Name: Vorbereitung und Respirometrische Bewertung der Mitochondrien isoliert aus dem Skelettmuskelgewebe durch perkutane Nadelbiopsie Erhalten (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-02-07T15:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 27 s
Description: Lernen Sie die Respirometrie isolierter Mitochondrien aus Skelettmuskelbiopsien. Diese Methode erfordert nur 20 mg Gewebe und eignet sich für klinische Forschung zur Diagnose mitochondrialer Dysfunktionen.

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Wir möchten uns bei Dr. Marc Liesa, Boston University School of Medicine, für hilfreiche Diskussionen; Frau Karin Murphy, Frau Heather Gregory und Herrn John Stone, alle von der Wake Forest School of Medicine, für hilfreiche technische Unterstützung bei der Entwicklung dieses Protokolls bedanken.

HINWEIS: Die beschriebenen wurde vom Institutional Review Board der Wake Forest School of Medicine genehmigten Protokoll. Eine Einverständniserklärung wurde schriftlich erhalten. Alle Teilnehmer waren gesunden älteren Erwachsenen (65-79 Jahre) beider Geschlechter, mit BMI zwischen 23-35. 1. Skelettmuskelbiopsie <ol><li> Wie zuvor beschrieben, 9 führen alle Biopsien am frühen Morgen, nachdem ein A / N schnell. Fragen Sie die Themen, zum von Aspirin, verschreibungspflichtigen und OTC-the-counter-nicht-steroidale entzündungshemmende Medikamente oder andere Verbindungen, die Blutungen, Blutplättchen oder Blutergüsse in der Woche vor der Biopsie beeinflussen können unterlassen. Bitten Sie die Teilnehmer auch von jeder anstrengenden Tätigkeit zu enthalten mindestens 36 Stunden vor der Biopsie. HINWEIS: Muscle aus dem Vastus lateralis erhalten mit dem perkutanen Nadelbiopsie Technik mit einem perkutanen Nadel unter Lokalanästhesie mit 1% Lidocain. Keine medizinische Komplikationen oder other berichteten Nebenwirkungen von dem Verfahren wurden in unserem klinischen Forschungseinheit aufgetreten. </li><li> HINWEIS: Die beschriebene Biopsieprozedur wird von der Bergstrom 10 ausgelegt. <ol><li> Kurz gesagt, lokal zu verabreichen 1% Lidocain kümmert sich nicht um den Muskel zu infiltrieren. Befolgen Sie diese mit einem 10 Minuten Wartezeit, um eine ausreichende Betäubung ermöglichen. </li><li> Nehmen Sie die Biopsien aus dem Bauch des Muskels (der mittlere Bereich des Muskels zwischen Ein- und Herkunft) zu vermeiden subfaszialen und myotendonous Bereichen. <ol><li> Verwenden perkutane Nadel (eine Saugwirkung unterstützt wiederverwendbaren Gerät mit einem Seitenschneider Fenster und Innenschneidzylinder) und folgen einer Faszien &quot;Pop&quot; oder Widerstand der Faszie als Leitfaden. </li><li> Schätzen Sie die Tiefe der Anästhesie Nadel, dann wieder das Gefühl, es mit der schmalen Skalpell und eine 4-5 mm Schnitt durch die Faszie. Die Kanüle durch den Einschnitt, bis es in den Muskel eingeführt wird. </li><li> Sammelnmehrere Proben mit dem Fenster gedreht in verschiedenen Richtungen. Bewerben Dauersog mit einem 60-ml-Spritze beim Vorrücken und Zurückziehen Muskelproben in die perkutane Nadel zwei bis vier Mal in verschiedene Richtungen. Unterbrechen Sie die Saug- und entfernen Sie die Nadel. HINWEIS: Jeder Durchlauf (Einsetzen und Entfernen der Nadel) weniger als eine Minute. </li><li> Einen Assistenten anwenden festen Druck auf Website Punktion für 5 Minuten, um eine Hämostase zu etablieren. Trennen Nadel aus Saugschlauch und entfernen Sie vorsichtig Muskelproben aus dem Fenster und Zylinder. </li></ol></li><li> Einen zweiten Durchgang, wenn mehr Muskel wird durch Wiederholen des obigen Verfahrens benötigt. </li><li> Entfernen Sie alle sichtbaren Blutgerinnseln aus der Muskelprobe mit einer Pinzette, wiegen die Probe, und sofort in ein Röhrchen mit eiskaltem DPBS platzieren. HINWEIS: Der Durchschnittsertrag mit dieser Methode ist 150 ± 20 mg. </li></ol></li></ol> 2. Mitochondriale Isolation &lt;ol&gt; <li> Frisch bereiten die Chappel-Perry (CP) und mitochondriale Assay-Lösung (MAS) Puffer (Tabelle 1) am Tag des Experiments oder aliquotieren und lagern Sie sie bei -20 ° C. Bereiten Sie die Verbindungen in Dimethylsulfoxid in einer Konzentration von 2,5 mM und aliquote und bei -20 ° C. Verwenden Sie die bei -20 ° C innerhalb von 2 Monaten ab dem Tag der Vorbereitung gespeicherten Puffer und Verbindung Aliquots. </li><li> Sichtbare Bindegewebe aus der Probe mit einer scharfen Schere und Pinzette; Bei Bedarf Verwendung eines Binokular für diesen Schritt. Gründlich waschen Proben 3-4 mal mit eiskaltem DPBS-Puffer, um Blut zu entfernen. Bewahren Sie die Proben auf eiskaltem DPBS und Verfahren so schnell wie möglich, dabei mehr als 45 Minuten von Biopsie nicht zu überschreiten. Nehmen Sie vorsorglich sorgfältig entfernen Sie alle Sehnen oder Fettgewebe von der Muskelprobe. </li><li> Unmittelbar hacken Muskelgewebe in feine Stücke mit einer sterilen Schere und Aussetzung in 500 ul zu 1 ml enthält CPI proteinase (Nagarse) in einer Konzentration von 0,2 mg / g Gewebe. Folgen Sie dieser mit einer 5-minütigen Inkubation bei Raumtemperatur und dann in Eis zu übertragen. </li><li> Homogenisieren Hackfleisch Gewebe mit Nagarse behandelt unter Verwendung eines automatischen Homogenisator. Halten Sie die Probe auf Eis während des gesamten Prozesses. Homogenisieren jeder Gewebeprobe vier Mal, jedes Mal für einen Impuls von 2 sec, unter Verwendung des automatisierten Homogenisator bei einer Geschwindigkeitseinstellung von 10.000 Upm. Waschen Sie die Sonde mit 70% Ethanol, gefolgt von destilliertem Wasser zwischen Geweben. </li><li> Mit einem gleichen Volumen von CP I (500 &amp; mgr; l bis 1 ml) und 2x Volumen CP II (1 ml bis 2 ml) waschen des homogenisierten Gewebes und sammeln sich die Inhalte in ein Zentrifugenröhrchen und Zentrifugieren bei 600 × g, 4 ° C für 10 min. Übergeben Sie den Überstand durch ein Käsetuch benetzt, das Filtrat und entsorgen Sie den Pellet und damit die Mehrheit der nicht-mitochondriale Fraktionen zu entfernen. </li></ol> 3. Waschen der Mitochondrien <ol><li> Zentrifugieren Sie den Überstand aus dem obigen Schritt 10,000 × g, 4 ° C für 10 min. Suspendiere das Pellet in 4 ml CP-Puffer II und weitere Zentrifuge bei 10.000 × g, 4 ° C für 10 min. HINWEIS: In seltenen Fällen wird eine dünne Pellet von Blut unter der mitochondrialen Pellet geformt. In diesem Fall nehmen Sie die mitochondriale Pellet durch vorsichtiges Ansaugen mit CPII Puffer. Dieser Schritt kann durch gründliches Waschen entfernt Blut in Schritt 2 vermieden werden. </li><li> Hängen Sie das in 2 ml CP I Puffer erhaltenen Pellets. In dieser Phase mit einem kleinen Aliquot dieser Suspension für die Proteinschätzung. Resuspendieren die verbleibende Probe in CP I wie oben Puffer und Zentrifuge. Suspendiere das endgültige Pellet in einer minimalen Menge (200 ul) der mitochondrialen Assaylösung (MAS). HINWEIS: Das Protein wird in dieser Phase untersucht, da CP I Puffer keine BSA, während MAS in dem die Proben später ausgesetzt werden muss haben BSA darin. </li></ol> 4. Schätzen Sie die Mitochondrial Inhalt von Messproteinkonzentration unter Verwendung eines BCA Protein Assay Kit <pclass = &quot;jove_content&quot;&gt; Hinweis: Nutzen Sie diese Konzentration, die Menge der Mitochondrien für das Laden verwendet, auf eine 24-Well-Mikroplatten für respirometrischen Messungen oder für Western-Blot-Experimenten berechnen. Berücksichtigen Sie den Verdünnungsfaktor (10) zur Berechnung der Proteinkonzentration. 5. Führen Sie die XF-Assays wie von Rogers, GW et al. 12 HINWEIS: Visualisieren der O 2 Verbrauchsrate (OCR) in pMol O 2 / min oder absoluten Werte von O 2 und pH-Wert in dem Datenausgang. <ol><li> Verwenden 1x MAS um Verbindungen herzustellen, die injiziert werden. Fügen Sie einen 10x Konzentration der Verbindungen auf die Ports AD, um eine Endkonzentration geben wie folgt: Anschluss A, ADP [Adenosin 5 &#39;-diphosphate, 2 mM, 50 ul]; Port B, Oligomycin (2 &amp; mgr; M, 55 &amp; mgr; l); Port C, FCCP [Carbonylcyanid 4- (Trifluormethoxy) Phenylhydrazon, 6 &amp; mgr; M 60 ul]; und Port D, 2 uM Antimycin-A (65 ul). Bereitenausreichendes Volumen von Verbindungen für die erforderliche Anzahl von Vertiefungen. </li><li> Die Ermittlung der optimalen Menge an Mitochondrien durch Titration. Zum Beispiel maximal 1,0 ug, 2,5 ug und 5,0 ug Mitochondrien pro Vertiefung in einer 50-ul-Volumen eiskaltem 1x MAS enthaltenden Substrat. Um die Variabilität zwischen den Wells zu minimieren, zunächst verdünnen 10x Mitochondrien in kaltem 1x MAS + Substrat. Anschließend liefern 50 ul dieser Suspension in jede Vertiefung (mit Ausnahme der Untergrundkorrektur Brunnen). </li><li> Zentrifugieren Sie die Platte bei 2.000 × g, 20 min bei 4 ° C. Nach dem Zentrifugieren vorsichtig mit 450 ul 1x MAS + Succinat (10 mM) und Rotenon (2 uM) (Anfangsbedingungen, siehe unten) in jede Vertiefung. Die Mitochondrien unter dem Mikroskop sehen homogene Festhalten an der auch vor der Übertragung der Platte an der XF-Analysator zu gewährleisten. HINWEIS: Die verwendeten davon ab, ob die Atmung wird entweder durch ETC-Komplex I oder komplexe II gefahren abhängt Anfangsbedingungen. Für komplexe II gesteuerte Beatmung, mit succinate (10 mM) und Rotenon (2 &amp; mgr; M) als Anfangsbedingungen. Rotenon Blöcke Komplex I und Succinat liefert Brennstoff für komplexe II (Succinatdehydrogenase). Die Atmung von Komplex I angetrieben studieren, verwenden entweder Pyruvat und Malat, jeweils bei einer Endkonzentration von 5 mM oder Glutamat und Malat jeweils bei einer Endkonzentration von 10 mM als Anfangsbedingungen. Letzteres kann bei der Unterscheidung Dysfunktion bei Tricarbonsäurezyklus und Substrat-Transport zu helfen. Atmung sowohl Komplex I und komplexe II angetrieben zu studieren, sind Pyruvat und Succinat ohne Rotenon oder Malat als Anfangsbedingungen. Verwenden Palmitoylcarnitin als ein Substrat für β-Oxidation. </li><li> Nacheinander messen die mitochondriale Atmung in Echtzeit mit Hilfe der Respirometer durch Programmierung es wie zuvor beschrieben 12. Verwenden Sie die Einstellungen für die Respirometer in Tabelle 2 bereitgestellt. HINWEIS: Eine kurze Erläuterung der verschiedenen mitochondrialen Atmung Zustände sind wie folgt: </li><li&gt; State 2 = gekoppelten Zustand mit vorhandenen Substrat; Zustand 3 = Phosphorylieren Atmung in Gegenwart sättigender ADP; Zustand 4 o = nicht-Phosphorylierung Atmung durch Oligomycin induziert; Staats 3u = maximale abgekoppelt Atmung durch den Entkoppler FCCP stimuliert; Rest nicht-mitochondriale Atmung = Atmung nach komplexen III Hemmung durch Antimycin-A. Es sollte auch darauf hingewiesen werden, dass die Länge des OCR-Messung in Kombination mit der mitochondrialen Konzentration konnten die Angaben abbau Sauerstoff während der Messzeiträume zu beeinflussen. </li></ol> 6. Western Blot HINWEIS: Legen Sie die mitochondriale Marker COX IV und ganze Gewebe GAPDH durch Western-Blotting, um die Anreicherung von Mitochondrien in die endgültige Stichprobe zu gewährleisten <ol><li> Trenne die isolierten Mitochondrien und ganze Gewebeextrakt von 12% Natriumdodecylsulfat-Polyacrylamid-Gelen. </li><li> Transfer der Proteine ​​auf eine Polyvinylidenfluorid (PVDF) Membran.</li><li> Inkubieren mit COX IV-Antikörper (1: 20.000), gefolgt von Meerrettich-Peroxidase (HRP) -konjugierten sekundären Antikörpern. Für GAPDH Bestimmung, Streifen der Blot und Sonde mit einer GAPDH monoklonalen Antikörper (1: 2000). HINWEIS: Wenn Unterschiede in der ER Kontamination von Belang sind, umfassen ER Marker wie ERp72, Calnexin, Calreticulin oder in der Analyse. </li></ol>

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<li>Rogers, G. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+throughput+microplate+respiratory+measurements+using+minimal+quantities+of+isolated+mitochondria%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">High throughput microplate respiratory measurements using minimal quantities of isolated mitochondria.</a> PloS One. 6, e21746(2011).</li>
<li>Picard, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondrial+structure+and+function+are+disrupted+by+standard+isolation+methods%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">Mitochondrial structure and function are disrupted by standard isolation methods.</a> PloS One. 6, e18317(2011).</li>
</ol>

Der Autor, George Rogers, ist ein Mitarbeiter von Seahorse Bioscience, die das in diesem Artikel verwendete Instrument herstellen. Die Open-Access-Gebühren wurden von Seahorse Biosciences unterstützt.

Isolierten Mitochondrien werden oft in Studien, die die Rolle von ETC-Funktion, sowie andere mitochondriale Aktivitäten, einschließlich Substrattransport und TCA-Zyklus-Funktion zu untersuchen genutzt. Respirometrische Tests unter Verwendung von isolierten Organellen ermöglichen direkte Untersuchung der grundlegenden Prozesse der oxidativen Phosphorylierung und intrinsischen Eigenschaften des ETC. Respirometrische Profilierung von isolierten Mitochondrien im Vergleich zu ganzen Zellen oder permeabilisierten Muskelfasern hat den Vorteil, relativ einfach die Interpretation der Daten und das Fehlen von &quot;Einmischung&quot; von nicht-mitochondrialen Prozesse oder Veränderungen im mitochondrialen Masse / Biogenese. Die Normalisierung der Daten auf der mitochondrialen Proteingehalt, wodurch einfache Quervergleich der Mitochondrien zwischen den Proben ermöglicht. Respirometrische Profilierung von isolierten Mitochondrien ist eine bevorzugte Vorgehensweise, wenn das Ziel der Studie ist es, festzustellen, zu Grunde liegenden Mechanismen und die Ermittlung konkreter Ziele wie ETC Komponentes / Komplexen oder mitochondrialen Transportmechanismen. Beschrieben ist ein Protokoll zur Muskelbiopsie und Isolierung von funktionellen Mitochondrien aus kleinen Gewebeproben. Diese Methode führt zu reproduzierbaren Ergebnissen zwischen den Benutzern durch die Nutzung eines automatisierten Homogenisator gegenüber Hand bedient Dounce-Homogenisator. Isolierung von Mitochondrien können mit so wenig wie 20 mg des Muskelgewebes geführt werden. Die Menge an isolierter Mitochondrien, die aus dieser Stichprobengröße erhalten werden kann, ist ausreichend, um Seahorse Platte-basierte Respirometrie laufen, während überschüssige Mitochondrien für andere Experimente und die Lagerung für die weitere molekulare Analysen. Es sei darauf hingewiesen, dass dieses Verfahren zum XF 96, wobei auch kleinere Mengen von Mitochondrien kann verwendet werden (1-2 &amp; mgr; g pro Vertiefung) übersetzt werden kann. Mehrere Protokolle zur Isolierung von Mitochondrien setzen auf Dounce-Homogenisator für die erste Gewebezerstörung. Ein Nachteil dieses Verfahrens ist die praktische Art der AusgangsgewebeHomogenisierung. Die Kraft und Geschwindigkeit der Stößel im Homogenisator deutlich zwischen den Betreibern 6 variieren. Dies kann im Experiment zu Experiment Variation sowie Labor zu Labor Variation führen, und führt zu Schwierigkeiten beim Vergleich von Daten zwischen den Experimenten. Dies ist von besonderer Bedeutung in Interventionsstudien, wenn Daten von den Teilnehmern an getrennten Zeitpunkten typischerweise vor und nach der Behandlung und möglicherweise an mehreren Stellen gesammelt. Wir verwenden eine automatisierte Homogenisator für einen einheitlicheren Ansatz, der mehr reproduzierbare Ergebnisse mit begrenzten Mensch-zu-Mensch-Variante ergibt. Die Geschwindigkeit der Herstellung macht diesen Ansatz für den Umgang mit mehreren Proben gleichzeitig. Typischerweise können bis zu drei Versuche an einem einzigen Tag durchgeführt werden. Potentielle Einschränkungen der hier beschriebenen Technik ergeben sich aus der Verwendung von isolierten Organellen und der Verwendung eines plattenbasierten Format. Beispielsweise Picard et al. haben Dämonstrated dass isolierten Mitochondrien besitzen funktionellen Eigenschaften, die sich grundlegend von denen des intakten Mitochondrien in permeabilisierten Muskelfasern unterscheiden. Sie schlugen vor, dass die mitochondriale Isolationstechniken führen zu veränderten bioenergetischen Funktion, wie deutlich erhöht RCR Vergleich zu permeabilisierten Muskelfasern und verstärkte Produktion reaktiver Sauerstoffspezies 13. Im Vergleich zu permeabilisierten Muskelfasern, Isolierung von Mitochondrien ist erfordern längere Vorbereitungszeit. Auch Verlust zellulären Gehalt vermindert physiologische Relevanz, etwas, das in ganzen Zellen und sogar permeabilisiert Fasern zurückgehalten wird. Die Verwendung von Plattenbasis Respirometrie mit den beschriebenen Technik ermöglicht replizieren Läufe pro Probe. Jedoch müssen Mitochondrien zum Boden jeder Vertiefung haften. Diese Konfiguration unterscheidet sich von ihrer gewohnten Umgebung und können funktionelle Eigenschaften zu beeinflussen. Außerdem sollte beachtet werden, dass unter Verwendung dieses Protokolls für mitochondriale Isolierung there können noch Verunreinigungen von endoplasmatischen Retikulum (ER) in der mitochondrialen Präparation sein. Unterschiede in der ER eine Verunreinigung die Bestimmung der mitochondrialen Ertrag und Einfluss Ergebnisse beeinflussen. Abschließend dieser Studie präsentiert Daten, die bestätigt, dass die Mitochondrien aus Gewebe mit diesem Verfahren isoliert sind funktionell aktiv und kann für Studien / Anwendungen, die hochwertige isoliert Mitochondrien aus minimalen Skelettmuskelproben erfordern. Der Vorteil dieser Methode ist, dass: i) ist es möglich, den Mitochondrien von minimalen Mengen an Skelettmuskulatur zu isolieren, ii) das Verfahren ist schnell, iii) mit der Platte auf der Basis-Technologie ist es möglich, mehrere Proben gleichzeitig laufen, und iv) es gibt genug überschüssige Gewebe und isolierten Mitochondrien nach der bioenergetischen Test zur Probenlagerung und andere molekularbiologische Untersuchungen.

Mitochondrien sind die Primärenergieproduktionsstandorte in der Zelle und eine wichtige Rolle bei der Alterung sowie verschiedene altersbedingte Erkrankungen wie Herz-Kreislauf-Krankheit, Alzheimer-Krankheit, Diabetes, Krebs und Fettleibigkeit. Respirometrische Profilierung von isolierten Mitochondrien bietet direkte Analyse der Elektronentransportkette (ETC) Funktion und hat wesentlich zu unserem Verständnis der mitochondrialen Biologie und ihre Rolle in Gesundheit und Krankheit beigetragen. Isolierten Mitochondrien werden verwendet, um verschiedene Aspekte des bioenergetischen dergleichen Substrattransport, ATP-Synthase-Aktivität, Protonenleck usw. Die in diesem Manuskript beschriebenen Methodik wurde optimiert, um respirometrischen Analyse von Mitochondrien aus Skelettmuskelgewebe Biopsien aus humanen Probanden isoliert ermöglichen studieren. Die in dieser Handschrift beschrieben Biopsie-Protokoll wurde von unseren Mitarbeitern für die letzten 12 Jahre genutzt. Unsere Gruppe hat über 700 Verfahren durchgeführt bei Erwachsenen unterschiedlichen Alters,bis zu 90 Jahre alt, und mit verschiedenen chronischen Krankheitszuständen ohne nachteilige Sicherheitsfragen. Ein wichtiger Aspekt dieses Protokolls ist, dass es speziell für die minimale Mengen von Gewebe zu verwenden, wodurch ihre Verwendung in klinischen Studien erleichtert. Verschiedene Protokolle zur Isolierung von Mitochondrien entwickelt. Fernandez-Vizarra et al. 1,2 beschrieben, ein Verfahren zur Isolierung von Mitochondrien aus verschiedenen Rattengeweben sowie kultivierte Zellen. Garcia-Cazarin et al. 3 haben ein Verfahren zur Isolierung von Mitochondrien aus Skelettmuskeln von Ratten und Mäusen berichtet. Verfahren zur Isolierung von Mitochondrien aus Rattenhirn wurde auch von Iglesias-Gonzales et al. 4 Gross berichtet, et al. 5 über ein Verfahren zur Isolierung von Mitochondrien mit der barocycler und / oder der PCT Schredder. Kürzlich Franko et al. 6 über ein Verfahren zur Isolierung von hochangereichertem Mitochondrien mit Anti-TOM22 Magnetischen Kügelchen. Während diese Protokolle liefern hervorragende Ergebnisse sind Gewebe Größenanforderungen hoch im Vergleich zu dem in dieser Handschrift beschriebenen Methode. Zum Beispiel, Gross et al. 5 verwendet 1,5-1,8 g des M. gastrocnemius und etwa 2 g des Nierengewebes. Ebenso Franco et al. 6 verwendet 500 mg Mauslebergewebe. Aus unserer Erfahrung, typische Ausbeuten von perkutanen Nadelbiopsie der Skelettmuskulatur (Vastus lateralis) erwarten reichen von 100 bis 200 mg. Die Fähigkeit, die Funktion der Mitochondrien in 20 bis 50 mg mit der hier beschriebenen Protokoll Muskelgewebe zu bewerten ermöglicht Benutzern, mehrere Assessments pro Biopsie und zur Lagerung von Proben für die spätere Verwendung in anderen molekularbiologische Experimente durchführen. Dies ist ein entscheidendes Merkmal in der klinischen Forschung und anderen Studien, die sorgfältige Verwendung von Proben erfordern. Es sei darauf hingewiesen, dass die zuvor eingefroren Mitochondrien sind nicht gut für die Untersuchung gekoppelt Atmung aufgrund oute werdenr Mitochondrienmembran Beschädigung und Verlust von Cytochrom-C-Aktivität. Unsere Methode wurde angepasst und von der von Chappell und Perry 7 veröffentlichte Methode modifiziert. Mit den in dieser Handschrift beschriebenen Methoden, haben wir vor kurzem berichtet, dass die respirometrischen Profil von Mitochondrien aus menschlichen Vastus lateralis isoliert ist direkt mit Behinderung, gemessen als Gehgeschwindigkeit 8 korreliert.

<table><tbody><tr><td>Ausrüstung</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Homogenisator Bio-Gen PRO200</td><td>BioExpress</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Eppendorf Zentrifuge 5804 R</td><td>Fisher Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Deepwell late Rotor&nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>6 mm University College Hospital Needle</td><td>Cadence</td><td></td><td></td></tr><tr><td>60 cc Spritze</td><td>Fisher Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>96-Well-Plattenleser</td><td>Tecan (Genios-basic)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Seahorse XF 24-3 Analysator</td><td>Seahorse Biosciences, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Protein-Gel-System</td><td>Life Technologies (Invitrogen)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kodak Gel Logic 112</td><td>Carestream Health, Inc</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kodak Kamerabaugruppe</td><td>Carestream Health, Inc</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Verbrauchsmaterialien</td> XF24 V7 Zellkultur-Mikroplatte und XF24 Sensorkartusche <td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>Seahorse Bioscience</td><td>100850-001</td><td></td></tr><tr><td>100867-100</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kaliumhydroxid (KOH)</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>221473</td><td></td></tr><tr><td>Salzsäure (HCl)</td><td>Acros</td><td>12421-0010</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco's Phosphat gepufferte Kochsalzlösung</td><td>Lonza</td><td>17-512F</td><td></td></tr><tr><td>Kaliumchlorid (KCl)</td><td>Fisher Scientific</td><td>P333</td><td></td></tr><tr><td>MOPS</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP308</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP118</td><td></td></tr><tr><td>Magnesiumsulfat (MgSO4)</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>M7506</td><td></td></tr><tr><td>ATP</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>A9187</td><td></td></tr><tr><td>Fettsäurefrei BSA</td><td>Calbiochem</td><td>126575</td><td></td></tr><tr><td>Saccharose</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>S0389</td><td></td></tr><tr><td>Bakterielle Proteinase</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>P-8038</td><td></td></tr><tr><td>D-Mannitol</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>M9546</td><td></td></tr><tr><td>KH2PO4</td><td>Fisher Scientific</td><td>P284</td><td></td></tr><tr><td>Magnesium Chlorid (MgCl2)</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>M9272</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>H3784</td><td></td></tr><tr><td>EGTA</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>E3889</td><td></td></tr><tr><td>BCA Protein Assay Kit</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>PI23227</td><td></td></tr><tr><td>Bernsteinsäure*</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>S3674</td><td></td></tr><tr><td>Brenztraubensäure*</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>P5280</td><td></td></tr><tr><td>Apfelsäure*</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>2288</td><td></td></tr><tr><td>ADP(K+ Salz)*</td><td>Sigma-Aldrich Co</td><td>A5285</td><td></td></tr><tr><td>XF Cell Mito Stresstest-Kit</td><td>Seahorse Biosciences</td><td>101706</td><td></td></tr><tr><td>Tween-20</td><td>Santa Cruz Biotechnology, Inc.&nbsp;</td><td>SC-29113</td><td></td></tr><tr><td>NuPAGE 12% Bis-Tris Gel</td><td>Life Technologies (Invitrogen)</td><td>NP0343BOX</td><td></td></tr><tr><td>Immobilin-Transfermembranen (0,45 μm)</td><td>Millipore</td><td>IPVH20200</td><td></td></tr><tr><td>MOPS SDS Laufpuffer (20X)-500 ml</td><td>Life Technologies (Invitrogen)</td><td>NP0001</td><td></td></tr><tr><td>NuPAGE Transferpuffer (20X)-1 Liter</td><td>Life Technologies (Invitrogen)</td><td>NP0006-1</td><td></td></tr><tr><td>Primäre Antikörper (mAB gegen VDAC1/Porin)</td><td>Abcam</td><td>ab14734</td><td></td></tr><tr><td>Primäre Antikörper (mAB gegen GAPDH)</td><td>Abcam</td><td>ab9484</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Maus-IgG (Ziege), HRP-markiertes</td><td>PerkinElmer</td><td>NEF822E001EA</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Kaninchen-IgG (Ziege), HRP-markiertes</td><td>PerkinElmer</td><td>NEF812E001EA</td><td></td></tr><tr><td>*ADP, Bernsteinsäure, Brenztraubensäure und Apfelsäure sollten nur mit KOH auf pH 7,4 eingestellt werden&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

vorbereitung und respirometrische bewertung der mitochondrien isoliert aus dem skelettmuskelgewebe durch perkutane nadelbiopsie erhalten

Preparation and Respirometric Assessment of Mitochondria Isolated from Skeletal Muscle Tissue Obtained by Percutaneous Needle Biopsy

Respirometrische Profilierung von isolierten Mitochondrien wird allgemein zur Atmungskette Funktion zu untersuchen. Wir beschreiben eine Methode zur Gewinnung von Proben menschlichen Vastus lateralis, Isolierung von Mitochondrien minimale Mengen an Skelettmuskelgewebe und Platte basiert respirometrischen Profilerstellung mit einer extrazellulären Fluss (XF) Analysator. Vergleichs respirometrischer Profile erhalten unter Verwendung von 1,0, 2,5 und 5,0 ug Mitochondrien zeigen, daß 1,0 ug ausreichend ist, um die Atmung zu messen, und daß 5,0 ug liefert konstante Ergebnisse basierend auf dem Vergleich der Standardfehler. Western-Blot-Analyse der isolierten Mitochondrien für mitochondriale Marker COX IV und nicht-mitochondrialen Gewebemarker GAPDH darauf hin, dass es nur begrenzte nicht-mitochondrialen Kontamination mit diesem Protokoll. Die Fähigkeit, mitochondriale respirometry in so wenig wie 20 mg des Muskelgewebes studieren ermöglicht Benutzern individuelle Biopsien mehrerer Endpunkte der Studie wurden in der klinischen NutzungForschungsprojekte.

1 zeigt ein detailliertes Flußdiagramm des gesamten Protokolls. Western-Blot-Profile von COX IV / GAPDH (Figur 2) zeigen die Expression des mitochondrialen Protein, COX IV, und der nicht-mitochondriale Marker GAPDH. Expression sowohl COX IV und GAPDH in der Gesamtmuskel Lysat evident. Nach Mitochondrien werden mit dem in diesem Protokoll beschriebenen Technik isoliert sind COX IV Bands immer noch deutlich während GAPDH abwesend gleichzeitig Belichtung. Längere Einwirkung kann ein schwaches GAPDH Band offenbaren. Diese Flecken zeigen, dass die isolierten Mitochondrien haben minimale nicht-mitochondrialen Kontamination. Darüber hinaus ist COX IV-Expression in isolierten Mitochondrien Einklang zwischen den Proben. Abbildung 3 zeigt typische respirometrischen Profile durch komplexe II (Succinat und Rotenon) angetrieben mit 1,0 ug, 2,5 ug und 5,0 ug Mitochondrien. Wie erwartet, ist die allgemeine OCR w erhöhtith höhere Mengen an Mitochondrien. Die berechnete respiratorische Steuerungsverhältnis (RCR) für diesen Assay ist 7,95, was anzeigt, dass die mitochondriale Zubereitung ist von hoher Qualität. Weiterhin ist Zustand 3u OCR etwas höher als die der Zustand 3, bestätigt mitochondrialen Qualität. Um die Konsistenz der Ergebnisse zu vergleichen, wenn Profiling unterschiedliche Mengen an Mitochondrien, führten wir ANOVA (Varianzanalyse) und berechnet die Summe der Quadrate (SS) als Ist-Werte der Varianz mit 1,0 ug, 2,5 ug und 5,0 ug pro Mitochondrien geladen und (4). SS ist für Zustand 2 Zustand 3 Zustand 3u, Antimycin A und RCR vorgestellt. Für den Zustand 2 und Zustand 3 Messungen, war einer ANOVA statistisch signifikant (p &lt;0,01 bzw. p &lt;0,05). Ebenso war die Einweg-ANOVA statistisch signifikant für Antimycin und RCR (p &lt;0,01 und p &lt;0,0001 auf. War kein signifikanter Unterschied für staatliche 3u zwischen den Gruppen zu sehen. These Ergebnisse zeigen, dass 5,0 &amp; mgr; g der Mitochondrien pro Vertiefung gab die niedrigste SS im Vergleich zu anderen Konzentrationen und ist der optimale Betrag in der XF 24-System mit unserer Bevölkerung der Teilnehmer zu verwenden. Figur 5 dient als eine Führung, um anzuzeigen, wie viel mitochondrialen Protein, bezogen auf das ursprüngliche Muskelprobengröße erwarten. Wie erwartet gibt es eine starke Korrelation zwischen dem Ausmaß der Muskel (mg) verarbeitet und die Gesamt mitochondriale Proteingehalt (mg) der Endprobe. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td colspan="2"> Chappel-Perry-Puffer I (CPI) </td></tr><tr><td> Chemikalie </td><td> Konzentration </td></tr><tr><td> KCl </td><td> 100 mM </td></tr><tr><td> MOPS </td><td> 50 mM </td></tr><tr><td> EDTA </td><td> 1 mM </td></tr><tr><td> MgSO 4 </td><td> 5 mM </td></tr><tr><td> ATP </td><td> 1 mM </td></tr&gt; <tr><td> pH </td><td> 7.4 </td></tr><tr><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="2"> Chappel-Perry-Puffer II (CPII) </td></tr><tr><td> Chemikalie </td><td> Konzentration </td></tr><tr><td> KCl </td><td> 100 mM </td></tr><tr><td> MOPS </td><td> 50 mM </td></tr><tr><td> EDTA </td><td> 1 mM </td></tr><tr><td> MgSO 4 </td><td> 5 mM </td></tr><tr><td> ATP </td><td> 0,2 mM </td></tr><tr><td> Fettsäurefrei BSA </td><td> 0,50% </td></tr><tr><td> pH </td><td> 7.4 </td></tr><tr><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="2"> Mitochondrial Assaylösung (MAS) (2X) </td></tr><tr><td> Chemikalie </td><td> Konzentration </td></tr><tr><td> Saccharose </td><td> 35 mM </td></tr><tr><td> Mannitol </td><td> 110 mM </td></tr><tr><td> KH 2 PO 4 </td><td> 2,5 mM </td></tr><tr><td> MgCl2 </td><td> 2,5 mM </td></tr><tr><td> HEPES </td><td> 1,0 mM </td></tr><tr><td> EGTA </td><td> 0,5 mM </td></tr><tr><td> Fettsäurefrei BSA </td><td> 0,10% </td></tr><tr><td> pH </td><td> 7.4 </td></tr><tr><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="2"> Mitochondriale Assay-Lösung (MAS) mit komplexen II Anfangsbedingungen </td></tr><tr><td> Chemikalie </td><td> Konzentration </td></tr><tr><td> 1X MAS </td><td></td></tr><tr><td> Bernsteinsäure- </td><td> 10 mM </td></tr><tr><td> Rotenon </td><td> 2 &amp; mgr; M </td></tr><tr><td> pH </td><td> 7.4 </td></tr><tr><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="2"> Mitochondriale Assay-Lösung (MAS) mit Komplex I Anfangsbedingungen </td></tr><tr><td> Chemikalie </td><td> Konzentration </td></tr><tr><td> 1X MAS </td><td></td></tr><tr><td> Pyruvat</td><td> 5 mM </td></tr><tr><td> Malate </td><td> 5 mM </td></tr><tr><td> pH </td><td> 7.4 </td></tr><tr><td colspan="2"> * Alle Puffer in entionisiertem Wasser hergestellt werden </td></tr></tbody></table> Tabelle 1 Lösung und Puffer Rezepte. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" fo:keep-together.within-page="always"><tbody><tr><td colspan="2"> Protokoll Schritte </td><td></td></tr><tr><td colspan="3"> StartProtocol </td></tr><tr><td> Befehl </td><td> Zeit (min) </td><td> Port </td></tr><tr><td> Kalibrieren </td><td> 0.00 </td><td></td></tr><tr><td> Warten Sie </td><td> 10,00 </td><td></td></tr><tr><td> Mischen </td><td> 1.00 </td><td></td></tr><tr><td> Warten Sie </td><td> 3.00 </td><td></td></tr><tr><td> Mischen </td><td> 1.00 </td><td></td></tr><tr><td> Warten Sie </td><td> 3.00 </td><td></td></tr><tr><td> Mischen </td><td> 0.50 </td><td></td></tr><tr><td> Maßnahme </td><td> 3.00 </td><td></td></tr><tr><td> Mischen </td><td> 1.00 </td><td></td></tr><tr><td> Maßnahme </td><td> 3.00 </td><td></td></tr><tr><td> Mischen </td><td> 0.50 </td><td></td></tr><tr><td> Injizieren </td><td></td><td> A </td></tr><tr><td> Mischen </td><td> 1.00 </td><td></td></tr><tr><td> Maßnahme </td><td> 6.00 </td><td></td></tr><tr><td> Mischen </td><td> 1.00 </td><td></td></tr><tr><td> Injizieren </td><td></td><td> B </td></tr><tr><td> Mischen </td><td> 1.00 </td><td></td></tr><tr><td> Maßnahme </td><td> 3.00 </td><td></td></tr><tr><td> Mischen </td><td> 1.00 </td><td></td></tr><tr><td> Injizieren </td><td></td><td> C </td></tr><tr><td> Mischen </td><td> 1.00 </td><td></td></tr<html> &gt; <tr><td> Maßnahme </td><td> 3.00 </td><td></td></tr><tr><td> Mischen </td><td> 1.00 </td><td></td></tr><tr><td> Injizieren </td><td></td><td> D </td></tr><tr><td> Mischen </td><td> 1.00 </td><td></td></tr><tr><td> Maßnahme </td><td> 3.00 </td><td></td></tr><tr><td colspan="3"> EndProtocol </td></tr></tbody></table> Tabelle 2. Mix, messen und mischen Zyklus Einstellung für die Respirometer. <img alt="Figur 1" src="/files/ftp_upload/52350/52350fig1highres.jpg" /> Abbildung 1: Flussdiagramm des gesamten Protokoll. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52350/52350fig1large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieses Bild anzuzeigen.</a> /ftp_upload/52350/52350fig2highres.jpg &quot;/&gt; Abbildung 2. Eine repräsentative Western-Blot für ganze Skelettmuskelgewebe sowie isolierten Mitochondrien. Whole Gewebeextrakt sowie isolierte Mitochondrien wurden mit COX IV Antikörper als mitochondrialen Marker und GAPDH-Antikörper für nicht mitochondrialen Kontroll immungeblottet. Kein GAPDH Band wurde in der isolierten Mitochondrien beobachtet, was wenig oder keine Verunreinigungen von nicht-mitochondrialen Quellen. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52350/52350fig2large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieses Bild anzuzeigen.</a> <img alt="Figur 3" src="/files/ftp_upload/52350/52350fig3highres.jpg" /> Abbildung 3. Repräsentative respirometrischen Profil von Mitochondrien aus menschlichen Vastus lateralis isoliert. Drei Konzentrationen von isolierten Mitochondrien, 5,0 ug, 2,5 ug und 1,0 ug wir<html> Re in diesem Assay verwendet. Endkonzentrationen der Verbindungen nach Port-Injektionen waren 2 mM ADP (Anschluss A); 2 uM Oligomycin (Port B); 6 uM FCCP (Port C); und 2 uM Antimycin A (Port D). Berechnete RCR für diesen Lauf war 7.95. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52350/52350fig3large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieses Bild anzuzeigen.</a> <img alt="4" src="/files/ftp_upload/52350/52350fig4highres.jpg" /> Abbildung 4. Summe der Quadrate. Summe der Quadrate für die verschiedenen mitochondrialen Atmung Staaten und RCR unter Verwendung von 5,0 &amp; mgr; g, 2,5 ug und 1,0 ug Mitochondrien. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52350/52350fig4large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieses Bild anzuzeigen.</a> ig5highres.jpg &quot;/&gt; Figur 5. Dies kann als eine Führung verwendet, um die Menge des mitochondrialen Protein, bezogen auf das ursprüngliche Muskel Einwaage Regressionsanalyse erwartenden abzuschätzen:. Der Menge des Muskels (mg) und die gesamten mitochondrialen Proteingehalt (mg). Wie erwartet gibt es eine direkte positive Korrelation zwischen der Menge des Muskels und der Gesamt mitochondrialen Protein erhalten.

Verfahren zur Biopsie des Vastus lateralis, Herstellung von gereinigtem Mitochondrien und respirometrischen Profiling beschrieben. Die Verwendung von kleinen Muskelvolumen macht diese Technik für klinische Forschung.

Vorbereitung und Respirometrische Bewertung der Mitochondrien isoliert aus dem Skelettmuskelgewebe durch perkutane Nadelbiopsie Erhalten

Respirometric profiling of isolated mitochondria is commonly used to investigate electron transport chain function. We describe a method for obtaining ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, die Atmungskontrolle in Mitochondrien zu untersuchen, die aus biopsiertem Skelettmuskelgewebe isoliert wurden. Dies wird erreicht, indem zunächst eine kleine Menge Muskelgewebe mittels perkutaner Nadelbiopsie entnommen wird. Der zweite Schritt besteht darin, Mitochondrien aus dem biopsierten Muskelgewebe durch Homogenisierung zu isolieren.Anschließend werden die isolierten Mitochondrien durch Zentrifugation und Durchlaufenlassen der Probe durch ein zusammengenähtes Mulltuch von nicht mitochondrialen Fraktionen gewaschen und getrennt. Der letzte Schritt besteht darin, die isolierten Mitochondrien einzuplatzieren, um eine respiratorische Analyse mittels extrazellulärer Fluss-Assays durchzuführen, um die Sauerstoffverbrauchsrate sichtbar zu machen. Letztendlich wird der Seahorse-Extrazellulär-Fluss-Analysator verwendet, um die Atmungskontrolle in isolierten Mitochondrien zu untersuchen.Der Hauptvorteil dieser Technik gegenüber bestehenden Methoden liegt darin, dass sie eine minimale Menge an Muskelgewebe von nur 20 Milligramm erfordert und die Variabilität zwischen Experimenten begrenzt. Diese Merkmale machen die Technik für klinische Forschungsanwendungen geeignet. Die Anwendungsmöglichkeiten dieser Technik bestehen in der Diagnose von mitochondrialen Funktionsstörungen bei Patienten. Die visuelle Demonstration dieser Methode ist entscheidend, da die Muskelbiopsie und die Isolierung von Mitochondrien präzise Handgriffe erfordern, die visuell besser vermittelt werden können als allein schriftlich beschrieben. Um die Biopsie lokal durchzuführen, wird 1 % Lidocain verabreicht, wobei darauf geachtet werden muss, den Muskel nicht zu infiltrieren. Anschließend erfolgt eine Wartezeit von 10 Minuten.Um eine ausreichende Betäubung zu ermöglichen, entnehmen Sie die Biopsien aus dem mittleren Muskelbereich zwischen Ansatz und Ursprung und vermeiden dabei subfasziale sowie myotendinöse Regionen. Gehen Sie hierfür zunächst perkutan mit einer Nadel vor und orientieren Sie sich an einem Fasziensprung oder am Widerstand der Faszie als Leitkriterium. Schätzen Sie die Tiefe mit der Anästhesienadel ab, tasten Sie diese dann mit der schmalen Skalpellklinge ab und führen Sie einen vier bis fünf Millimeter langen Schnitt durch die Faszie. Führen Sie die Nadel durch den Einschnitt, bis sie in den Muskel eingeführt ist. Entnehmen Sie mehrere Proben, wobei das Fenster in verschiedene Richtungen gedreht wird. Wenden Sie kontinuierlichen Unterdruck mit einer 60-Kubikzentimeter-Spritze an, während Sie die Muskelproben zwei- bis viermal in verschiedene Richtungen vor- und zurückbewegen, um sie in die perkutane Nadel aufzunehmen.Beenden Sie das Absaugen und entfernen Sie die Nadel. Lassen Sie einen Assistenten fünf Minuten lang festen Druck auf die Einstichstelle ausüben. Um die Blutstillung zu gewährleisten, trennen Sie die Nadel vom Absaugrohr und entnehmen Sie die Muskelproben vorsichtig durch das Fenster und aus dem Zylinder.Führen Sie einen zweiten Durchgang durch, falls mehr Muskelgewebe benötigt wird, indem Sie dieses Verfahren wiederholen. Entfernen Sie sichtbare Blutgerinnsel aus der Muskelprobe mit einer Pinzette. Wiegen Sie die Probe anschließend und legen Sie sie unverzüglich in ein Gefäß mit Eis. Kaltes, mit Phosphat gepuffertes Kochsalzlösung (ECCOs) oder DPBS. Entfernen Sie sichtbares Bindegewebe mit einer scharfen Schere und Pinzette gründlich. Waschen Sie die Proben drei- bis viermal mit eiskaltem DPBS-Puffer.Um das Blut zu entfernen, halten Sie die Proben auf eiskaltem DPBS und verarbeiten Sie sie so schnell wie möglich. Innerhalb von 45 Minuten nach der Biopsie sollten Sie vorsichtig Sehnen oder Fettgewebe aus der Muskelprobe entfernen. Entfernen Sie eine kleine Menge des überschüssigen Gewebes zur Lagerung bei minus 80 Grad Celsius.Dies kann für andere Experimente wie Western Blots verwendet werden. Zerkleinern Sie das Muskelgewebe sofort in feine Stücke. Suspendieren Sie es unter Verwendung einer sterilen Schere in 500 Mikrolitern bis einem Milliliter eines Sistin-Protein-ACE-Hemmers, wie z. B. Nagars, das in CP1-Puffer in einer Konzentration von 0,2 Milligramm pro Gramm Gewebe gelöst ist.Zerkleinern Sie die Probe, bis sie gut suspendiert erscheint. Anschließend erfolgt eine fünfminütige Inkubation bei Raumtemperatur, bevor die Probe auf Eis gegeben wird, wobei sichergestellt werden muss, dass der Homogenisator gründlich gespült wird. Zuvor. Homogenisieren Sie das mit Nagars behandelte zerkleinerte Gewebe.Unter Verwendung eines automatisierten Homogenisators. Halten Sie die Probe während des gesamten Vorgangs auf Eis. Homogenisieren Sie jede Gewebeprobe viermal, jeweils mit einem Impuls von zwei Sekunden.Platzieren Sie die Probe unter Verwendung des automatischen Homogenisators bei einer Drehzahl von 10.000 U/min zurück auf Eis. Spülen Sie die Sonde zwischen den Gewebeproben mit 70 %igem Ethanol und anschließend mit destilliertem Wasser. Waschen Sie das homogenisierte Gewebe nun mit einem gleichen Volumen an Chapel Perry One- oder CP-One-Puffer.Anschließend das Gewebe mit der doppelten Menge CP-two-Puffer waschen. Den Gegengewichtsbehälter herstellen, indem Wasser in einem weiteren kegelförmigen Reagenzglas auf das gleiche Volumen aufgefüllt wird. Den Inhalt in einem Zentrifugenröhrchen sammeln und bei 600 × g und 4 °C zehn Minuten lang zentrifugieren. Den Molverfilter vorbenetzen, damit alle Partikel hindurchgehen und nicht im Tuch hängen bleiben.Leiten Sie den Überstand durch ein gefaltetes Mulltuch, sammeln Sie das Filtrat und verwerfen Sie das Pellet, wodurch der Großteil der nicht mitochondrialen Fraktionen entfernt wird. Anschließend ultrazentrifugieren Sie den Überstand bei 10.000 ×g und 4 °C für 10 Minuten. Suspendieren Sie das Pellet in vier Milliliter CP2-Puffer, bevor Sie es ein zweites Mal auf die gleiche Weise zentrifugieren.Entfernen Sie den Überstand und resuspendieren Sie das Pellet in zwei Millilitern CP1-Puffer. An diesem Punkt geben Sie eine kleine Aliquot aus dieser Suspension in ein separates Reagenzglas, das für die Proteinbestimmung verwendet wird. Resuspendieren Sie die verbleibende Probe in CP1-Puffer und zentrifugieren Sie.Wie zuvor zu beachten ist, sollte die Proteinplatte bereits während der früheren Zentrifugationsschritte mit den Standards vorbereitet werden. Schließlich das endgültige Pellet in einer minimalen Menge an mitochondrialer Assay-Lösung oder Masse resuspendieren. XF-Assays durchführen, um die Sauerstoffverbrauchsrate oder OCR in Pikomol Sauerstoff pro Minute oder die absoluten Sauerstoff- und pH-Werte darzustellen.In der Datenausgabe. Geben Sie eine 10×-Konzentration der Verbindungen in einer X-Masse zu den Öffnungen A bis D des plattenbasierten Respirometers hinzu, um die im Textprotokoll angegebene Endkonzentration zu erreichen. Bereiten Sie ein ausreichendes Volumen der Verbindungen für die erforderliche Anzahl an Vertiefungen vor.Verwenden Sie die zuvor gemessenen Proteinberechnungen, um die Konzentrationen der hinzuzufügenden Mitochondrien zu bestimmen. Ermitteln Sie die optimale Menge an Mitochondrien durch Titration von ein Mikrogramm, 2,5 Mikrogramm und fünf Mikrogramm Mitochondrien pro Mulde. Verwenden Sie die 24-Mulden-Platte, um die Variabilität zwischen den Mulden zu minimieren.Zunächst verdünnen Sie 10 x Mitochondrien in kaltem, ein-fachem Mass plus Substrat. Anschließend geben Sie 50 Mikroliter dieser Suspension in jedes Loch. Lassen Sie dabei vier Löcher, die nur 50 Mikroliter Mass enthalten, für Hintergrundmessungen frei.Platzieren Sie die vorab eingeweichte Kalibrierplatte zusammen mit der oberen Kartusche von zuvor im Respirometer, um die Gerätekalibrierung durchzuführen. Zum Vorbereiten des Testplattenlaufs zentrifugieren Sie die Platte bei 2000 ×g für 20 Minuten bei vier Grad Celsius. Nach der Zentrifugation.Geben Sie vorsichtig 450 Mikroliter einer x-fachen Masse, ergänzt mit Succinat und Ratten bekannt, zu jeder Probe hinzu. Überprüfen Sie die Mitochondrien unter dem Mikroskop, um eine homogene Anheftung an die Vertiefung vor der Übertragung der Platte in den XF-Analysator sicherzustellen. Nacheinander messen Sie die mitochondriale Atmung in Echtzeit mithilfe des Respirometers, indem Sie es gemäß den im Textprotokoll angegebenen Einstellungen programmieren. Die hier gezeigten Profile sind typische respirometrische Profile, die durch Komplex zwei angetrieben werden, unter Verwendung von einem Mikrogramm, 2,5 Mikrogramm und fünf Mikrogramm Mitochondrien, wie erwartet.Insgesamt ist die OCR bei höheren Mengen an Mitochondrien erhöht. Das berechnete respiratorische Kontrollverhältnis oder RCR für diesen Assay beträgt 7,95 und zeigt an, dass die mitochondriale Präparation von hoher Qualität ist, um die Konsistenz der Ergebnisse beim Profilieren verschiedener Mitochondrienmengen zu vergleichen. Die Analyse von Varianten oder Inova wurde durchgeführt und die Quadratsumme wurde berechnet. Die Quadratsumme oder SS wird für Zustand zwei, Zustand drei, Zustand drei, entkoppeltes Antimycin A sowie für RCR bei den Messungen von Zustand zwei und Zustand drei einseitig dargestellt.Innova war statistisch signifikant, ebenso wie ANTIMYCIN und RCR. Zwischen den Gruppen wurde kein signifikanter Unterschied im Zustand drei entkoppelt beobachtet. Diese Ergebnisse zeigen, dass fünf Mikrogramm Mitochondrien pro Mulde im Vergleich zu anderen Konzentrationen die niedrigste SS ergab.Diese Darstellung dient als Leitfaden, um anzuzeigen, wie viel mitochondriales Protein basierend auf der ursprünglichen Muskelprobenmenge erwartet werden kann. Wie erwartet besteht eine starke Korrelation zwischen der Menge des aufgearbeiteten Muskelgewebes und dem gesamten Gehalt an mitochondrialem Protein der Endprobe. Wenn die Technik einmal beherrscht ist, kann sie bei korrekter Durchführung in weniger als drei Stunden abgeschlossen werden.Nach der Muskelbiopsie ist es wichtig sicherzustellen, dass der Patient in den nächsten drei Tagen kein Aspirin, Ibuprofen oder andere rezeptfreie nichtsteroidale Medikamente einnimmt, um eine gute Heilung der biopsierten Gewebe zu gewährleisten. Als Nächstes sollten wir sicherstellen, dass er oder sie in den nächsten anderthalb Tagen keine anstrengende körperliche Aktivität ausführt, also nichts, was Erschütterungen verursacht, wie Basketball oder Trampolinspringen. Normale alltägliche Aktivitäten sind jedoch erlaubt.Wir bitten sie außerdem, die Stelle 24 Stunden lang trocken zu halten, wobei der erste Kontakt mit Wasser idealerweise unter der Dusche erfolgen soll, damit eventuell auf der Haut verbliebene Bakterien, die wir nicht entfernt haben, nicht in den Schnitt gelangen. Nach Anschauung dieses Videos sollten Sie ein besseres Verständnis dafür haben, wie man eine Biopsie des seitlichen Skelettmuskels durchführt, Mitochondrien isoliert und die Atmungskontrolle misst.

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Vorbereitung und Respirometrische Bewertung der Mitochondrien isoliert aus dem Skelettmuskelgewebe durch perkutane Nadelbiopsie Erhalten

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