接接触。
5. 血流动力学不稳定的治疗

图2:PiCCO指导下的血流动力学不稳定治疗。 在获取CI、GEDI和ELWI的测量值后,根据此图表进行治疗。本图改编自PiCCO用户指南12。缩写:PiCCO = 脉搏轮廓法心输出量;V+ = 容量负荷;cat = 儿茶酚胺治疗;V- = 容量减少;CI = 心脏指数;GEDI = 全舒张末期容积指数;ELWI = 血管外肺水指数。 请点击此处查看此图的放大版本。
6. 实验结束与安乐死
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本研究中,六只健康的雄性猪(年龄2-3个月,体重30-35 kg)在麻醉后接受脂多糖(LPS)输注,以诱导内毒素血症。为确定能够稳定诱发休克症状所需的合适LPS剂量,对猪给予了不同诱导剂量的LPS,范围从 100 µg kg-1 到 200 µg kg-1 在30分钟内输注完毕,随后以初始剂量的1/10每小时维持至实验结束。所有动物在脂多糖(LPS)输注后不久即出现休克表现。使用PiCCO系统监测血流动力学参数。动物表现出心脏指数下降和心率升高,提示休克状态下存在血流动力学不稳定。LPS输注后平均动脉压下降,但通过液体复苏或必要时输注去甲肾上腺素,使其维持在60 mmHg以上。图3)。肺损伤表现为 PaO₂ 降低2 FiO2-1 比值及肺动脉压力升高(图4)。使用近红外光谱法(NIRS)测量脑氧合,发现在休克诱导后脑氧合下降(图5...
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我们提出了一种通过输注脂多糖(LPS)在猪体内诱导实验性内毒素血症的方案,旨在可靠地引发脓毒症和感染性休克中常见的生理变化。该方案中需考虑若干关键步骤。在转运前对猪进行充分镇静至关重要,以防止应激引起的儿茶酚胺水平升高,从而可能影响实验结果。由于猪的吻部较长,其解剖结构使得插管操作相较于人类更具挑战性。为此,我们建议使用Macintosh喉镜片进行插管,且气管导管应配备直式导丝。会厌常与软腭粘连,此外,由于动物气管声门下区域存在狭窄,有时可能需要使用更小的气管导管——即使导管能够通过声带,仍可能因尺寸过大而无法顺利插入。
在输注LPS之前,必须精确配制LPS浓度。给予过高剂量的LPS可能导致严重的血流动力学不稳定甚至死亡,而剂量过低则可能无法产生预期效果。此外,需注意不同批次的LPS可能具有不同的效力。我们建议每次实验使用同一批次的LPS。可开展剂量探索性试验,以确定每项研究的合适剂量。一旦开始输注LPS,由于可能出现快速的血流动力学不稳定,持续监测血流动力学参数至关重要。必要时需及时干预,以处理任何不良反应。
PiCCO 用...
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本研究中的近红外光谱(NIRS)设备由美国美敦力公司(Medtronic PLC)无偿提供,仅用于实验研究目的。Alexander Ziebart 收到了美敦力公司(Medtronic PLC)支付的讲课费。所有作者均声明不存在任何经济利益或其他利益冲突。本稿件由 ChatGPT®(Python Software,版本:2023 年 5 月 24 日)进行校对和编辑。
作者感谢 Dagmar Dirvonskis 提供的出色技术支持。
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