Summary

チックの全マウントの抗体染色のための方法

Published: February 02, 2009
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Summary

このビデオでは、全体のマウント免疫組織化学、抗原の空間的および時間的発現パターンは、若いニワトリ胚における可視化することができる方法を示しています。このメソッドは当​​初、ジェーンドッドとトムJessellによって導入されました。

Abstract

ニワトリ胚は、初期胚発生の研究に貴重なツールです。その透明性、アクセス性と操作の容易さ、それを脳、神経管や体節の開発に抗体発現を研究するための理想的なツールとなっています。このビデオでは、HRP標識二次抗体を用いたホールマウントの抗体染色で別の手順を示し、まず、胚は卵から解剖し、パラホルムアルデヒドで固定されています。第二に、内因性ペルオキシダーゼの不活化であり、胚は、その後一次抗体にさらされています。数回の洗浄後、胚は、HRPにコンジュゲートした二次抗体とインキュベートされる。ペルオキシダーゼ活性は、ジアミノベンジジン基質との反応を用いて明らかにされる。最後に、胚を固定して、写真とセクショニングのために処理されます。蛍光抗体の使用に比べてこの方法の利点は、胚は、このような断面で抗原部位の調査を可能にする、ワックスのセクショニングのために処理できることです。このメソッドは当​​初、ジェーンドッドとトムJessellによって導入された<sup> 1</sup>。

Protocol

I.の概要図: このビデオでは、ニワトリ胚での全体のマウント免疫組織化学での別の手順を示しています。最初に、胚はPFAで固定されています[IHC1]。次に、内因性ペルオキシダーゼ活性をクエンチされる[IHC2]。胚は、その後一次抗体[IHC3]でインキュベートする。数回の洗浄後、胚を二次抗体で[IHC4]をインキュベートされ、色の反応は、DAB [IHC5]と抗体染色を用いて明らかに…

Discussion

このビデオでは、若いニワトリ胚のホールマウントの抗体染色を行うことで様々なステップを示しています。このプロトコルは、本質的に空間的および時間的ひよこ2,3における新規抗体の特徴だけでなく、侮辱4次胚の奇形を決定するために、既知の抗原マーカーの使用のために使用されます。

Acknowledgements

(J.ドッド、TM JessellとA.川上)によって開発されたモノクローナル抗体は(15.3B9、PAX7)生物科学科、アイオワ大学でNICHDと維持の後援の下に開発された発達研究ハイブリドーマバンクから入手した、アイオワ州。 DPは、薬物乱用の国民の協会からルースキルシュシュタイン賞1F32 DA021977 – 01A1の受信者です。この作品は、RHFへマーガレットM. Alkek財団によってサポートされていました。

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Eggs   Charles River Laboratories Premium Fertile Fertilized, HH4 (16 hr)
Stereomicroscope Microscope Leica Microsystems MZ9.5 or similar  
Marsh Automatic Incubator Other Lyon RX  
Curved Forceps (1) Tool Electron Microscopy Sciences 72991-4C  
Forceps (2) Tool Fine Science Tools 11002-13  
Fine scissors Tool Fine Science Tools 14161-10  
Plastic dishes Tool Falcon 353001  
Rubber Bulb Tool Electron Microscopy Sciences 70980  
Pasteur Capillary Pipette Tool Electron Microscopy Sciences 70950-12 round edge under flame
Microdissecting knife Tool Fine Science Tools 10056-12 Use to cut embryo from surrounding membranes following fixation
Sylgard 184 Silicon Elastomer Curing Agent and Base Reagent Dow Corning 0001986475 Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
16% PFA Reagent Electron Microscopy Sciences 15710  
30% H2O2 Reagent Sigma H1009  
BSA Reagent Sigma A3803  
NGS Reagent Jackson Immuno 005-000-121  
Primary Antibodies Reagent Developmental studies Hybridoma Bank 4G11, 15.3B9, PAX7 For these antibodies, investgators used mouse donnors
Peroxidase conjugated-Goat Anti-Mouse IgG (H+L) Reagent Jackson Immuno 115-035-003  
3,3’-diaminobenzidine tetrahydrochloride Reagent Pierce 34001 Store at -20; Allow bottle to warm to RT before use.
Cedar wood oil Reagent Sigma W522503  
Fast green FCF Reagent Sigma F7252  
Minuten pins 0.2mm diam   Fine Science Tools 26002-20  

References

  1. Yamada, T., Placzek, M., Tanaka, H., Dodd, J., Jessell, T. M. Control of cell pattern in the developing nervous system: Polarizing activity of the floor plate and notochord. Cell. 64, 635-647 (1991).
  2. Streit, A., Stern, C. D., Thery, C., Ireland, G. W., Aparicio, S., Sharpe, M. J., Gherardi, E. A role for HGF/SF in neural induction and its expression in Hensen’s node during gastrulation. Development. 121, 813-824 (1995).
  3. Basch, M., Bronner-Fraser, M., Garcia-Castro, M. Specification of neural crest occurs during gastrulation and requires Pax7. Nature. 441, 218-222 (2006).
  4. Psychoyos, D., Stern, C. D. Restoration of the organizer after radical ablation of Hensen’s node and the anterior primitive streak in the chick embryo. Development. 122, 3263-3273 (1996).
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Cite This Article
Psychoyos, D., Finnell, R. Method for Whole Mount Antibody Staining in Chick. J. Vis. Exp. (24), e956, doi:10.3791/956 (2009).

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