Name: Sezionamento dellosso temporale umano ad alta velocità per la valutazione della patologia dellorecchio medio associata a COVID-19 (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-05-18T14:00:00.000+00:00
Duration: 3 min 42 s
Description: Impara la sezionatura ad alta velocità dell'osso temporale umano con microsega a doppia lama diamantata per l'otopatologia COVID-19. Questo metodo riduce i tempi di elaborazione da mesi a giorni, facilitando l'analisi immunohistochimica rapida.

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Ringraziamo Mohamed Lehar per la sua assistenza in questo progetto. Questo lavoro è stato parzialmente supportato dal National Institutes of Health (T32DC000027, NSA).

Questo protocollo è stato sviluppato con l'approvazione IRB (IRB00250002) e in conformità con le politiche istituzionali per l'uso di tessuti umani e materiale infettivo. Ogni donatore di ossa temporali ha fornito il consenso scritto prima della morte, o il consenso è stato ottenuto postumo dalla famiglia del donatore. Vedere la Tabella dei materiali per i dettagli su tutti i materiali, le attrezzature e il software utilizzati in questo protocollo.
1. Raccolta ossea temporale
<ol><li>Ottenere l'approvazione del consiglio di revisione istituzionale locale (IRB), rivedere le politiche istituzionali per l'uso di materiale umano e infettivo e ottenere il consenso per la donazione di tessuti prima di utilizzare questo protocollo.</li>
	<li>Indossare adeguati dispositivi di protezione individuale (DPI) prima di lavorare con tessuti di donatori di ossa temporali covid-19-positivi. Assicurarsi che il DPI sia costituito da un respiratore N-95 e da una visiera (o in alternativa da un sistema di purificazione dell'aria a pressione positiva), un camice e due paia di guanti. Rivedere le tecniche per indossare e togliere correttamente i DPI prima di iniziare questo protocollo10.</li>
	<li>Raccogliere il tessuto osseo temporale entro 12-24 ore dalla morte del donatore. Se il corpo non è refrigerato, assicurarsi che la raccolta avvenga entro 8 ore dalla morte.<ol>
<li>Raccogliere le ossa temporali durante l'autopsia usando il metodo a quattro incisioni, blocco con osteotoma7.<ol>
<li>Dopo la craniotomia, rimuovere il cervello e dividere bruscamente i nervi cranici nel canale uditivo interno.</li>
			<li>Fare la prima incisione ossea con l'osteotoma parallela e solo mediale alla porzione squamosa dell'osso temporale.</li>
			<li>Eseguire la seconda incisione ossea parallela alla prima sul bordo mediale dell'osso temporale.</li>
			<li>Quindi, fare la terza incisione 3-4 cm anteriore e parallela alla cresta petrosa.</li>
			<li>Fai la quarta incisione approssimativamente parallela alla terza, 2 cm posteriore alla cresta petrosa. NOTA: Assicurarsi che tutte le incisioni si estendano attraverso la base del cranio.</li>
			<li>Quindi, rimuovere l'osso temporale usando una dissezione acuta per liberare l'attaccamento dei tessuti molli lungo il bordo inferiore del campione. Se l'imbalsamazione deve essere eseguita dopo la raccolta dell'osso temporale, legare il moncone dell'arteria carotide.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. Fissazione dei tessuti, decalcificazione e sezionamento
<ol><li>Posizionare immediatamente il tessuto in 200-300 ml di formalina tamponata al 10% (formaldeide) in modo che il tessuto sia completamente sommerso. Lasciare il tessuto in formaldeide per un minimo di 72 ore a temperatura ambiente, cambiando le soluzioni quotidianamente. Conservare il tessuto in un contenitore ermetico ed eseguire cambi di soluzione sotto una cappa aspirante mentre si indossano DPI appropriati per prevenire la diffusione del virus. NOTA: Dopo il periodo di fissazione di 72 ore, i campioni non devono più essere considerati infettivi.</li>
	<li>Utilizzare una microsega di precisione con due lame diamantate per tagliare ogni campione in tre sezioni "spesse" per consentire una più rapida decalcificazione dei tessuti. Impostare i dischi gemelli diamantati a una distanza di 5 mm, in modo che la sezione centrale dell'osso temporale abbia uno spessore di 5 mm. Assicurarsi che le sezioni di tessuto su entrambe le estremità abbiano uno spessore di 3-5 mm.</li>
	<li>Posizionare le sezioni spesse in 200-300 ml di soluzione decalcificante di acido formico al 23% p/p per 7-10 giorni a temperatura ambiente, fino a quando il tessuto è abbastanza morbido per l'incorporamento della paraffina. Cambia le soluzioni ogni giorno. Verificare l'adeguata decalcificazione dei tessuti palpando il campione, che dovrebbe sentirsi morbido. NOTA: La decalcificazione può anche essere verificata mediante raggi X.</li>
	<li>Risciacquare i campioni in acqua corrente del rubinetto per 24 ore posizionandoli in un grande becher sotto un rubinetto in esecuzione.</li>
	<li>Disidratare il tessuto in una serie di alcoli di concentrazione crescente7. Immergere il tessuto in 100-200 ml di etanolo al 70% per 1,5 ore, seguito da tre lavaggi rispettivamente al 95% e al 100% di etanolo per 1,5 ore ciascuno. Quindi, lavare il tessuto 3 x 1,5 ore in xilene.</li>
	<li>Incorporare le sezioni spesse in paraffina, con quattro trattamenti di 45 minuti ciascuno.</li>
	<li>Utilizzare un criotomo per tagliare sezioni sottili (10 μm). Posizionare il tessuto in modo che il tessuto venga tagliato nel piano assiale. Tagliare sezioni più spesse (20 μm) se lo si desidera.</li>
</ol>3. Immunoistochimica e imaging
<ol><li>Se si desidera la colorazione tradizionale di ematossilina ed eosina (non descritta qui), eseguire la colorazione prima di montare le sezioni su vetrini7.</li>
	<li>Montare le sezioni su vetrini caricati positivamente.</li>
	<li>Cuocere i vetrini su una piastra calda a 60 °C per 20 min.</li>
	<li>Posizionare i vetrini in un supporto e immergerli in una soluzione di pretrattamento commerciale contenente un solvente organico (dietanolamina in questo caso) ed etanolo per deparaffinizzare, reidratare e smascherare il tessuto. NOTA: Questo passaggio è necessario per ottenere risultati soddisfacenti con l'immunoistochimica per tessuti fissati con formalina e paraffina.</li>
	<li>Riscaldare i vetrini in una pentola a pressione ad alta pressione per 20 minuti.</li>
	<li>Posizionare i vetrini in una camera umidificata e bloccare il tessuto con una soluzione di blocco commerciale.</li>
	<li>Sondare le sezioni tissutali con l'anticorpo primario contro l'enzima di conversione dell'angiotensina 2 (ACE2; 1:50), la proteasi transmembrana 2 (TMPRSS2, 1:1.000) e la proteasi Furin (1:250). NOTA: Gli anticorpi ACE2, TMPRSS2 e Furin sono usati perché si ritiene che queste proteine svolgano un ruolo nell'infettività sars-CoV-211,12 e questo protocollo ha cercato di studiare i possibili meccanismi con cui SARS-CoV-2 può infettare l'orecchio medio13.</li>
	<li>Trattare con anticorpo secondario anti-coniglio coniugato HRP (ACE2, Furin; diluizione 1:100) o anti-capra (TMPRSS2, diluizione 1:100).</li>
	<li>Controbattere i vetrini con il 70% di ematossilina in acqua.</li>
	<li>Acquisisci immagini su un microscopio ottico con una fotocamera digitale montata. Ottenere immagini della mucosa dell'orecchio medio e della tromba di Eustachio rispettivamente con ingrandimento 20x e 10x.</li>
</ol>

<ol><li>Nogueira, J. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+brief+history+of+otorhinolaryngology%3A+Otology%2C+laryngology+and+rhinology%5BTitle%5D)+AND+%22Brazilian+Journal+of+Otorhinolaryngology%22%5BJournal%5D)">A brief history of otorhinolaryngology: Otology, laryngology and rhinology.</a> Brazilian Journal of Otorhinolaryngology. 73 (5), 693-703 (2007).</li>
<li>Pappas, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Otology+through+the+ages%5BTitle%5D)+AND+%22Otolaryngology-Head+and+Neck+Surgery%22%5BJournal%5D)">Otology through the ages.</a> Otolaryngology-Head and Neck Surgery. 114 (2), 173-196 (1996).</li>
<li>Schuknecht, H. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Otopathology%3A+The+past%2C+present%2C+and+future%5BTitle%5D)+AND+%22Auris+Nasus+Larynx%22%5BJournal%5D)">Otopathology: The past, present, and future.</a> Auris Nasus Larynx. 23, 43-45 (1996).</li>
<li>Monsanto, R. D. C., Pauna, H. F., Paparella, M. M., Cureoglu, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Otopathology+in+the+United+States%3A+History%2C+current+situation%2C+and+future+perspectives%5BTitle%5D)+AND+%22Otology+%26+Neurotology%22%5BJournal%5D)">Otopathology in the United States: History, current situation, and future perspectives.</a> Otology & Neurotology. 39 (9), 1210-1214 (2018).</li>
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<li>Andresen, N. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Insights+into+presbycusis+from+the+first+temporal+bone+laboratory+within+the+United+States%5BTitle%5D)+AND+%22Otology+%26+Neurotology%22%5BJournal%5D)">Insights into presbycusis from the first temporal bone laboratory within the United States.</a> Otology & Neurotology. 43 (3), 400-408 (2022).</li>
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<li>Chole, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Labs+in+crisis%3A+Protecting+the+science--and+art--of+otopathology%5BTitle%5D)+AND+%22Otology+%26+Neurotology%22%5BJournal%5D)">Labs in crisis: Protecting the science--and art--of otopathology.</a> Otology & Neurotology. 31 (4), 554-556 (2010).</li>
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<li>McCall, A. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extralabyrinthine+manifestations+of+DFNA9%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+Association+for+Research+in+Otolaryngology%22%5BJournal%5D)">Extralabyrinthine manifestations of DFNA9.</a> Journal of the Association for Research in Otolaryngology. 12 (2), 141-149 (2011).</li>
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<li>Miller, M. E., Lopez, I. A., Linthicum, F. H., Ishiyama, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Connexin+26+immunohistochemistry+in+temporal+bones+with+cochlear+otosclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Otology%2C+Rhinology+%26+Laryngology%22%5BJournal%5D)">Connexin 26 immunohistochemistry in temporal bones with cochlear otosclerosis.</a> Annals of Otology, Rhinology & Laryngology. 127 (8), 536-542 (2018).</li>
<li>Lopez, I. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunohistochemical+techniques+for+the+human+inner+ear%5BTitle%5D)+AND+%22Histochemistry+and+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Immunohistochemical techniques for the human inner ear.</a> Histochemistry and Cell Biology. 146 (4), 367-387 (2016).</li>
</ol>

Gli autori non hanno conflitti di interesse da dichiarare.

La ricerca sull'osso temporale umano è fondamentale per lo studio della patologia dell'orecchio interno e medio, ma rimane uno sforzo ad alta intensità di tempo e risorse. Questo documento descrive una tecnica che utilizza una microsega diamanta per generare sezioni ossee temporali spesse che possono essere rapidamente decalcificate prima di ulteriori sezioni in modo che il tempo dalla raccolta dei tessuti allo studio possa essere ridotto da 9-10 mesi a 10-14 giorni. Questa tecnica può ridurre le risorse necessarie per l...

La ricerca sull'osso temporale umano fornisce una risorsa inestimabile per studiare la patologia e la fisiopatologia dell'orecchio interno e medio. Prima del 19 ° secolo, si sapeva poco per quanto riguarda la malattiaotologica 1,2,3. Per comprendere meglio la malattia otologica e "salvare la chirurgia uditiva dalle mani dei ciarlatani", Joseph Toynbee (1815-1866) sviluppò metodi per studiare le sezioni istologiche dell'osso temporale umano3. Questo lavoro è stato promosso da Adam Politzer (1835-1920) a Vienna e altri in tutta Europa durante il resto del 19 ° secolo, che ha usato sezioni ossee temporali per descrivere l'istopatologia di molte condizioni comuni che interessano l'orecchio 2,3,4.
Il primo laboratorio di ossa temporali umane negli Stati Uniti fu aperto nel 1927 al Johns Hopkins Hospital, dove Stacy Guild (1890-1966) sviluppò metodi per il sezionamento dell'osso temporale 5,6. I metodi sviluppati da Guild consistevano in un processo di 9-10 mesi che includeva la raccolta post-mortem, la fissazione, la decalcificazione in acido nitrico, la disidratazione in etanolo, l'incorporamento di celloidin, il sezionamento, la colorazione e il montaggio. Le modifiche a questa tecnica furono successivamente apportate da Harold Schuknecht (1917-1996)7; tuttavia, le componenti di base di questo processo rimangono sostanzialmente invariate.
Le risorse significative necessarie per mantenere un laboratorio di osso temporale hanno rappresentato una sfida per la ricerca sull'osso temporale e probabilmente hanno contribuito al declino della sua popolarità negli ultimi 30 anni 4,8. Una parte significativa delle risorse di laboratorio dell'osso temporale deve essere dedicata al processo di 9-10 mesi di preparazione dell'osso temporale. Una delle fasi più dispendiose in termini di tempo nella preparazione è la decalcificazione dell'osso temporale, che è l'osso più denso del corpo umano. La decalcificazione viene tipicamente eseguita in acido nitrico o acido etilendiamminotetraacetico (EDTA) e richiede settimane o mesi mentre richiede il frequente cambio di soluzioni 7,9. Inoltre, gli studi sensibili al tempo dell'orecchio umano, come quelli relativi alla pandemia di COVID-19, possono essere ostacolati da questo lento processo di preparazione. Questo documento descrive una tecnica per il sezionamento osseo temporale ad alta velocità che utilizza una microsega a diamante per generare sezioni spesse che consentono una rapida decalcificazione e analisi dei tessuti entro 10-14 giorni dalla raccolta dell'osso temporale.

<table><tbody><tr><td>Anticorpo anti-ACE-2 (diluizione applicata 1:50)</td><td>Novus Biologicals</td><td>SN0754</td><td></td></tr><tr><td>Anticorpo anti-furina (diluizione 1:250)</td><td>Anticorpo anti-TMPRSS2 Abcam</td><td>EPR 14674</td><td></td></tr><tr><td>(diluizione 1:1.000)</td><td>Novus Biologicals</td><td>NBP1-20984</td><td></td></tr><tr><td>BX43 Sistema manuale Microscopio</td> Wafering ibrido CBN/diamante <td>Olympus Life Science</td><td></td><td></td></tr> Solutions <tr><td> Blade</td><td>Pace Technologies</td><td>WB-007GP</td><td></td></tr><tr><td>Collin Mallet - Fotocamera</td> per microscopio da 8'' <td>Surgical Mart</td><td>SM1517</td><td></td></tr><tr><td>DS-Fi3</td><td>Blocco enzimatico</td> endogeno doppio Nikon <td></td><td></td></tr><tr><td>(soluzione di blocco commerciale)</td><td>Dako</td><td>S2003</td><td></td></tr><tr><td>Eaosin Stain</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>548-24-3</td><td></td></tr><tr><td>Soluzione di formalina, neutra tamponato 10%</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>HT501128</td><td></td></tr><tr><td>Formical-4 Decalcificante (soluzione decalcificante dell'acido formico)</td><td>StatLab</td><td>1214-1 GAL</td><td></td></tr><tr><td>Colorazione dell'ematossilina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H9627</td><td></td></tr><tr><td>HRP-Conjugated Anti-Rabbit Secondary Antibody (diluizione 1:100)</td><td>Leica Biosystems</td><td>PV6119</td><td></td></tr><tr><td>ImmPRESS HRP Kit di rilevamento delle igG anti-capra per cavalli, perossidasi (1:100 Vector</td> <td>Laboratories</td><td>MP-7405</td><td></td></tr><tr><td>Lambotte Osteotome</td><td>Surgical Mart</td><td>SM1553</td><td></td></tr><tr><td>Metallographic PICO 155P Precision Saw Pace</td><td>Technologies</td><td>PICO 155P</td><td>microsega</td></tr><tr><td>NIS Elements Versione software 4.6</td><td>Nikon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Paraplast Plus</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P3683</td><td>paraffina</td></tr><tr><td>Vetrini per microscopio caricati positivi con estremità smerigliata bianca</td><td>Walter Products</td><td>1140B15</td><td></td></tr><tr><td>Thermo Shandon Crytome FSE Cryostat Microtome</td><td>New Life Scientific Inc.</td><td>A78900104</td><td>criotomo</td></tr><tr><td>Triology Pretreatment Solution (soluzione di pretrattamento commerciale)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>920P-05</td><td></td></tr><tr><td>Xylene</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>920P-05</td><td></td></tr></tbody></table>

sezionamento dell'osso temporale umano ad alta velocità per la valutazione della patologia dell'orecchio medio associata a covid-19

High-Speed Human Temporal Bone Sectioning for the Assessment of COVID-19-Associated Middle Ear Pathology

L'analisi istopatologica delle sezioni ossee temporali umane è una tecnica fondamentale per lo studio della patologia dell'orecchio interno e medio. Le sezioni ossee temporali sono preparate mediante raccolta ossea temporale post-mortem, fissazione, decalcificazione, incorporamento e colorazione. A causa della densità dell'osso temporale, la decalcificazione è un processo che richiede tempo e risorse; la preparazione completa dei tessuti può richiedere in media 9-10 mesi. Ciò rallenta la ricerca otopatologica e ostacola gli studi sensibili al fattore tempo, come quelli rilevanti per la pandemia di COVID-19. Questo documento descrive una tecnica per la rapida preparazione e decalcificazione delle sezioni ossee temporali per accelerare l'elaborazione dei tessuti.
Le ossa temporali sono state raccolte post mortem utilizzando tecniche standard e fissate in formalina al 10%. Una microsega di precisione con due lame diamantate è stata utilizzata per tagliare ogni sezione in tre sezioni spesse. Sezioni ossee temporali spesse sono state poi decalcificate in soluzione decalcificante per 7-10 giorni prima di essere incorporate nella paraffina, sezionate in sezioni sottili (10 μm) usando un criotomo e montate su vetrini non caricati. I campioni di tessuto sono stati quindi deparaffinati e reidratati per la colorazione degli anticorpi (ACE2, TMPRSS2, Furin) e ripresi. Questa tecnica ha ridotto il tempo dalla raccolta all'analisi dei tessuti da 9-10 mesi a 10-14 giorni. Il sezionamento osseo temporale ad alta velocità può aumentare la velocità della ricerca otopatologica e ridurre le risorse necessarie per la preparazione dei tessuti, facilitando al contempo studi sensibili al tempo come quelli relativi a COVID-19.

La colorazione di ematossilina ed eosina della mucosa dell'orecchio medio e della tromba di Eustachio ha mostrato la conservazione della mucosa dell'orecchio medio e del tessuto dell'orecchio medio sottomucoso dopo l'elaborazione (Figura 1). Le immagini immunoistochimiche hanno mostrato l'espressione delle proteine ACE2, TMPRSS2 e Furin all'interno della mucosa dell'orecchio medio e della tromba di Eustachio (Figura 1). La presenza di queste proteine all'interno...

Questo articolo descrive una tecnica per il sezionamento rapido dell'osso temporale umano che utilizza una microsega con due dischi diamantati per generare fette sottili per una rapida decalcificazione e analisi dell'immunoistochimica ossea temporale.

Sezionamento dell'osso temporale umano ad alta velocità per la valutazione della patologia dell'orecchio medio associata a COVID-19

Histopathologic analysis of human temporal bone sections is a fundamental technique for studying inner and middle ear pathology. Temporal bone sections ...

Questo protocollo riduce il tempo per l'elaborazione dell'osso temporale da 9 a 10 mesi a 10-14 giorni. Il vantaggio principale di questa tecnica è che consente la rapida valutazione dell'otopatologia, che nel nostro caso è rilevante per la valutazione della patologia dell'orecchio medio associata a COVID-19. Questa tecnica può essere particolarmente utile per studi sensibili al tempo dell'osso temporale.In futuro, potrebbe essere ulteriormente ottimizzato per l'uso studiando la patologia dell'orecchio interno. Iniziare la raccolta durante l'autopsia e dividere bruscamente i nervi cranici nel canale uditivo interno. Fare la prima incisione ossea con l'osteotoma parallela e solo mediale alla porzione squamosa dell'osso temporale.Quindi, eseguire la seconda incisione ossea parallela alla prima sul bordo mediale dell'osso temporale. Fai la terza incisione a tre o quattro centimetri anteriormente e parallela alla cresta petrosa. Quindi, fai la quarta incisione approssimativamente parallela alla terza a due centimetri posteriore alla cresta petrosa.Utilizzare la dissezione acuta per liberare i tessuti molli attaccati lungo il bordo inferiore del campione e rimuovere l'osso temporale. Do

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Per garantire un'analisi funzionale ciliare di successo e di alta qualità per la diagnosi di PCD, è essenziale un metodo preciso e attento per il campionamento e il trattamento dell'epitelio respiratorio. Per continuare a fornire un servizio diagnostico PCD durante la pandemia COVID-19, il protocollo di videomicroscopia ciliare è stato aggiornato per includere adeguate misure di controllo delle infezioni.

Campionamento ed elaborazione della spazzolatura nasale mediante videomicroscopia ciliare digitale ad alta velocità – Adattamento alla pandemia COVID-19

In questo articolo, presentiamo il protocollo e i risultati a breve termine dell'atticoantrotomia endoscopica esclusiva endaurale utilizzando una tecnica di perforazione ossea ad aspirazione costante.

Atticoantrotomia endoscopica endaurale (mastoidectomia retrograda) utilizzando una tecnica di perforazione ossea ad aspirazione costante

Questo articolo presenta un metodo affidabile per estrarre la coclea umana dall'osso temporale del cadavere mediante perforazione, seguendo punti di riferimento anatomici distinti.

Estrazione della coclea da un osso temporale umano: un protocollo cadaverico

In questo articolo, presentiamo un protocollo dettagliato per l'isolamento e la coltura di cellule ciliate cocleari primarie dai topi. Inizialmente, l'organo di Corti è stato sezionato da coclee murine neonatali (di 3-5 giorni) al microscopio. Successivamente, le cellule sono state digerite enzimaticamente in una sospensione unicellulare e identificate utilizzando l'immunofluorescenza dopo diversi giorni in coltura.

Isolamento e coltura di cellule ciliate cocleari primarie da topi neonatali

Impara la sezionatura ad alta velocità dell'osso temporale umano con microsega a doppia lama diamantata per l'otopatologia COVID-19. Questo metodo riduce i tempi di elaborazione da mesi a giorni, facilitando l'analisi immunohistochimica rapida.

Sezionamento dellosso temporale umano ad alta velocità per la valutazione della patologia dellorecchio medio associata a COVID-19 (Video) | JoVE Journal

Sezionamento dell'osso temporale umano ad alta velocità per la valutazione della patologia dell'orecchio medio associata a COVID-19

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