Conception et utilisation d’un appareil pour quantifier la Suspension Bivalve alimentation en mer

Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de l’écologie des mollusques et crustacés, telles que la quantité de susten disponible sous forme de nourriture de haute qualité sur les sites aquacoles potentiels. Le principal avantage de cette technique est qu’elle est beaucoup plus fiable que les expériences sur l’eau car les mesures sont effectuées dans le milieu naturel. Cette méthode peut être appliquée à d’autres systèmes et espèces et peut être élargie pour comprendre les services écosystémiques fournis par les coquillages.

Les personnes qui ne connaissent pas cette méthode auront de la difficulté parce que les conditions en mer peuvent rendre l’échantillonnage difficile, soit en raison des mouvements des bateaux, soit du manque de disponibilité de nourriture pour les mollusques et crustacés. La démonstration visuelle de cette méthode est essentielle car chaque étape, en particulier le séquençage, doit être effectuée correctement pour obtenir une mesure valide. Pendant que vous êtes encore au quai, assemblez la table à cardan pour qu’elle se compose de 2 cadres.

Une table à cardan et un réservoir de ballast. Remplissez un cube en PVC avec un lest amovible et remplissez le réservoir de ballast avec quatre-vingt-cinq kilogrammes d’eau de mer. Insérez un poids de zinc de cinquante kilogrammes au fond du ballast pour servir de contrepoids à l’oscillation de la table.

Et fixez le réservoir de ballast à la table de cardan. Placez un déflecteur mobile en forme de T de cinquante millimètres de long sur les parois de la chambre d’alimentation pour que l’eau s’écoule à l’intérieur de la chambre à 1 à 2 centimètres devant le bivalve. Installez la chambre de tête et le dispositif d’alimentation sur le dessus de la table à cardan et maintenez les matériaux en place avec des tapis antidérapants.

Démarrez ensuite la pompe pour permettre l’ajout d’eau de mer à l’appareil à partir de la profondeur expérimentale appropriée. Pour calibrer les débits, placez un cylindre gradué de cent millimètres à la sortie d’une chambre d’alimentation et commencez immédiatement à enregistrer l’heure avec un chronomètre. Après trente secondes, vérifiez le volume d’eau collecté dans le cylindre, idéalement cent millimètres d’eau ont été collectés.

Si le volume collecté n’est pas à moins de 5 millimètres de la cible de cent millimètres, fermez ou ouvrez la vanne entre le réservoir de tête et la chambre d’alimentation pour ajuster le débit et vérifier à nouveau le nouveau débit comme démontré. Lorsque l’appareil est prêt, passez au site de l’expérience. À l’arrivée sur le terrain, nettoyez les bivalves des épibiontes et autres organismes encroûtants pour éviter la filtration par d’autres animaux.

Avant de placer 5 bivalves dans des bassins individuels contenant trois cents millimètres d’eau de mer ambiante non filtrée. Ajoutez ensuite 2 millilitres de monoculture de tetraselmis SP dans chaque bécher et notez l’heure d’ouverture de chaque bivalve, comme indiqué par une porte en coquille. Vérifiez chaque bécher toutes les 3 à 5 minutes pour vous assurer que les bivalves restent ouverts et produisent des excréments bruns, densément tassés et serrés qui conservent leur structure lors du pipetage.

Les pseudo-fèces, qui sont le résultat d’un excès de tetraselmis SP, sont des dépôts légèrement emballés ressemblant à des nuages de particules non ingérées qui se remettent rapidement en suspension lorsqu’elles sont collectées par pipette. Notez le temps de chaque bivalve individuel lorsque les excréments verts apparaissent pour permettre le calcul du temps de transit intestinal moyen pour les 5 répétitions de bivalves. Pendant que le temps de transit intestinal est déterminé, prélevez des échantillons d’eau avec un volume d’eau spécifique au site débordant du réservoir de tête et des chambres de contrôle toutes les quinze minutes pendant au moins 2 heures.

Ensuite, à l’aide d’un ruban auto-agrippant, attachez une moule vivante à chacune des seize chambres d’alimentation de l’appareil de biodépôt et un ensemble de coquilles de moules vides à chacune des 4 chambres de contrôle. Prélevez les particules contenues dans les échantillons d’eau de trop-plein et de chambre de contrôle par filtration sur 3 filtres individuels en fibre de verre pré-pondérés par point temporel et rincez les filtres avec environ 5 millimètres de formiate d’imodium isotonique pendant que les filtres sont encore sur le collecteur de filtration. Lorsque le temps de transit intestinal a été déterminé, réglez une minuterie pour retarder le début de la collecte des biodépôts de la collecte d’eau de la durée du temps moyen de transit intestinal.

Ensuite, nettoyez les chambres de tous les excréments qui ont été produits et ombragez les bivalves pour augmenter le nombre de bivalves qui s’ouvrent pour se nourrir. À l’aide d’une pipette en verre, recueillir et filtrer séparément les matières fécales et les pseudo-matières fécales, en tirant continuellement chaque type de biodépôt dans un récipient par bivalve tout au long de la période de collecte, comme il a été démontré pour les échantillons d’eau. Lorsque tous les échantillons ont été prélevés, stockez les filtres dans une glacière avec de la glace pour le transport au laboratoire.

L’objectif de la collecte d’échantillons est d’obtenir suffisamment de matière sur les filtres pour que les fractions organiques et inorganiques puissent être pesées avec précision. Par conséquent, les temps de collecte des échantillons en volumes peuvent varier d’un endroit à l’autre. En utilisant cette méthode, on observe une distribution uniforme des particules entre les différentes chambres de l’appareil d’alimentation, indiquant une distribution constante de particules alimentaires de quantité et de qualité égales de la cuve de tête aux chambres individuelles.

Dans cette expérience représentative, 4 essais à bord d’un navire ont été menés avec 3 espèces de moules dans 3 endroits avec des qualités et des compositions de sustentation très différentes. Les bivalves ajustent leur comportement alimentaire en fonction des différences dans la quantité et le type de particules dans l’eau, reflétant à la fois les réponses physiologiques des plastiques à la quantité et à la qualité de la nourriture, ainsi que les différences entre les espèces dans 3 des 4 expériences. Les problèmes analytiques couramment associés aux zones à faible teneur en particules sont illustrés dans ces résultats de comportement alimentaire de l’ensemble de collecte de données californiennes où certains des pseudo-fèces ont été initialement confondus avec des excréments.

Lors de cette procédure, il est important de se rappeler de consigner avec précision toutes les heures, les volumes d’eau et les informations sur le site. À la suite de cette procédure, d’autres méthodes comme l’analyse azotée des biodépôts peuvent être utilisées pour quantifier les services écosystémiques fournis par les coquillages. Après sa mise au point, cette technique a permis aux chercheurs dans le domaine de l’écologie des coquillages de comparer les avantages environnementaux fournis par différentes espèces de coquillages dans les mêmes conditions.

N’oubliez pas que le travail en mer peut être extrêmement difficile et que toutes les précautions de sécurité doivent être respectées. Y compris savoir quand l’état de la mer empêche d’autres travaux.