Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Immunology and Infection

流感病毒从感染细胞的染色质的核糖核蛋白复合物的亲和纯化

Published: June 3, 2012 doi: 10.3791/4028

Summary

流感病毒与宿主细胞染色体复制他们在协会的RNA基因组。在这里,我们提出了一个方法来净化完整的病毒核蛋白复合物,从感染细胞的染色质。纯化病毒复合物,可以分析,Western blot和引物蛋白质和RNA含量的扩展,分别。

Abstract

像所有的负链RNA病毒,流感病毒的基因组在病毒核蛋白复合物(vRNP),单链的基因组,其中encapsidated由核蛋白(NP),三聚聚合酶组成的复杂关联的形式打包的PA,PB1和PB2亚基。然而,在大多数RNA病毒,流感病毒感染细胞的细胞核中执行病毒RNA的合成。有趣的是,病毒mRNA的合成采用细胞mRNA前,为引物,并已提出,这个过程需要1对染色体的地方。也被病毒聚合酶和RNA聚合酶II的主机,以及NP和主机的核小体之间的相互作用特点1,2。

近日,代编码单链球菌标签的重组流感病毒的基因融合病毒聚合酶PB2亚基C-末端(rWSN铅,链球菌3)已成为EN描述。这些重组病毒PB2-含复合物,包括vRNPs从被感染的细胞,使净化。为了获得纯化vRNPs,被感染的细胞培养,vRNPs有亲和力,从来自这些细胞裂解纯化。然而,迄今用于裂解程序已根据上一步的洗涤剂溶解,尽管一般核酸的存在,往往只提取染色质结合材料低效。

我们的前期工作的建议,没有在传统的细胞裂解提取大量的核vRNPs的部分,因此,不能亲和纯化。为了提高提取效率,并从非绑定到染色质的核vRNPs分开染色绑定,我们适应了一步明智的亚流感病毒感染的细胞提取协议。简言之,此过程首先从细胞核分开,然后提取可溶性核蛋白(这里称为“核质”的部分)。其余的不溶性的核材料,然后消化Benzonase,非特异性的DNA / RNA核酸,其次是两个盐提取步骤:首先使用150 mM氯化钠(称为“ch150”),然后500毫米的NaCl(“ch500”( 图1) )。根据我们的观察,这些盐的提取步骤被选为500 mM氯化钠充分溶解超过核vRNPs 85%,但仍允许亲和力矩阵标签vRNPs具有约束力。

受感染的细胞的亚细胞分离后,它是可能亲和力净化PB2标签从每个人的分数vRNPs和分析其蛋白质和RNA的组成部分,分别用Western blot和引物延伸,。最近,我们利用这种方法,发现在感染后的后期染色质部分提取500 mM氯化钠(ch500)3点,vRNP出口复合物的形式。

Protocol

一个协议的原理流程图如图。 1和试剂表呈列如下。

1。感染(16 - 24小时)

  1. 出HeLa细胞在5 150毫米塑料杜尔贝科的改良Eagle培养基(DMEM培养基),高糖培养基,这样,他们将达到约80%汇合翌日(约5×10 8个细胞)细胞在培养皿中的种子。重要的是,这些细胞没有达到100%汇合。
  2. 第二天,稀释到的链球菌标签的流感病毒库存磷酸盐缓冲液(PBS)含0.3%牛血清白蛋白(BSA)的多重感染3。
  3. 从细胞生长培养基,用PBS洗一次,添加10毫升PBS含有病毒的细胞。在室温下1小时的孵育。
  4. 更换培养液高糖感染的媒介,继续孵化,在37°C。
“>的潜伏期长短取决于感染的研究阶段(见讨论)。

2。亚细胞分离(3小时)

  1. 一次用冷PBS洗涤细胞和暂停冷PBS用橡皮刮刀和转让到50毫升锥形管细胞。
  2. 颗粒细胞在表顶部的离心5分钟1000转,然后吸的PBS。
  3. 重悬细胞沉淀在10毫升冷蔗糖缓冲(10毫米肝素钠pH值7.9,氯化钾10毫米,2毫米镁醋酸(MgOAc),3毫米氯化钙 ,蔗糖340毫米,1毫米二硫苏糖醇(DTT),1%的蛋白酶抑制剂混合) 。暂停后,通过细胞200μl的吸管尖连接到一个10毫升的塑料血清移液管,破坏细胞团块。
  4. 在冰上孵育10分钟。轻轻颠倒定期悬浮细胞。
  5. Nonidet的P-40(NP-40)在高速的终浓度为15秒到0.5%和旋涡。立即在4°C离心10分钟在3500 XG表顶部的离心GE。
  6. 删除上清并存储在4°C。这是细胞质的一部分。颗粒要小,比原来的细胞沉淀白。所有的分数可以在4°C保存至少4小时
  7. 洗5毫升冷蔗糖缓冲液,再离心沉淀在步骤2.5和弃上清。
  8. 悬浮颗粒(含核)1.5毫升冷核质提取缓冲液(50 mM的肝素钠pH值7.9,150毫米KOAc,1.5毫米氯化镁 ,0.1%NP-40,数码地面1毫米,1%蛋白酶抑制剂组合)。
  9. 转移到冷藏,全玻璃4毫升Dounce匀浆紧身杵和20杆,均质细胞核。
    在同质化,避免起泡。阻力后,应增加约10招。相衬显微镜下可以确认有效的同质化。
  10. 均质核转移到1.5毫升离心管和孵化一个旋转的轮子上20分钟,在4°C。
  11. 在离心10分钟,在4°C离心​​16,000 xĞ。
  12. 删除上清并存储在4°C。这是核质的分数。
  13. 重悬浮颗粒在1.5毫升的消化缓冲液(50 mM的肝素钠pH值7.9,10 mM氯化钠, 氯化镁 1.5毫米,1毫米数码地面电视,1%的蛋白酶抑制剂的组合,100单位/毫升Benzonase(RNA分析,20 U / ml的酶代替无DNA酶I))预先加热至37℃,孵育10分钟,在37°C。
  14. 加入42微升5 M氯化钠(终浓度为150 mM氯化钠)和孵育20分钟,在4°C。
  15. 在离心10分钟,在4°C离心​​16,000 xĞ。
  16. 删除上清并存储在4°C。这是的ch150分数。
  17. 沉淀重悬在1.5毫升冷高盐缓冲液(50毫米肝素钠pH值7.9,500 mM氯化钠,MgCl 2的 1.5毫米,0.1%NP-40,1毫米数码地面电视,1%蛋白酶抑制剂组合)和孵育20分钟冰。
  18. 在16000离心x G </ EM>在在4°C离心10分钟。
  19. 删除上清并存储在4°C。这是的ch500分数。

3。链球菌标记净化(2小时)

  1. 加入300μl5 M氯化钠的细胞质部分(终浓度为150 mM氯化钠)。
  2. 等分包装链球菌Tactin琼脂糖珠每分数在15毫升锥形管100微升。
  3. 倒置管,珠链球菌洗涤缓冲液加入10卷(20毫米肝素钠pH值7.9,150 mM氯化钠(500 mM氯化钠为ch500样品),1毫米EDTA)混合,离心5分钟,在1000×Ğ在桌面离心。
  4. 弃上清,重复步骤3.3的两倍,然后悬浮在珠链球菌洗涤缓冲液等体积​​的颗粒。
  5. 加入200μL洗链球菌Tactin珠浆每个分数为nuceloplasmic 1.5毫升离心管,ch150,ch500分数和细胞质分数15毫升锥形管。
  6. 轮流管1H在4°Ç一个旋转的轮子上。
  7. 离心管1 4分钟1000×Ğ°C。弃上清。
  8. 每管加入1毫升的冷链球菌洗涤缓冲。转珠管(胞质分数)从15毫升到1.5毫升管。 4管1分钟°C间,在步骤3.7离心后洗净。重复此清洗步骤两次。
  9. 最后的洗涤步骤后,洗涤缓冲液中删除所有的痕迹,使用一个单位的枪头。加入100μL洗脱缓冲液(链球菌洗涤缓冲液2.5毫米desthiobiotin),轻轻混匀。
  10. 在冰上孵育15分钟。轻轻混珠偶尔轻敲管底部。
  11. 离心管1000×Ğ1分钟在4°C的离心。收集上清含洗脱链球菌标记vRNPs的的。

4。代表结果

分馏的效率是最好的分馏裂解免疫印迹使用antib分析的判断odies特定的亚细胞标记( 图2)。具体来说,成功的亚核分馏应该表现出的核质很少或没有细胞的RNA聚合酶II(聚合酶II),或可溶性核分数,最应提取150毫米氯化钠5。聚合酶II退化也再现观察流感病毒感染的细胞,而未受感染的细胞,与文献6一致。

vRNPs净化是最好的判断银或考马斯染色,在细胞质洗脱液所示。 3。在我们的经验,最链球菌PB2纯化的完全形成vRNP的一部分,即微溶于聚合酶捕获。这反映在高NP比:PA/PB1/PB2的比例由银或考马斯染色观察。较低的比率表明核糖核酸酶缓冲污染,几个无处不在的核糖核酸酶(如RNA酶A),以解离这样的方式被称为裂解病毒RNA吃了聚合酶的NP多聚体7。有趣的是,Benzonase单独处理,同时充分消化病毒RNA,似乎没有任何效果stochiometric比率vRNP蛋白质。虽然我们无法解释这种现象,我们观察到中断后与其他核糖核酸酶(数据未显示)表明Benzonase,消化vRNPs可能会留下一定的结构RNA的重要地区保持不变。 vRNPs细胞质和核质(无核酸的消化执行)净化后,8淡淡的,但离散带,分子量高,可以观察到银染,这对应于8个流感基因片段的预测分子量(见文献3 )。

如图从每个部分纯化vRNPs在9小时后感染的相对含量。 4。的vRNPs分布因在感染过程中,最强的在ch150分数积累在早期的时间点,在年底的时间点,增加积累,在胞核和胞浆。

图1
图1。亚细胞分离流程图。改编自文献。 3。

图2
图2。西方blot分析流感病毒感染的细胞,亚细胞组分。 9小时之前,亚细胞分离流感病毒株的WSN 10 9 HeLa细胞感染。等量的总蛋白被装在每个通道使用的抗体显示和分析。 RNA聚合酶II(聚合酶II)的检测,使用克隆8WG16,承认所有形式的C-端结构域(的hypophosphorylated带最为突出)。改编自文献。 3。

图3
图3。银染色分析纯化vRNPs的。 HeLa细胞感染rWSN(阴性对照)或9小时的rWSN-PB2-链球菌,链球菌净化从细胞质分数。星号表示带RNase消化后,这是不可见的。改编自文献。 3。

图4
图4。银污渍分析,从不同的细胞组分纯化vRNPs。 10 9 HeLa细胞感染rWSN PB2-链球菌或rWSN的9小时其次是亚细胞分离和纯化链球菌。从各部分洗脱液等量加载。改编自文献。 3。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

虽然最近已经有很多研究发现流感病毒感染的8所涉及的个别蛋白质或蜂窝网络,大多数这些相互作用的功能意义尚不清楚。鉴于流感病毒RNA的合成和复杂的生物物理和生物化学性质的核9基于染色质功能的绝对依赖,新技术将被要求澄清这些功能。我们在座的亚核分馏,加上亲和纯化的vRNPs,允许表征至关重要病毒RNA工厂这是以前无法进入的。

许多亚细胞分馏协议此前已在文学描述。我们观察到,这些传统的方法导致过早vRNPs的核泄漏,这种现象也聚合酶II 10。通过使用低C的预膨胀细胞潜伏期短弱洗涤剂,NP-40 oncentration,高效的细胞膜溶解发生无明显的核泄漏。有趣的是,执行我们使用A549和HEK293T细胞,而不是强vRNPs在两个细胞系的核泄漏导致HeLa细胞的亚细胞分离。 NP-40的浓度降低至约0.2%减少这个问题,但是,由于一些这些细胞株的变异,最优条件下,应根据经验来确定。另一个的可能altermative是MDCK细胞或Vero细胞,如使用非人类流感病毒的易感细胞株。

我们的盐提取协议不同于传统的染色质提取的程序,往往使用低盐分浓度和/或高EDTA的浓度。我们的协议分隔成两个具体的馏分,波尔II-high/histone-low的分数,其相互染色。然而,其他染色体的提取方法也可能与亲和纯化的VRN兼容PS。由于大多数染色提取程序集中DNA-蛋白质相互作用的蛋白质相互作用相比,新技术的需要紧紧地提取染色质结合的多蛋白复合物11。

在一般情况下,感染的长度应根据经验来确定病毒菌株和细胞株中的变化。 -PB2-链球菌菌株在3 MOI rWSN,我们已经完成了亚细胞分离,在3至10小时后感染不同的时间点。在我们的经验,不到3Ĥ感染产生有益的Western blot分析纯化vRNPs太少,而感染时间超过3小时,在强大的细胞病变效应的结果和随后的分数混合。

隔离完整,紧密的染色质结合的病毒复合物的能力开辟了几种可能性。虽然我们利用重组病毒表达链球菌的标签PB2,其他的亲和标签也可以被使用,以及TRADitional针对其他病毒蛋白免疫沉淀。此外,纯化复合物而被限制其蛋白质和RNA元件特性我们分析vRNPs的,也可以被用来进行体外合成实验的功能。最后,将通过亚核分馏粗功能物种vRNPs分离,也可以让几个最近描述高效的病毒RNA合成12,13所需的病毒蛋白的翻译后的修改,进一步仔细研究。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

没有利益冲突的声明。

Acknowledgments

作者要感谢为rWSN PB2-链球菌病毒纳达Naffakh和玛丽 - 安妮Rameix Welti(巴斯德研究所)。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
DMEM-high glucose GIBCO, by Life Technologies 11965-092
BSA Sigma-Aldrich A9418
Protease inhibitor Mix G SERVA Electrophoresis 39101
Benzonase Nuclease Novagen, EMD Millipore 71206 25 U/μl
DNase I, RNase-free Thermo Fisher Scientific, Inc. EN0523 50 U/μl
Dounce homogenizer Wheaton 432-1271 Use type "B" pestle
Strep-Tactin Sepharose IBA GmbH 2-1201-025 50% suspension column format can also be used
Desthiobiotin IBA GmbH 2-1000-002

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Engelhardt, O. G., Smith, M., Fodor, E. Association of the influenza A virus RNA-dependent RNA polymerase with cellular RNA polymerase II. J. Virol. 79, 5812-5812 (2005).
  2. Garcia-Robles, I., Akarsu, H., Müller, C. W., Ruigrok, R., Baudin, F. Interaction of influenza virus proteins with nucleosomes. Virology. 332, 329 (2005).
  3. Chase, G. P., Rameix-Welti, M. A., Zvirbilene, A., Zvirblis, G., Götz, V., Wolff, T., Naffakh, N., Schwemmle, M. Influenza virus ribonucleoprotein complexes gain preferential access to cellular export machinery through chromatin targeting. PLoS Pathogens. 7, e1002187 (2011).
  4. Kimura, H., Tao, Y., Roeder, R. G., Cook, P. R. Quantitation of RNA polymerase II and its transcription factors in an HeLa cell: little soluble holoenzyme but significant amounts of polymerases attached to the nuclear substructure. Mol. Cell. Biol. 19, 5383-5383 (1999).
  5. Henikoff, S., Henikoff, J. G., Sakai, A., Loeb, G. B., Ahmad, K. Genome-wide profiling of salt fractions maps physical properties of chromatin. Genome Res. 19, 460 (2009).
  6. Rodriguez, A., Perez-Gonzalez, A., Nieto, A. Influenza virus infection causes specific degradation of the largest subunit of cellular RNA polymerase II. J. Virol. 81, 5315-5315 (2007).
  7. Ye, Z., Liu, T., Offringa, D. P., McInnis, J., Levandowski, R. A. Association of influenza virus matrix protein with ribonucleoproteins. J. Virol. 73, 7467-7467 (1999).
  8. Watanabe, T., Watanabe, S., Kawaoka, T., Y, Cellular networks involved in the influenza virus life cycle. Cell Host Microbe. 7, 427 (2010).
  9. Engelhardt, O. G., Fodor, E. Functional association between viral and cellular transcription during influenza virus infection. Rev. Med. Virol. 16, 329-345 (2006).
  10. Schwartz, L. B., Sklar, V. E., Jaehning, J. A., Weinmann, R., Roeder, R. G. Isolation and partial characterization of the multiple forms of deoxyribonucleic acid-dependent ribonucleic acid polymerase in the mouse myeloma, MOPC 315. J. Biol. Chem. 249, 5889 (1974).
  11. Lambert, J. P., Baetz, K., Figeys, D. Of proteins and DNA--proteomic role in the field of chromatin research. Mol. Biosyst. 6, 30 (2010).
  12. Wu, C. Y., Jeng, K. S., Lai, M. M. The SUMOylation of matrix protein M1 modulates the assembly and morphogenesis of influenza A virus. J. Virol. 85, 6618 (2011).
  13. Liao, T. L., Wu, C. Y., Su, W. C., Jeng, K. S., Lai, M. M. Ubiquitination and deubiquitination of NP protein regulates influenza A virus RNA replication. EMBO J. 29, 3879 (2010).

Tags

病毒学,64期,分子生物学,A型流感病毒,亲和纯化,亚细胞分离,染色,vRNP复合物,聚合酶
流感病毒从感染细胞的染色质的核糖核蛋白复合物的亲和纯化
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Chase, G. P., Schwemmle, M. Affinity More

Chase, G. P., Schwemmle, M. Affinity Purification of Influenza Virus Ribonucleoprotein Complexes from the Chromatin of Infected Cells. J. Vis. Exp. (64), e4028, doi:10.3791/4028 (2012).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter