Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

التصوير بالموجات فوق الصوتية الموجهة داخل القلب حقن لتطوير نموذج الفأر من الثدي الانبثاث سرطان الدماغ تلاه الطولية التصوير بالرنين المغناطيسي

Published: March 6, 2014 doi: 10.3791/51146

Summary

يتم تأسيس سرطان الدماغ الانبثاث نموذج الفأر الثدي مع الموجات فوق الصوتية الموجهة التصوير داخل القلب حقن الخلايا MDA-MB231/Br-GFP. وقد تم رصد تطور الانبثاث داخل الجمجمة متعددة البؤر طوليا باستخدام عالية الدقة 9.4 T التصوير بالرنين المغناطيسي.

Abstract

ورم خبيث في الدماغ سرطان الثدي، والتي تحدث في 30٪ من مرضى سرطان الثدي في المرحلة الرابعة، ويرتبط مع ارتفاع معدل الوفيات. بقاء وسيطة 6 أشهر فقط. فمن الأهمية بمكان أن يكون نماذج حيوانية مناسبة لمحاكاة انتشار الدورة الدموية للخلايا المنتشر في السيناريو السريرية. هنا، الذي نعرضه استخدام التصوير بالموجات فوق الصوتية صغيرة الحيوانية لتوجيه حقنة دقيقة من الدماغ خلايا سرطان الثدي الاستوائية إلى البطين الأيسر من الفئران عارية athymic. يستخدم التصوير بالرنين المغناطيسي لتقييم طولية داخل الجمجمة وبدء نمو الانبثاث الدماغ. الحقن داخل القلب بالموجات فوق الصوتية الموجهة يضمن ليس فقط حقنة دقيقة وبموجب هذا أعلى معدل ناجحة ولكن أيضا انخفضت بشكل ملحوظ معدل الوفيات، بالمقارنة مع دينا الإجراء اليدوي السابق. في الجسم الحي التصوير بالرنين المغناطيسي عالية الدقة يسمح التصور من hyperintense آفات متعددة البؤر، صغيرة مثل 310 ميكرون في قطر على تي 2 الصور المرجحة في 3 أسابيع حقن آخر. فولو فوتبال شيث متابعة التصوير بالرنين المغناطيسي يكشف عن نمو الورم داخل القحف وزيادة عدد الانبثاث التي توزع في جميع أنحاء الدماغ كله.

Introduction

ورم خبيث في الدماغ داخل الجمجمة هو الورم الخبيث الأكثر شيوعا لدى البالغين. والتكهن سيئة للغاية، مع بقاء متوسط ​​4-6 أشهر حتى مع العلاج المكثف. سرطان الثدي هو واحد من أكثر أنواع السرطان الأولية الرئيسية الثلاثة مع مراضة عالية من ورم خبيث في الدماغ 1-3. عدة أسطر سرطان الثدي الدماغ مدار قادرون على تطوير الانبثاث الدماغ بعد الحقن داخل القلب أو intracarotid 4. الحقن المباشر للخلايا السرطانية في البطين الأيسر يمكن تجاوز السرير الشعرية الرئة وبالتالي زيادة الإصابة تشكيل الانبثاث الدماغ مع التقليل الانبثاث الحشوية. خط MDA-MB231Br هي واحدة من الأكثر استخداما على نطاق واسع خطوط سرطان الثدي البشرية لتطوير ورم خبيث في الدماغ في نماذج القوارض 5،6.

مثل العديد من الدراسات الأخرى 4،7، وقد أجرينا إجراء الحقن داخل القلب دليل في دراساتنا السابقة. ومع ذلك، تم الحصول على معدل نجاح 50٪ فقط مع دليلتوفي وحقن جزء صغير من الفئران من الإجراءات الغازية تتكرر إذا فشلت التجارب السابقة. هنا، الذي نعرضه استخدام إجراء موجهة التصوير لتأمين حقن خلايا سرطان الثدي التي تسعى الدماغ إلى البطين الأيسر من الفئران athymic. يتم تطبيق طولية عالية الدقة التصوير بالرنين المغناطيسي لمتابعة التنمية داخل القحف الانبثاث الدماغ.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

تمت الموافقة على جميع الإجراءات الحيوان من قبل اللجنة المؤسسية رعاية الحيوان واستخدام جامعة تكساس جنوب غرب المركز الطبي.

1. إعداد خلايا MDA-MB231/Br-GFP

  1. استرداد والثقافة الخلايا MDA-MB231/Br-GFP (شريطة تفضلت الدكاترة. بالمييري وSteeg، NCI) في DMEM المتوسط ​​تحتوي على 10٪ FBS، 1٪ و 1٪ الجلوتامين البنسلين / الستربتوميسين.
  2. مراقبة حالة الخلايا ولون متوسطة، واستبدال المتوسطة كل 2-3 أيام.
  3. يعرض للتريبسين وجمع الخلايا عندما يتم التوصل إلى 80٪ التقاء على النحو المبين في الخطوات 1.3.1-1.3.5:
    1. إزالة المتوسطة القديمة تماما، وإضافة 5 مل PBS (1X) لغسل الخلايا بلطف. إزالة برنامج تلفزيوني من الطبق.
    2. إضافة 1.5 مل التربسين في صحن؛ إمالة طبق بلطف لضمان تغطية جميع الخلايا بواسطة التربسين. وضع الطبق مرة أخرى إلى الخلية الحاضنة وابقائه عند 37 درجة مئوية لمدة 1 دقيقة.
    3. ياخذ الطبق من الحاضنة ومراقبةالخلايا تحت المجهر الضوئي لضمان فصل الخلايا من الطبق.
    4. إضافة 3 مل المتوسطة لوقف تأثير التربسين. جمع خليط الخلية في أنبوب الطرد المركزي. أجهزة الطرد المركزي الخليط في 2،000 دورة في الدقيقة لمدة 5 دقائق.
    5. إزالة بعناية والمتوسطة resuspend الخلايا في 5 مل مصل المتوسطة مجانا حتى متجانسة.
  4. عد عدد مناسب من الخلايا و resuspend لهم في مصل المتوسطة DMEM الحرة مع تركيز النهائي من 1.75 × 10 5 خلايا في حجم 100 ميكرولتر.
    1. تأخذ 50 ميكرولتر خليط الخلايا وإضافة 50 ميكرولتر التريبان الأزرق. بعد الاختلاط، ويستغرق 10 ميكرولتر خليط وبعناية إضافة إلى الشريحة العد الخلية. استخدام عينات متعددة لضمان دقة تقدير عدد الخلايا.
    2. عصا في الشريحة العد الخلية، نهاية واحدة في وقت والعداد الخلية يبدأ العد تلقائيا. تأخذ متوسط ​​جميع نتائج العد وحساب عدد الخلايا الإجمالي.
    3. الطرد المركزي الخلايا مرة أخرى و resuspend لهم فيحجم المناسبة من المصل المتوسطة حرة أن يؤدي إلى تركيز النهائي من 1.75 × 10 5 cells/100 ميكرولتر حجم.
  5. الخلايا مكان على الجليد قبل الحقن داخل القلب.

2. التصوير بالموجات فوق الصوتية الموجهة داخل القلب حقن

  1. استخدام الفئران عارية الإناث (BALB / ج نو / نو) بين 6-8 أسابيع من العمر.
  2. تسجيل في نظام التصوير. تهيئة محول 704 (40 ميغاهيرتز).
  3. بدء دراسة جديدة وملء المعلومات.
  4. تخدير (3٪ isoflurane/100٪ O 2 في غرفة الاستقراء) والمحافظة على الحيوانات مع isoflurane و(2٪) في 100٪ O 2 (1 دسم 3 / دقيقة) خلال الإجراء بأكمله عبر مخروط الأنف. تأكيد التخدير عندما يتم احترام أي منعكس الانسحاب مع قرصة أخمص قدميه.
  5. ضبط درجة الحرارة من الجدول التصوير إلى 37 درجة مئوية. الشريط الماوس تخدير إلى طاولة التصوير ساخنة في موقف ضعيف.
  6. الحفاظ على هلام الموجات فوق الصوتية عند 37 درجة مئوية قبل ايمالشيخوخة. تطبيق الجل على الصدر من الفأرة.
  7. تركيب محول في حامل. خفض محول حتى يتم الوصول إلى عمق التصوير المطلوب. نقل المرحلة حتى يتم التعرف على البطين الأيسر مع الشريان الأبهر الصاعد باعتبارها معلما (الشكل 1A). قفل المرحلة التي تصور رؤية واضحة من البطين الأيسر.
  8. رسم 100 ميكرولتر من خليط الخلية إلى حقنة 1 مل مع إبرة G 22. وضع وإصلاح حقنة حقنة على جبل.
  9. نقل حقنة قدما نحو الصدر الماوس وتحريكه بعناية جنبا إلى جنب حتى غيض الإبرة في مجال التصوير نظر (قبل دخول الماوس).
  10. ضبط ارتفاع إبرة وزاوية لهدف أسفل البطين الأيسر.
  11. اختراق إبرة حقنة في الفضاء إينتيركواستال على وجه السرعة من خلال طبقات الجلد والعضلات في البطين الأيسر بتوجيه من التصوير بالموجات فوق الصوتية.
    مؤشرا الإدراج الناجح لإبرة في ventri اليساركلي هو ارتجاع الدم الشرياني الطازجة (لونه وردي وعلى النقيض من الظلام الدم الوريدي الحمراء) في حقنة
  12. حقن خليط الخلية ببطء (الشكل 1B).
  13. عند الانتهاء، سحب الإبرة، وترفع من محول، وتنظيف هلام الموجات فوق الصوتية مع شاش مبللة وإزالة الشريط.
  14. إعداد قفص نظيفة مع وسادة مسخن.
  15. وضع الحيوان على وسادة ومراقبة الحيوان حتى الشفاء التام.
  16. مراقبة سلوك الحيوان كل 24 ساعة لمدة يومين.
  17. ويتم رصد الشروط العامة وعلامات عصبية من مضاعفات في فئران التجارب بشكل روتيني.

3. رصد التصوير بالرنين المغناطيسي التنمية ورم داخل القحف

  1. استخدام 9.4 تسلا المغناطيس لرصد التنمية داخل القحف الانبثاث الدماغ.
  2. بدء التصوير بالرنين المغناطيسي بعد أسبوعين الورم زرع وكرر مرة واحدة في الأسبوع لمدة تصل إلى ثلاثة أسابيع.
  3. رزين الحيوانات مع 3٪ isoflurane والمحافظة عليها وتحت الجينالتخدير راؤول (1.5٪ isoflurane و).
  4. رصد والحفاظ على درجة حرارة جسم الحيوان والتنفس المستمر في كافة مراحل التجربة.
  5. قرار ملتسلس عالية (14 شرائح مع 1 مم، وجود فجوة) T 1 - وT 2 المرجحة الصور الاكليلية، الذي يغطي المنطقة من الفص الجبهي إلى الحفرة الخلفية، يتم الحصول مع المعلمات التالية: T-1 المرجحة الصور: تدور صدى شريحة متعددة (SEMS)، TR / TE = 400 ميللي ثانية msec/20، مصفوفة: 256 × 256، فوف 20 × 20 مم، في تحليل المستوى: 78 × 78 ميكرون 2. T 2 الصور المرجحة: تدور بسرعة صدى شريحة متعددة (FSEMS) متواليات، TR / TE = 2500 ميللي ثانية msec/48، 8 قطارات صدى، مصفوفة: 256 × 256، فوف 20 × 20 مم، في تحليل المستوى: 78 × 78 ميكرون 28،9.
    تظهر الآفات السرطانية أكثر إشراقا من أنسجة المخ العادي على تي 2 الصور المرجحة.
  6. يتم تحديد حجم الورم على T-2 الصور الوزني بنسبة تحدد enhan يدوياالوراثة جزء من كتلة على كل صورة باستخدام برامج MATLAB كتبه لنا 8.
    نظرا معظم الورم أقطار أصغر من سماكة شريحة (1 مم)، يتم تقديم حجم الورم كما هو الحال في منطقة الطائرة بدلا من وحدة التخزين.

4. H & E تلطيخ تأكيد الانبثاث

  1. التضحية الفئران مباشرة بعد مسح MR الماضي، تشريح أدمغة الحاملة للورم وتضمين ذلك في أكتوبر المتوسطة والمجمدة في -80 درجة مئوية.
  2. القسم سلسلة من 10 الدماغ الاكليلية ميكرون سميكة العينات مع ناظم البرد.
  3. أداء H & E تلطيخ على أقسام الدماغ.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

مع قرار مكانية عالية من التصوير بالرنين المغناطيسي (78 ميكرومتر في القرار الطائرة)، ويمكن تحديد الآفات hyperintense صغيرة مثل 310 ميكرون في القطر (الشكل 2). منذ الانبثاث في هذه الدراسة صغيرة جدا وتطوير نخر وذمة هو الحد الأدنى، الآفة hyperintense على تي 2 الصور المرجحة ممثلة حقا كتلة الورم.

دراسات التصوير بالرنين المغناطيسي تسمح طولية في تقييم موسع المجراة من نمو الورم. كما هو مبين في الشكل (3)، وكان التصوير بالرنين المغناطيسي عالية الدقة قادرة على الكشف عن العديد من الآفات الصغيرة بعد 3 أسابيع حقن داخل القلب (الشكل 3A). على الأسبوع 4، أصبح الآفات التي شوهدت في المسح السابق عن أكبر؛ بدا أكثر آفات جديدة على تي 2 الصور المرجحة (الشكل 3B).

كشفت H & E تلطيخ إما منتشر أو نوع العنقودية الآفات النقيلي (الشكل 4).وغالبا ما ينظر السفن الموسع حول الورم، مشيرا إلى nonsprouting الأوعية الدموية (الشكل 4D).

الشكل 1
الشكل 1. الموجات فوق الصوتية الموجهة الحقن داخل القلب. (A) تحديد الأبهر الصاعد (السهم)، والمعلم من البطين الأيسر من القلب الماوس. (ب) إبرة (السهم) الإدراج في البطين الأيسر لحقن الخلايا السرطانية. اضغط هنا لمشاهدة صورة بشكل اكبر .

الرقم 2 الشكل 2. عالية الدقة T 2 المرجحة الصور من سرطان الثدي الانبثاث الدماغ. أربعة عشر شرائح متتالية التصوير بالرنين المغناطيسي من مخ الفأر ممثل، حصلت بعد أربعة أسابيع حقن داخل القلب، وكشفت بوضوح الانبثاث متعددة البؤر توزيع من خلال دماغ الفأر كله، من البصلة الشمية إلى جسري والنخاع. اضغط هنا لمشاهدة صورة بشكل اكبر .

الرقم 3
الرقم 3. التصوير بالرنين المغناطيسي الطولي للتطوير الانبثاث الدماغ. A. ستة أقسام متتالية التصوير بالرنين المغناطيسي الاكليلية في الأسبوع 3 تحديد آفات متعددة مع فرط الكثافة في الصور T 2 المرجحة. B. زيادة عدد لظهرت esions على الصور في الأسبوع 4، وأصبحت تلك الآفات نشاهد في الأسبوع 3 أكبر. اضغط هنا لمشاهدة صورة بشكل اكبر .

الرقم 4
الشكل 4. وقد لوحظت الآفات المجهرية على H & E تلطيخ. A. يصور A جبل بأكمله القسم الاكليلية آفات متعددة. BD. وأظهرت لقطات التكبير العالي إما منتشر أو نوع العنقودية الآفات (B و C). وشوهدت السفن الموسع حول الورم. اضغط هنا لمشاهدة صورة بشكل اكبر .

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

في هذه الدراسة، لقد أثبتنا أن الموجات فوق الصوتية الموجهة التصوير حقن البطين الأيسر يضمن دقة بحيث لوحظ كل حيوان في هذه الدراسة وضعت الانبثاث الدماغ وليس الموت الحيوان. جمال حقن موجهة الصورة هو أن مسار اختراق الإبرة من الجلد وأخيرا في البطين الأيسر يمكن رصدها وتعديلها تحت الصورة، والذي يختلف من الإجراء اليدوي تتطلب المعالم التشريحية صارمة لمتابعة.

وتستند التفاهمات الحالية للتنمية داخل القحف الانبثاث الدماغ إلى حد كبير على دراسات نسيجية على نماذج حيوانية (4،10). ومع ذلك، والدراسات النسيجية تتطلب عادة عدد كبير من الفئران التي قتلت في نقاط زمنية مختلفة بعد زرع الورم. الأهم من ذلك، المعلومات حول التنمية الزمنية في الآفات الفردية يفتقر من الدراسات النسيجية.

في الجسم الحي التصوير وعود أكبر همنذ fficiency كل حيوان بمثابة ايقاعه ونقاط زمنية متعددة يمكن فحص بالتتابع 7،11. T 2 المرجحة صور عالية الدقة تمكن من كشف متعددة البؤر بدء الورم في مرحلة مبكرة جدا (الآفات مع قطر صغيرة مثل 310 ميكرون مرئية). طولية التصوير بالرنين المغناطيسي يسمح الانبثاث الدماغ الفردية التي يتعين بحثها مع مرور الوقت. علاوة على ذلك، سوف موسع في الجسم الحي التصوير بالرنين المغناطيسي تكون ذات قيمة خاصة في دراسة طولية من الاستجابة العلاجية، مثل الإشعاع الدماغ كله.

تشكيل الانبثاث الدماغ متعدد البؤر هي خصائص النموذج MDA-MB231Br. إلى جانب خط الخلية MDA-MB231/Br-GFP أظهرنا في هذه الدراسة، واستنساخ MDA-MB231/Br الوالدين وMDA-MB231/Br-luc أيضا يحمل الآفات النقيلي مماثلة. في المقابل، وقد ثبت أن العديد من خطوط التماس الدماغ الأخرى مثل MCF-7BR و4T1 لتطوير ورم خبيث الانفرادي بعد الحقن داخل القلب 12. كل منالنماذج، يعكس نظرائهم السريرية، هي نماذج حيوانية مفيدة من ورم خبيث في الدماغ. ومع ذلك، بالإضافة إلى الانبثاث الدماغ، الانبثاث الحشوية، مثل الرئة والعظام الانبثاث كثيرا ما لوحظ في هذا النموذج. سوف إنشاء نماذج حيوانية أن تطوير الانبثاث الدماغ حصرا تكون حاسمة، على وجه الخصوص، لتقييم الاستجابة للعلاج.

في الختام، لقد أثبتنا فائدة الموجهة التصوير الحقن داخل القلب لإقامة الدماغ الانبثاث نموذج الفأر وعالية الدقة التصوير بالرنين المغناطيسي لتقييم تطور داخل القحف الانبثاث متعددة البؤر في نموذج الفأر.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

أعلن عن أي تضارب في المصالح.

Acknowledgments

نحن ممتنون لالدكاترة. ديان بالمييري وباتريشيا Steeg من لجنة التحقيق الوطنية لتزويدنا الخلايا MDA-MB231Br. نشكر الدكتور رالف ماسون، السيد جيسون Reneau والسيدة رامونا لوبيز لتقديم الدعم التقني والزمالة. وأيد هذا العمل في جزء من وزارة الدفاع جوائز IDEA W81XWH-08-1-0583 وW81XWH-12-1-0317. أجريت تجارب التصوير بالرنين المغناطيسي في مركز متقدم التصوير بحوث، منشأة NIH BTRP # P41-RR02584، وأجريت الموجهة بالأمواج فوق الصوتية حقن داخل القلب مع VisualSonics VEVO 770 تحت 1S10RR02564801.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
DMEM HyClone SH30022.01  
Trypsin Mediatech 25-051-C1  
Automatic cell counter BioRad TC10  
Isoflurane Baxter International Inc. 1001936060  
VisualSonics Vevo 770 High-Resolution Imaging System  Visual Sonics Inc.  
9.4 T horizontal bore magnet with a Varian INOVA Unity system  Agilent  
O.C.T Compound Sakura Finetek USA 4583  

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Schouten, L. J., et al. Incidence of brain metastases in a cohort of patients with carcinoma of the breast, colon, kidney, and lung and melanoma. Cancer. 94, 2698-2705 (2002).
  2. Lin, N. U., et al. CNS metastases in breast cancer. J. Clin. Oncol. 22, 3608-3617 (2004).
  3. Eichler, A. F., et al. The biology of brain metastases-translation to new therapies. Nat. Rev. Clin. Oncol. , (2011).
  4. Lockman, P. R., et al. Heterogeneous blood-tumor barrier permeability determines drug efficacy in experimental brain metastases of breast cancer. Clin. Cancer Res. 16, 5664-5678 (2010).
  5. Yoneda, T., et al. A bone-seeking clone exhibits different biological properties from the MDA-MB-231 parental human breast cancer cells and a brain-seeking clone in vivo and in. 16, 1486-1495 (2001).
  6. Palmieri, D., et al. Her-2 overexpression increases the metastatic outgrowth of breast cancer cells in the brain. Cancer Res. 67, 4190-4198 (2007).
  7. Percy, D. B., et al. In vivo characterization of changing blood-tumor barrier permeability in a mouse model of breast cancer metastasis: a complementary magnetic resonance imaging approach. Invest. Radiol. 46, 718-725 (2011).
  8. Zhou, H., et al. Longitudinal MRI evaluation of intracranial development and vascular characteristics of breast cancer brain metastases in a mouse model. PLoS One. 8, (2013).
  9. Zhou, H., et al. Dynamic near-infrared optical imaging of 2-deoxyglucose uptake by intracranial glioma of athymic mice. PLoS One. 4, (2009).
  10. Zhang, R. D., et al. Differential permeability of the blood-brain barrier in experimental brain metastases produced by human neoplasms implanted into nude mice. Am. J. Pathol. 141, 1115-1124 (1992).
  11. Mason, R. P., et al. Tumor oximetry: comparison of 19F MR EPI and electrodes. Adv. Exp. Med. Biol. 530, 19-27 (2003).
  12. Gril, B., et al. Pazopanib reveals a role for tumor cell B-Raf in the prevention of HER2+ breast cancer brain metastasis. Clin. Cancer Res. 17, 142-153 (2010).

Tags

الطب، العدد 85، وسرطان الثدي ورم خبيث في الدماغ، والحقن داخل القلب، والتصوير بالموجات فوق الصوتية، التصوير بالرنين المغناطيسي، الخلايا MDA-MB231/Br-GFP
التصوير بالموجات فوق الصوتية الموجهة داخل القلب حقن لتطوير نموذج الفأر من الثدي الانبثاث سرطان الدماغ تلاه الطولية التصوير بالرنين المغناطيسي
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Zhou, H., Zhao, D. UltrasoundMore

Zhou, H., Zhao, D. Ultrasound Imaging-guided Intracardiac Injection to Develop a Mouse Model of Breast Cancer Brain Metastases Followed by Longitudinal MRI. J. Vis. Exp. (85), e51146, doi:10.3791/51146 (2014).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter