Name: Fase Diagrama Caracterização utilizando esferas magnéticas como veículos líquidos (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-09-04T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 37 s
Description: Aprenda a caracterizar diagramas de fase em sistemas líquidos complexos utilizando esferas magnéticas como veículos em dispositivos lab-in-tube. Este método simplificado facilita o estudo de mudanças de fase.

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Os autores reconhecem muitas discussões úteis com M. Caggioni e o apoio da Proctor and Gamble na forma de um estágio para a NAB.

1. Preparação de um tempo de uso de materiais no Device <ol><li> Preparação de tubo <ol><li> Corte a tubulação em 15 cm segmentos. Tubing tem 1,6 mm de diâmetro interno e 3.2 mm de diâmetro externo. </li><li> Segmentos de tubo pendurar verticalmente usando fita. Coloque uma toalha de papel debaixo de tubos para recolher a solução de fluoropolímero excesso. </li><li> Injectar 100 ul de solução de fluoropolímero na abertura superior de cada um dos segmentos de tubo utilizando uma seringa, de tal forma que ela irá entrar em contacto com a circunferência inteira na parede interior. </li><li> Permitir segmentos de tubo para pendurar no lugar durante 1 h para remover o excesso de quantidade de solução de fluoropolímero. </li><li> Limpe qualquer solução fluoropolymer do lado inferior do tubo que não escorrer para fora. Remova a tubulação a partir da posição de suspensão e dispor de toalhas de papel. </li><li> Colocar o tubo de segmentos em forno a 100 ° C durante 1 h recozer a camada de revestimento de fluoropolímero. </li><li> Remova segmentos de tubo do forno. Use uma pinça, como seg tubomentos estará quente. </li></ol></li><li> Preparação de solução diluída de esférulas magnéticas <ol><li> Calcular a concentração do grânulo magnético necessário para atingir o volume transição desejado, conforme determinado pela relação entre carry-over volume e massa MB mostrado na Figura 2. Nota: A solução original MB tem 1 g de MBs em 50 ml de solução. Considerando-se um volume de câmara de ensaio de 20 ml, uma solução diluída de MB original com água destilada a uma razão de 6: 4 (solução MB: água) para se obter um volume de transição de ~ 0,4 ul. Ajustar razão de diluição quando diferente volume de carry-over é desejado. </li><li> Colocar num frasco de 20 ml da amostra numa micro-balança. Zero o equilíbrio. </li><li> Agitar o recipiente de solução esférulas magnéticas, em seguida, retirar 0,6 ml usando uma micro-pipeta. </li><li> Dispensar solução pipetada para o frasco de amostras em equilíbrio. </li><li> Dispense 0,4 ml de água destilada no frasco da amostra. </li></ol></li><li> Corante fluorescente lpreparação iquid <ol><li> Dissolver 2 em peso.% De corante em água desionizada a solução com vortex durante 1 min. </li></ol></li></ol> 2. Preparação da instalação experimental para experimentos de fluorescência <ol><li> Preparação do dispositivo de tubagem. <ol><li> Inserir um conector luer fêmea para uma extremidade do tubo. </li><li> Colocar o tubo para uma seringa Luer-lock, que tem um volume de 3 ml e 0,1 ml da graduação. </li><li> Coloque a seringa na bomba de seringa e definir o avanço com 2 ml / h. </li><li> Para a inserção precisa de líquidos para o tubo, usar a bomba de seringa para retirar a solução contendo as esferas magnéticas e corante fluorescente. </li><li> Insira 20 ml de solução de grânulo magnético no tubo usando retirada bomba de seringa. Este segmento de líquido é referido como câmara de ensaio (volume da câmara de ensaio podem variar de acordo com a experiência). Vortex o recipiente com solução grânulo magnético durante 1 minuto e em seguida, agitar manualmente durante<html> o ciclo de retirada de modo a formar MB dispersões uniformes. </li><li> Depois de câmara de teste de inserção líquido é concluído, retire 6 l de ar para dentro do tubo. Este volume de ar irá mais tarde formar uma válvula entre os dois segmentos de líquido. </li><li> Após a inserção do entreferro está concluída, começam retirada 180 ul de líquido com corante fluorescente. Este segmento de líquido é referido como o reservatório. Volume do reservatório pode variar dependendo da experiência. Volume de reservatório maior é benéfica para minimizar a mudança de concentração de corante. </li><li> Coloque um segundo conector luer fêmea na outra extremidade do tubo. </li><li> Remover o dispositivo de tubo da seringa. </li><li> Coloque tampas luer-lock em ambas as extremidades do dispositivo. </li></ol></li><li> Optics configuração para experimentos de fluorescência <ol><li> Ligue todos os componentes ligados ao microscópio invertido. </li><li> Ligue o computador e abra o software de imagem de microscópio. </li></ol></li></ol>&quot;&gt; Procedimento 3. Experimental de Experimentação de fluorescência <ol><li> Tome medição da intensidade de fluorescência inicial da câmara de ensaio e reservatório usando o microscópio invertido. Ao analisar a fluorescência da amostra, assegurar que o foco está na posição central (em ambas as direcções x e y) do segmento de líquido no interior do tubo. Medições de discos em planilha de dados. </li><li> Coloque dispositivo sobre a parte superior do cubo de modo a que o íman esferas magnéticas todos os segregar para uma área na câmara de ensaio. Transferir as contas para o reservatório, movendo o dispositivo por cima do íman (~ 10 seg). O 1 polegada de ímã de neodímio cubo é grau N48 com uma força de tração de 45,6 kg. </li><li> Uma vez aglomerado esférulas magnéticas é transferida através do intervalo de ar e para dentro do reservatório, agitar as esferas magnéticas através da colocação do dispositivo sobre a parte superior do magneto e rodando para libertar o líquido a ser preso dentro do agrupamento. Continuar a agitação dos grânulos magnéticos até homogeneização do reservatório tenha sidocompletou (~ 30-45 seg). </li><li> Coloque dispositivo por cima do ímã de tal forma que as esferas magnéticas no reservatório todos os segregar a uma área. Transferir o cluster de esférulas magnéticas de volta para a câmara de ensaio. </li><li> Uma vez que o cluster atinge a câmara de ensaio, agitar as esferas magnéticas, colocando o dispositivo por cima do ímã e girando para liberar o líquido fluorescente preso dentro. Continuar a agitação dos grânulos magnéticos até homogeneização da câmara de ensaio tiver sido completado (~ 30-45 seg). </li><li> Aqui intensidade de fluorescência de tanto a câmara de ensaio e o reservatório utilizando o microscópio invertido. Medições de discos em planilha de dados. </li><li> Os passos são repetidos até 3,2-3,6 ambos os segmentos de líquido convergem para intensidades de fluorescência semelhantes (~ 100 ciclos). </li></ol> 4. Análise Numérica de Dados fluorescente <ol><li> Com os dados de intensidade fluorescentes armazenadas em uma planilha, execute análise numérica usando MATLAB. </li><li> Derive equações para calcular um valor teórico de intensidade de fluorescência em ambos o reservatório e a câmara de teste. Incorporar as seguintes equações em um arquivo de script MATLAB: onde I é a intensidade de fluorescência (UA), V é o volume (mL), n é o número de transferências, R é o reservatório, T é a câmara de ensaio, e C é carry-over. </li><li> Usando MATLAB, gerar gráficos e analisar para determinar o volume carry-over para todos os experimentos. Use esses dados para produzir a Figura 2. </li></ol> 5. Preparação da instalação experimental para Experimentos surfactante <ol><li> Preparação do dispositivo de tubagem. <ol><li> Inserir uma fêmea de bloqueio Luer sobre uma extremidade do tubo. </li><li> Colocar o tubo para uma seringa Luer-lock. </li><li> Coloque a seringa na bomba de seringa e definir o avanço com 2 ml / h. </li><li> Para a inserção precisa de líquidos para o tubo, usar a bomba de seringa para retirar a solução contendo as esferas magnéticas e surfactant. </li><li> Insira solução talão 20 l magnético no tubo usando retirada bomba de seringa. Este segmento de líquido é referido como câmara de ensaio (volume da câmara de ensaio podem variar de acordo com a experiência). Agita-se o recipiente com solução de esférulas magnéticas com a mão durante o ciclo de retirada de modo a formar MB dispersões uniformes. </li><li> Depois de câmara de teste de inserção líquido é concluído, retire 6 l de ar para dentro do tubo. Este volume de ar será posteriormente referida como o intervalo de ar. </li><li> Após a inserção intervalo de ar é concluído, começará a retirada de 180 l de surfactante puro C12E5. Este será posteriormente referida como o reservatório. </li></ol></li><li> Optics configuração para experimentos de surfactante. <ol><li> Mova bomba de seringa com dispositivo de tubo de modo que a câmara de teste com esferas magnéticas está em foco com o microscópio estéreo. </li><li> Coloque uma folha de filme polarizador no topo de uma fonte de luz LED. Deslize a fonte de luz LED por baixo do tubo ligado aa bomba de seringa. </li><li> Anexar um outro filme polarizador para a lente do microscópio estéreo usando fita. Certifique-se de que os dois filmes polarizadores têm um grau 90 desfasados ​​um do outro. </li><li> Montar um CCD (Charge Coupled Device) câmera ao microscópio estéreo. Ligue a câmera para o computador e abrir o software de imagem. </li></ol></li></ol> 6. Procedimento Experimental para Experimentos surfactante <ol><li> Coloque o íman cubo ao lado da câmara de ensaio, enquanto que o íman está montado sobre um suporte. </li><li> Uma vez que as esferas magnéticas formar um cluster, começar a bombear líquidos no tubo de alimentação a uma taxa de 2 ml / h de tal modo que o conjunto magnético do grânulo é movido a partir da câmara de ensaio, através da abertura de ar, e para a câmara de reservatório de surfactante. </li><li> Uma vez que o aglomerado esférulas magnéticas atinge o ponto médio da câmara de reservatório, parar o bombeamento da bomba de seringa. </li><li> Mover o íman cubo de distância a partir do tubo, permitindo a contas magnéticas para separar umND reduzir o tempo de difusão do líquido retido no cluster esférulas magnéticas. </li><li> Assista a tela do computador para observar o H 2 O / ciclo de mistura C12E5 por diferentes fases. </li><li> Uma vez que a difusão e a mudança de fase do líquido é completado, colocar o íman de volta ao seu destino, por ex o reservatório de modo que as contas magnéticas para formar um aglomerado. </li><li> Usando a bomba da seringa, retirar os líquidos tais que o conjunto magnético do grânulo é transferido do reservatório de surfactante, através do entreferro, e de volta para a H2O câmara de ensaio. </li><li> Uma vez que o aglomerado esférulas magnéticas atinge o ponto médio da câmara de ensaio, parar o bombeamento da bomba de seringa. </li><li> Mova o ímã cubo longe do tubo. Isto irá permitir que as esferas magnéticas para separar e vai ajudar a reduzir o tempo de difusão do líquido retido no cluster esférulas magnéticas. </li><li> Assista a tela do computador para observar o H 2 O / ciclo de mistura C12E5 por diferentes fases. </li&gt; <li> Uma vez que a difusão e a mudança de fase do líquido é completado, colocar o íman de volta ao seu destino pela primeira câmara de ensaio de modo que as contas magnéticas para formar um aglomerado. </li><li> Repita os passos 6,2-6,11 até que a câmara de teste exibe uma mudança de fase. </li></ol>

<ol><li>Gijs, M. A., Lacharme, F., Lehmann, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+applications+of+magnetic+particles+for+biological+analysis+and+catalysis%5BTitle%5D)+AND+%22Chemical+review%22%5BJournal%5D)">Microfluidic applications of magnetic particles for biological analysis and catalysis.</a> Chemical review. 110, 1518-1563 (2009).</li>
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</ol>

Os autores não têm interesses financeiros concorrentes.

Em técnicas mais comuns para a investigação diagrama de fase, múltiplas amostras com diferentes composições e proporções precisa de ser preparado e ter a atingir o equilíbrio termodinâmico, que provoca um processo demorado e uma quantidade significativa de material. Alguns desafios podem ser resolvidos por DIT método (transporte interfacial difusora) usando capilar plano e método de análise de infravermelho, mas nenhum deles pode resolver todos os desafios com investimento de baixo custo. A ...

As esferas magnéticas (MB) é da ordem de 1 micrómetro de diâmetro foram usadas com bastante frequência em 1,2 aplicações de microfluidos-base, em particular para dispositivos biomédicos. Nestes dispositivos, MBs têm oferecido capacidades, tais como células e separação de ácido nucleico, agentes de contraste, e a entrega de drogas, para citar alguns. A combinação de (campo magnético) de controle externo e microfluídica baseada em gotículas permitiu 3 controle de imunoensaios utilizando pequenos volumes (&lt;100 nl). MBs também têm demonstrado promessa quando utilizado para o tratamento líquido 4. Esta abordagem utiliza os MBs para transportar biomoléculas entre segmentos de líquido dentro de um tubo separado por uma válvula de ar. Este método não é tão poderoso como outros dispositivos lab-on-chip mais complexas visto no passado, mas é muito mais simples e não oferece a capacidade de lidar com volumes microlitro porte de líquido. Uma abordagem semelhante tem sido relatado recentemente 5 por grupo de Haselton e aplicado a biomédicaensaios. Um dos aspectos mais importantes do presente dispositivo é a separação do segmento de líquido oferecido pela válvula de ar controlada por tensão superficial. Volumes de microlitros de líquido unidas a MBs são transportados através deste espaço de ar entre os segmentos de líquidos usando um campo magnético aplicado externamente. MBs de micropartículas (~ 0,4-7 um em diâmetro com uma média de 1,9 | iM), sob o efeito do campo magnético externo criar um conjunto de micro-poroso que retém o líquido dentro. A força deste aprisionamento líquido é suficiente para suportar as forças de tensão da superfície quando se transportam os MBs de um reservatório para o próximo. Tipicamente, este efeito não é desejável, como a maioria das abordagens somente a moléculas de transporte específicas (tais como biomarcadores) contidos nos líquidos 6. No entanto, como pode ser visto no nosso trabalho, este efeito pode ser utilizado para tornar um aspecto positivo do dispositivo. Temos utilizado este &quot;laboratório-em-tubo&#39;Abordagem, mostrado esquematicamente na Figura 1, para a análise de diagramas de fases em sistemas de materiais de binários. O surfactante C12E5 foi escolhido como o principal foco de caracterização, uma vez que é amplamente usado em aplicações industriais tais como produtos farmacêuticos, produtos alimentares, cosméticos, etc. Em particular, a H2O / C12E5 sistema binário foi investigada porque fornece uma rica conjunto de fases para explorar. Temos focado em um aspecto específico desta mistura química, a saber, as transições para fases líquidas cristalinas em determinadas concentrações 7-9. Esta transição é facilmente observado em nosso dispositivo, incorporando polarizadores nos estudos de microscopia óptica, a fim de destacar as fronteiras de fase. Ser capaz de mapear diagramas de fase é uma área muito importante de estudo, a fim de compreender a cinética envolvidos com a transição de fase 10. A capacidade de determinar com precisão a interacção de tensioactivos com um solventesnd outros componentes é crucial, devido à sua complexidade e muitas fases distintas 11. Muitas outras técnicas têm sido anteriormente utilizados para caracterizar mudança de fase. A abordagem convencional envolve a criação de muitas amostras, cada uma consistindo de diferentes concentrações e permitindo-lhes a equilibrar, o que requer tempos de processamento longos e elevada quantidade de volumes de amostra. Em seguida, as amostras são tipicamente analisadas por métodos óticos, como os transportes interfacial difusora (DIT), que oferece alta resolução de tais composições de surfactante 12,13. Semelhante ao método nós utilizamos, o método DIT usa luz polarizada para a imagem de fase fronteiras distintas.

<table><tbody><tr><td>AccuBead</td><td>Bioneer Inc.</td><td>TS-1010-1</td><td>Grânulos magnéticos</td></tr><tr><td>C12E5 Surfactante</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>76437</td><td></td></tr><tr><td>Thermo Scientific Nalgene 890</td><td>Fisher Scientific</td><td>14176178</td><td></td></tr><tr><td>Cubo Ímã</td><td>Ímãs Apex</td><td>M1CU</td><td></td></tr><tr><td>Filme Polarizador</td><td>Edmund Optics</td><td>38-493</td><td></td></tr><tr><td>Teflon AF</td><td>Dupont</td><td>400s1-100-1</td><td>Solução de fluoropolímero</td></tr><tr><td>Corante Vermelho</td><td>Keyacid Keystone</td><td>601-001-49</td><td>Corante fluorescente</td></tr><tr><td>Luer-Lock</td><td>Cole-Parmer</td><td>T-45502-12</td><td>Fêmea</td></tr><tr><td>Luer-Lock</td><td>Cole-Parmer</td><td>T-45502-56</td><td>Seringa</td></tr><tr><td>Masculina</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-823-435</td><td>3 ml</td></tr><tr><td>Bomba de Seringa</td><td>Stoelting</td><td>53130</td><td></td></tr><tr><td>Microscópio Estéreo</td><td>Nikon</td>Microscópio invertido <td>SMZ-2T</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Nikon</td><td>Eclipse Ti-U</td><td>O cubo filtrante usado tinha uma faixa de comprimento de onda de excitação de 540-580 nm e um espelho dicróico de 585 nm, permitindo fotoemissão variando de 593-668 nm.</td></tr><tr><td>Balance</td><td>Denver Instruments</td><td>PI-225D</td><td></td></tr><tr><td>Câmera montada em microscópio</td><td>Motic</td><td>5000</td><td></td></tr></tbody></table>

fase diagrama caracterização utilizando esferas magnéticas como veículos líquidos

Phase Diagram Characterization Using Magnetic Beads as Liquid Carriers

Esférulas magnéticas com ~ 1,9 um de diâmetro médio foram usadas para o transporte de volumes de microlitros de líquidos entre os segmentos de líquidos contíguos com um tubo com a finalidade de investigar a mudança de fase dos segmentos de líquido. As pérolas magnéticas foram controlados externamente utilizando um magnete, permitindo que as esferas se colmatar a válvula de ar entre os segmentos de líquidos adjacentes. Um revestimento hidrofóbico foi aplicado à superfície interna do tubo para melhorar a separação entre dois segmentos de líquido. O campo magnético aplicado formado um conjunto agregado de esferas magnéticas, a captura de uma certa quantidade de líquido no interior do conjunto que é referido como o volume de transferência. Um corante fluorescente foi adicionado a um segmento de líquido, seguido por uma série de transferências de líquidos, que, em seguida, a intensidade de fluorescência alteradas no segmento de líquido vizinhos. Com base na análise numérica da mudança medida da intensidade de fluorescência, o volume de reporte por massa de esferas magnéticas foi encontradoser ~ 2 a 3 ul / mg. Esta pequena quantidade de líquido permitiu a utilização de segmentos de líquido relativamente pequenas de algumas centenas de microlitros, aumentando a viabilidade do dispositivo para uma abordagem laboratório-em-tubo. Esta técnica de aplicação de pequena variação da composição num volume líquido foi aplicado para analisar o diagrama de fase binário entre a água e o agente tensioactivo C12E5 (pentaetileno glicol éter monododecil), levando a mais rápida análise de amostras com volumes menores do que os métodos convencionais.

Utilizando a abordagem de laboratório-em-tubo para o transporte de quantidades ul-volume de líquido com esferas magnéticas, juntamente com MATLAB para análise numérica, os volumes de reporte médios líquidos, como uma função de massa de esférulas magnéticas, foram encontrados (Figura 2). Massa maior de esferas magnéticas proporciona maior volume de carry-over na taxa de 2-3 ul / mg. A configuração experimental (Figura 1) foi usado para observar a mudança de fase no H2O / siste...

Aqui, apresentamos um protocolo para investigar diagramas de fase multicomponentes usando esferas magnéticas controladas externamente como transportadores de líquidos em uma abordagem lab-in-tube. Essa abordagem pode ajudar em aplicações que buscam coletar mais informações sobre a mudança de fase em sistemas líquidos complexos.

Fase Diagrama Caracterização utilizando esferas magnéticas como veículos líquidos

Magnetic beads with ~1.9 &#181;m average diameter were used to transport microliter volumes of liquids between contiguous liquid segments with a tube for ...

O objetivo geral do experimento a seguir é analisar o volume de arraste entre segmentos líquidos adjacentes em um dispositivo de laboratório com tubos utilizando esferas magnéticas. Isso é alcançado pela fabricação do dispositivo com tubos hidrofóbicos, montado em uma bomba de seringa de modo a conter múltiplos segmentos líquidos separados por uma válvula de ar, e incorporando tanto esferas magnéticas quanto um corante fluorescente a um dos líquidos. Como segundo passo, a intensidade fluorescente dos segmentos líquidos adjacentes é medida utilizando um microscópio após cada transferência das esferas magnéticas realizada com um ímã externo.A seguir, uma análise numérica é realizada nessas medidas de intensidade fluorescente para calcular o volume de arraste das microesferas magnéticas. Os resultados mostram que a análise da mudança de fase em um sistema multicomponente composto por dois líquidos é viável, com base na capacidade de utilizar microesferas magnéticas como método para transferir volumes líquidos na escala de microlitros entre reservatórios adjacentes. Assim, como espero que você veja hoje, estamos trabalhando com uma técnica muito empolgante e simples, que envolve o uso de microesferas magnéticas para transferir fluidos dentro de um tubo simples, em vez de circuitos microfluídicos convencionais mais complexos.E nós, nós a aplicamos inicialmente à investigação da separação de faces entre fluidos admissíveis, e agora estamos expandindo isso para outras aplicações, incluindo análise diagnóstica de sangue integral com separação de proteínas das hemácias, análise de urina, imunoensaios e assim por diante. A principal vantagem dessa técnica em comparação com outros métodos existentes, como o uso de canais microfluídicos, é sua simplicidade e fabricação de baixo custo. Oferece alta variabilidade de uso entre diferentes tipos de experimentos e apresenta resultados consistentes.Embora este método possa fornecer informações sobre aplicações que exigem o deslocamento de volumes mínimos e máximos, ele também pode ser aplicado a outros sistemas, como separação de sangue, direcionamento de fármacos e agentes de contraste. Para preparar o tubo, corte primeiro o tubo em segmentos de 15 centímetros, pendure os segmentos verticalmente usando fita adesiva, colocando uma toalha de papel sob os tubos para coletar a solução excedente de polímero fluoretado. Injete 100 microlitros da solução de polímero fluoretado na abertura superior de cada segmento de tubo usando uma pipeta, de modo que entre em contato com toda a circunferência da parede interna.Deixe os segmentos de tubo suspensos por uma hora para remover qualquer excesso da solução de polímero fluoro. Em seguida, coloque os segmentos de tubo em uma estufa a 100 graus Celsius por uma hora para curar a camada de revestimento de polímero fluoro. A seguir, prepare a solução diluída de microesferas magnéticas colocando um frasco de amostra de 20 mililitros sobre uma microbalança e zerando a balança.Agite o recipiente da solução de microesferas magnéticas e, em seguida, retire 0,6 mililitros usando uma micropipeta. Adicione a solução pipetada ao frasco da amostra na balança e adicione 0,4 mililitros de água destilada ao frasco da amostra. Além disso, prepare o corante fluorescente dissolvendo 0,02 por cento em peso do corante em água desionizada e vortexe a solução por um minuto.Para preparar o dispositivo de tubo, insira um conector fêmea de trava rápida em uma das extremidades do tubo. Coloque o tubo em uma seringa com trava rápida com volume de três mililitros e graduação de 0,1 mililitro. Coloque a seringa na bomba de infusão e ajuste a taxa de infusão em dois mililitros por hora.Vortexe o recipiente com uma solução de microesferas magnéticas antes de inserir 20 microlitros no tubo utilizando a retirada por bomba de seringa. Após a conclusão da inserção de líquido na câmara de teste, retire seis microlitros de ar para dentro do tubo. Esse volume de ar formará posteriormente uma válvula entre os dois segmentos líquidos.Após a inserção do espaço de ar ser concluída, inicie a retirada de 180 microlitros do líquido com corante fluorescente. Coloque um segundo conector bloqueador fêmea na outra extremidade do tubo e remova o dispositivo do tubo da seringa. Em seguida, coloque tampas bloqueadoras em ambas as extremidades do dispositivo.Realize a medição inicial da intensidade de fluorescência da câmara de teste e do reservatório utilizando o microscópio invertido. Posicione o dispositivo sobre a parte superior do ímã cúbico de forma que as microesferas magnéticas se separem todas para uma área na câmara de teste. Transfira as microesferas para o reservatório movendo o dispositivo sobre a parte superior do ímã.Uma vez que o aglomerado de microesferas magnéticas seja transferido através da lacuna de ar e para dentro do reservatório, agite as microesferas magnéticas colocando o dispositivo sobre a parte superior do ímã e girando para liberar o líquido aprisionado dentro do aglomerado até que a homogeneização do reservatório seja concluída. Em seguida, coloque o dispositivo sobre a parte superior do ímã de modo que as microesferas magnéticas no reservatório se separem todas para uma única área. Transfira o aglomerado de microesferas magnéticas de volta para a câmara de teste.Uma vez que o agregado atinja a câmara de teste, agite as microesferas magnéticas colocando o dispositivo sobre o ímã e girando-o. Libere o líquido fluorescente aprisionado até que a homogeneização da câmara de teste seja concluída. Realize medições da intensidade fluorescente tanto da câmara de teste quanto do reservatório utilizando o microscópio invertido.Repita esses passos até que ambos os segmentos líquidos apresentem intensidades de fluorescência semelhantes. Para preparar o dispositivo de tubo, insira um conector fêmea tipo lure lock em uma das extremidades do tubo e coloque o tubo em uma seringa com conector lure lock. Em seguida, coloque a seringa na bomba de infusão e ajuste a taxa de alimentação em dois mililitros por hora.Insira 20 microlitros de uma solução mista na proporção um para um de esferas magnéticas em água com C 12 E cinco no tubo utilizando a retirada por bomba de seringa. Após a conclusão da inserção do líquido na câmara de teste, retire seis microlitros de ar para dentro do tubo após a inserção do espaço de ar. Inicie a retirada de 180 microlitros de surfactante C 12 E cinco puro para ajustar a óptica.Primeiro, mova a bomba de seringa com o dispositivo de tubo de modo que a câmara de teste com as microesferas magnéticas fique em foco. Utilize polarizadores cruzados com o microscópio estereoscópico. Para realçar o contraste entre a fase sólida precipitada e a fase líquida, coloque uma folha de filme polarizador sobre uma fonte de luz LED. Deslize a fonte de luz LED sob o tubo conectado à bomba de seringa.Fixe outro filme polarizador à lente do microscópio estereoscópico usando fita adesiva, certificando-se de que os dois filmes polarizadores tenham um deslocamento de 90 graus entre si. Coloque o ímã cúbico ao lado da câmara de teste enquanto o ímã estiver montado em um suporte. Assim que as microesferas magnéticas formarem um agregado, comece a bombear líquidos para dentro do tubo a uma taxa de alimentação de dois mililitros por hora, de modo que o agregado de microesferas magnéticas seja movido da câmara de teste através da folga de ar e para dentro da câmara reservatório do surfactante.Quando o aglomerado de microesferas magnéticas atingir o ponto médio da câmara do reservatório, pare a bombagem na bomba de seringa. Afaste o ímã cúbico do tubo para que as microesferas magnéticas se separem e reduza o tempo de difusão do líquido aprisionado no aglomerado de microesferas magnéticas. Após a conclusão da difusão e da mudança de fase do líquido, coloque o ímã novamente em sua posição anterior junto ao reservatório, para que as microesferas magnéticas se reagrupem em um aglomerado.Usando a bomba de seringa, aspire os líquidos de modo que o aglomerado de microesferas magnéticas seja transferido do reservatório de surfactante através da folga de ar e retorne à câmara de teste. Após o aglomerado de microesferas magnéticas atingir o ponto médio da câmara de teste, pare a bomba de seringa e afaste o ímã cúbico do tubo. Uma vez concluídas a difusão e a mudança de fase do líquido, posicione o ímã novamente em sua posição anterior junto ao reservatório, para que as microesferas magnéticas se reagrupem em um aglomerado.Repita esses passos até que a câmara de teste exiba uma mudança de fase. É mostrada aqui uma imagem das esferas magnéticas na água e do surfactante não iônico C 12 E cinco dentro do tubo hidrofóbico. Durante o processo inicial de transferência das esferas magnéticas, as esferas são mantidas no lugar usando um ímã cúbico externo.Enquanto os líquidos são bombeados para a esquerda aqui, as microesferas estão saindo da câmara de teste e entrando no C 12 E cinco. Assim que as microesferas magnéticas entram, a água com surfactante começa a difundir-se para longe da estrutura das microesferas magnéticas. Após as microesferas magnéticas permanecerem na câmara de surfactante por cinco segundos, apenas uma pequena quantidade de mudança de fase é observada no momento de dez segundos.As microesferas magnéticas são completamente envolvidas pelo surfactante. A mudança de fase prossegue até a marca de 92 em quatro minutos. A mudança de fase aumenta aos nove minutos.A mudança de fase horizontal começa a reduzir enquanto a estrutura cresce verticalmente. Enquanto aos 17 minutos a mudança de fase já havia diminuído drasticamente em tamanho, aos 25 minutos resta apenas uma pequena quantidade da mudança de fase visível. Aqui está a condição inicial de uma câmara de teste de água C 12 V cinco com microesferas magnéticas no dispositivo antes da transferência do surfactante.Após seis transferências de ida e volta, ocorreu uma mudança de fase. Inversamente, na ausência de microesferas magnéticas no dispositivo, nenhuma mudança de fase foi observada, comprovando que os resultados observados se deviam à arraste de microesferas magnéticas e não ao líquido. Adesão às paredes internas da tubulação ao tentar realizar este procedimento.É importante dispor de tempo suficiente para permitir que o processo de difusão ocorra durante a transferência de líquidos entre reservatórios adjacentes seguindo este procedimento. Outras opções, como o uso de um eletroímã, podem ser incorporadas ao nosso sistema com o objetivo de responder a questões adicionais, como a forma de acelerar o processo de separação e como minimizar a manipulação manual. Para colocar isso em contexto, esta técnica muito simples, que envolve basicamente um tubo plástico, esferas magnéticas e um ímã externo, tem sido aplicada na separação de diferentes fluidos e na exploração do espaço de seus diagramas de fases.No entanto, a versatilidade e simplicidade da técnica compensarão em muitas outras aplicações, principalmente na área de análise diagnóstica de diferentes fluidos. Ao utilizar abelhas magnéticas para transportar pequenos volumes, direta ou indiretamente por meio da funcionalização dos grânulos magnéticos, podemos analisar os componentes da amostra de fluido. E isso tem aplicações em diversas áreas.Por exemplo, a separação e análise de proteínas de glóbulos vermelhos no sangue total, de forma semelhante na urina e em muitos outros fluidos que podem ser analisados dessa maneira usando uma técnica simples, sem a complexidade e o custo associados à fabricação convencional de dispositivos microfluídicos.

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Engineering

Engenharia

Neste artigo, um simples, quantitativa, na fase líquida ensaio de captura de afinidade é apresentado. É uma técnica fiável baseada na interacção entre as esferas magnéticas e proteínas marcadas (por exemplo, nanocorpos), por um lado ea afinidade entre a proteína marcada e uma proteína, segundo rotulada (por exemplo, poliovírus) sobre o outro.

A fase líquida ensaio de captura de afinidade usando pérolas magnéticas para estudar interação proteína-proteína: O Exemplo Poliovírus Nanobody-

Um scanner para imagiologia de partículas magnéticas nas amostras planas foi desenvolvido utilizando a frequência plana mistura técnica de detecção magnética. A resposta magnética produto de intermodulação da magnetização nonhysteretic não linear das partículas é gravada em cima de uma excitação de dois frequência. Ele pode ser usado para captar imagens 2D de amostras biológicas finas.

Frequência mistura Scanner Detecção magnética for Imaging Partículas Magnéticas em amostras Planar

Processos de fabricação de iões lantanídeos magneticamente altamente responsivo quelantes polymolecular assemblies são apresentados. A resposta magnética é ditada pelo tamanho montagem, que é adaptado por extrusão através de membranas nanopore. As assembleias alignability magnética e temperatura induzido por alterações estruturais são monitoradas por medições de birrefringência, uma técnica complementar de ressonância magnética nuclear e a dispersão de nêutrons de ângulo pequeno.

Procedimentos de fabricação e medições de birrefringência por projetar Lanthanide magneticamente responsivo Ion quelantes Phospholipid assembleias

Este protocolo descreve a síntese de partículas magnéticas e avaliação de suas propriedades de ligação a DNA através de espalhamento de luz dinâmica e eletroforético. Este método concentra-se em acompanhamento de alterações no tamanho da partícula, sua polidispersividade e potencial zeta de superfície de partícula que desempenham grande papel na ligação de materiais tais como o DNA.

DNA-magnético partícula análise por dispersão de luz dinâmica e eletroforético de vinculação

Aqui, apresentamos um protocolo para descrever as investigações ex situ e em situ das transformações estruturais em copos metálicos. Utilizamos métodos analíticos baseados em nuclear que inspecionam interações hyperfine. Vamos demonstrar a aplicabilidade da espectrometria de Mössbauer e espalhamento frontal nuclear de radiação síncrotron durante experimentos orientados a temperatura.

Métodos de Ex Situ e In Situ investigações de transformações estruturais: O caso de cristalização de vidros metálicos

Neste relatório, nós apresentamos um protocolo para examinar os efeitos directos magnetoelectric, i.e., indução de polarização ferroelétrica aplicando campos magnéticos, em cristais líquidos. Este protocolo fornece uma abordagem única, suportada com a suavidade de cristais líquidos, para atingir a temperatura magnetoelectrics.

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Relatamos uma síntese hidrotérmica de um pote de aglomerados de ferrita de manganês (MFCs) que oferece controle independente sobre a dimensão e a composição do material. A separação magnética permite a purificação rápida enquanto a funcionalização da superfície usando polímeros sulfoados garante que os materiais não sejam agregados em meio biologicamente relevante. Os produtos resultantes estão bem posicionados para aplicações biomédicas.

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Levantamentos magnéticos ex situ podem fornecer diretamente informações locais e em massa em um eletrodo magnético para revelar seu mecanismo de armazenamento de carga passo a passo. Neste trabalho, a ressonância magnética eletrônica (VHS) e a suscetibilidade magnética são demonstradas para monitorar a avaliação de espécies paramagnéticas e sua concentração em uma estrutura metal-orgânica redox-ativa (MOF).

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Relatamos um ensaio de conjunto híbrido e molécula única para obter imagens diretas e quantificar o movimento de helicase Cdc45 / Mcm2-7 / GINS (CMG) totalmente reconstituída e marcada com fluorescência em moléculas de DNA lineares mantidas no lugar em uma armadilha óptica.

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Aqui apresentamos protocolos para metodologias de RMN, DIFfusão REstrita de espécimes invisíveis (REDIFINE) e DEtectioN CONdensate por Transferência de Magnetização SEmi-sólida (CONDENSE-MT), que permitem a caracterização quantitativa e sem rótulo de condensados biomoleculares sob condições bifásicas, revelando particionamento molecular, dinâmica de troca, hidratação de condensados e estrutura de gotículas sem sedimentação ou marcação.

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