Introduction
유전자 치료 응용 것이 바이러스 단백질의 발현, 유전자 자체 또는 수신 바이러스 단백질에 의한 세포 독성 및 면역 부작용을 방지하기 위해 매우 중요하다. 아데노 바이러스 벡터 (ADV)가 널리 도입 유전자 발현 1,2의 영향을 조사하기 위해 다양한 세포에 외래 DNA를 도입하기 위해 사용된다. ADV의 가장 진보 된 버전은 모든 바이러스 코딩 서열 3,4-함으로써 낮은 면역 원성 및 저독성 5-8 결합 35킬로바이트까지 패키징을 제공하는 능력이 결여 된 고용량 아데노 바이러스 벡터 (HCAdV)으로 표시된다. 때문에 높은 포장 용량 그들은 하나의 벡터 용량을 사용하여 크거나 여러 유전자의 전달을 할 수 있습니다. 따라서, 그들은 연구 지역 사회를위한 유용한 도구를 나타냅니다.
대조적으로, 제일 - 또는 VEC를 2 세대 ADV 쉽게 상업용 키트를 사용하여 제조 할 수있다 초기 유전자 E1 및 / 또는 E3 결여 할토르 HCAdV의 게놈 구조와 바이러스 생산은 더 복잡하다. HCAdV 게놈의 건설을위한 시스템은 모든 바이러스 코딩 시퀀스 및 셔틀 플라스미드 pHM5 9-12없는 HCAdV 게놈을 운반하는 플라스미드 pAdFTC을 기반으로합니다. 최대 14 킬로베이스 (KB)의 관심의 모든 유전자가 여러 복제 사이트가 인식에 의해 형벌되는 셔틀 벡터 pHM5에 복제 할 수 있습니다 / 원점 복귀 엔도 뉴 클레아의 사이트를 절단 SceI 제한 I 및 I-CEU I.를 PI- 따라서, 관심의 유전자를 클로닝 연속 PI- 및 I-SceI 제한 I- CEU I 의해 플라스미드에 함유 pAdFTC HCAdV 게놈에 존재하는 동일한 제한 부위에 관한 후속 삽입 소화 해제 될 수있다. pAdFTC에 PI- SceI 제한 I 및 I- CEU 난 부위를 절단 사이에 유전자 삽입 부위는 스터 DNA 및 5 '및 3'반전으로 말단 반복 게놈 패키징에 필요한 비 암호화하는 아데노 바이러스 서열 (LTR에)와 측면으로 접하고단부와 하류 5'ITR 패키징 신호 모두에서. 추가 투표자 DNA는 바이러스 생산시 효율적인 포장을 보장하기 위해 27-36킬로바이트까지 최종 HCAdV 게놈의 최적 크기를 제공합니다. pAdFTC이 (삽입 된 유전자의 크기에 따라 다름)까지 45킬로바이트와 큰 플라스미드와 비교적 긴 DNA 인식 사이트와 유도 엔도 뉴 클레아의 사용을하기 때문에 결합 강한 DNA, 몇 가지 정리 단계 pHM5에서 유전자의 전송시 필요한 전시 pAdFTC에. 전단력을 피하고 취급에주의하는 것이 좋습니다.
HCAdV 게놈은 LTR에 5'ITR의 상류에 직접적으로 위치되고 3'ITR (12)의 하류 없음 I 제한 효소 인식 부위에 의해 측면된다. 따라서, HCAdV 없음 내가 HCAdV 생산 세포주에 바이러스 게놈의 후속 형질 다이제스트에 의해 방출 될 수있다. 참고 제한 효소의 사용하지 I REL위한플라스미드 pAdFTC에서 바이러스 게놈의 용이성 삽입 유전자가 없음 I DNA 인식 부위의 결여 된 것을 의미한다. HEK293 세포 기반 생산 세포 (116 세포)를 안정적으로 Cre 호텔 재조합 효소를 표현한다. 바이러스 증폭 셀 (116)은 트랜스 -3,4-의 복제 및 패키징을 위해 필요한 모든 ADV 유전자를 제공하는 헬퍼 바이러스 (HV)와 공동 감염. HV 116 4 세포에서 발현 Cre 호텔 재조합 바이러스에 의해 증폭되는 동안 제거 floxed 포장 신호와 제 세대 ADV이다. 이것은 본래 패키징 신호를 포함 주로 HCAdV 게놈 encapsidated되도록.
HCAdV의 사전 증폭 조직 배양 접시의 표면에 성장 (116) 세포에서 시리얼 계대 단계를 수행하여 수행됩니다. 각각의 통과 후 바이러스 입자는 세 개의 연속 동결 - 해동 단계를 수행하여 감염된 세포에서 방출된다. 세포의 수가 증가는 모든 통로로 감염된선행 통로에서 세포 용 해물의 1/3. 마지막 사전 증폭 단계는 대규모 증폭 스피너 플라스크에 정지에서 재배 생산 세포를 감염하는 데 사용됩니다에서 마지막으로 해물. 비리 온은 4,12 구배 염화 세슘 밀도에서 초 원심 분리를 수행하여 현탁 세포로부터 정제된다. 이 절차를 빈 입자와 완벽하게 조립 입자는 두 가지 대역으로 분리된다. 상기 HCAdV을 집중하는 제 2 비 - 점진적으로 초 원심 분리 단계가 수행되는 입자를 포함한다. 이어서 HCAdV 함유 얻어진 밴드 수거하고 생리 완충액에 대해 투석한다. 최종 제제는 벡터의 절대 바이러스 입자 감염성 입자 및 HV 오염 수준의 숫자에 대한 특징이다. 절대 바이러스 입자는 바이러스 입자를 용균 및 260 nm에서의 흡광도를 측정함으로써 또는 정량적 실시간 PCR (qPCR에) (12)을 수행하여 결정될 수있다. 끝까지 마음의 감염ified하게 바이러스 입자는 감염된 세포에서 3 시간의 감염 후 내에 존재 qPCR의 측정 HCAdV 게놈에 의해 결정될 수있다.
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Protocol
플라스미드 pAdFTC 기반으로 재조합 HCAdV 게놈 1. 건설
참고 : 모든 플라스미드는 이전에 11, 12를 설명하고 요청에 따라 사용할 수있다. 클로닝 과정은도 1에 개략적으로 도시되어있다.
- pHM5-GOI를 생성하기 위해, 선택의 클로닝 전략을 사용하여, 셔틀 플라스미드 pHM5으로 프로모터 및 폴리아 데 닐화 신호 (PA)를 포함하여 관심 유전자 (GOI)를 복제.
주 : pAdFTC가 비교적 큰 플라스미드 때문에, 고전 플라스미드 제조 프로토콜 실리카 막에 기반 상업 플라스미드 정제 키트를 사용하여 플라스미드 DNA의의 전단은 피해야한다. I-CEU I 및 PI -Sce 나는 강하게 DNA에 결합하여 소화 DNA의 전기 영동 이동성을 변경합니다. 따라서, 페놀 - 클로로포름 추출 및 침전을 EtOH (130 단계), 아가 로스 겔 전기 영동 전에 요구된다. - PHM의 다이제스트 20 μg의100 μL의 총 부피 37 ℃에서 3 시간 동안 I-CeuI (10 U) 5-GOI과 pAdFTC 10 μg의은 (~ 2.8 KB + GOI ORF의 순서와 ~ 31킬로바이트, 각각을) 플라스미드를 선형화합니다.
- 에탄올 (EtOH 중) (13)에 의해 침전을 페놀 - 클로로포름 추출을 이용하여 선형화 된 플라스미드를 정제 하였다.
- 클로로포름 : 100 μL의 페놀 추가 이소 아밀 알콜 및 튜브를 수회 반전시켜 부드럽게 혼합한다. 15,000 X g에서 2 분 동안 원심 분리기.
- 새로운 튜브에 상청을 전송 초산 나트륨 20 μL (PH 5, 3 M) 및 얼음의 차가운 EtOH로 400 μL (99.8 %)를 첨가하고, 현탁액을 격렬하게 혼합한다. 15,000 X g에서 10 분 동안 원심 분리기.
- , 상층 액을 제거 15,000 X g에서 2 분 동안 300 70 %의 EtOH μL 원심 분리기를 추가합니다. 그런 다음 상층 액과 공기 건조 DNA 펠렛을 제거합니다. DH 2 O의 10 ~ 20 μL에 펠렛을 해산 이 솔루션에서 DNA를 얻기 위해 더 열심히 할 것 같은, 너무 오래 건조하지 DNA 펠렛을 수행합니다.
- 다이제스트 I-CEU I는 pHM5-GOI 단계 1.3 pAdFTC 플라스미드) -digested 50 ㎕의 총 부피에서 37 ℃에서 제한 효소 PI -Sce I (10 U)와 적어도 3 시간 또는 O / N에 대한 후속 I 정화 -CeuI 및 PI -Sce 나는 (단계 1.3 참조)의 EtOH 침전 다음 페놀 - 클로로포름 추출을 사용하여 플라스미드를 소화. 뉴 클레아 무료 DH 2 O 20 μL에서 DNA를 녹여
- 별도의 pHM5 플라스미드 백본 (2.8 KB) 및 예비 아가 로스 젤에 (단계 1.4에서) GOI 및 상업 겔을 사용하여 GOI를 젤 - 정화 및 청소 키트를 PCR-. 다이제스트의 대표적인 아가로 스겔은도 2a에 도시되어있다.
- 탈 인산 I-CEU 나는 및 PI -Sce pAdFTC을 내가 소화 25 μL의 총 부피 37 ° C에서 1 시간 동안 송아지 장내 알칼리 포스 파타 아제 CIP (10 U)와 페놀 - 클로로포름 추출 및 이후의 EtOH에 의해 탈 인산화 플라스미드 pAdFTC 정화 (단계 1.4에서) 홍보ecipitation (단계 1.3). 뉴 클레아 무료 DH 2 O 20 μL에서 DNA를 용출
- 소화가 완료되고 예상 단편의 크기 (올바른지 ~ 선형화 pAdFTC위한 31킬로바이트을 분석한다 (단계 1.6)에서 탈 인산화 pAdFTC 플라스미드하고 (단계 1.5)로 정제 GOI 단편의 분취 액으로부터 분석적 겔 전기 영동을 수행 ).
주 : GOI의 크기는 트랜스 발현 카세트의 크기에 따라 가변적이다. 이후 결찰 대한 각 단편의 상대적인 농도를 추정한다. 정제의 대표 단편을 아가 로스 겔을도 2b에 도시된다. - 400 U의 T4 DNA 리가 제 (1) 및 삽입하는 벡터의 몰비를 사용하여 20 ㎕의 총 부피에 연결 반응을 설정 : 3이다.
참고 :도 2b에 도시 된 아가 로스 겔과 일치에서는 보통 6 μL 벡터로 -2- 20 μL의 총 부피에서 8 내지 12 μl를 결찰삽입하고 400 U T4의 DNA 리가. DNA 농도는 여러 phenolization 단계 후에 일반적으로 낮아서 20 μL의 최종 부피에 도달하도록 추가 H 2 O를 첨가해야하지 않도록, 가능한 한 DNA를 사용한다. EtOH로 침전 (1.3 단계) 다음에 페놀 - 클로로포름 추출을 수행 이후 16 ° CO / N에서 결찰합니다.- 클레아 무료 DH 2 O 15 μL에 DNA를 용출, 20 μL의 총 부피에서 25 ℃에서 2 시간 동안 제한 효소 SwaI (10 U)으로 정제 연결 반응을 소화. 이어서 농축하고 침전을 EtOH (단계 1.3)이어서 페놀 - 클로로포름 추출을 행함으로써, DNA를 정제. 뉴 클레아 무료 DH 2 O 10 μL에서 DNA를 용출
- 정제 된 SWA의 2 μl를 변환 나는 DH10B으로 전기에 의해 결찰 제품을 분해 또는 DH5α는 E.을 electrocompetent 대장균 및 암피실린 함유 LB에 37 ° C에서 16 시간 24 선택 클론판 (50 ㎎ / ㎖의 암피실린). 5 10 클론을 선택하고, 페놀 - 클로로포름 추출 및 이후의 EtOH 침전 (단계 1.3) (13) 다음에 알칼리 분해를 사용하여 플라스미드 DNA 미니 준비를 준비합니다.
- DNA 단편의 크기를 확인하기 위해, 아가 로스 겔 전기 영동에 이어, 플라스미드 미니 제제의 다이제스트 분석을 수행한다. 제안 된 제한 효소는 예 I-CEU I 및 PI- 된 SCE 내가 삽입, SPE I 또는 Hinc II (그림 2C)를 해제하기위한 있습니다.
- 앰피 실린 함유 LB 배지에서 정확한 클론을 증폭 (50 ㎎ / ㎖ 암피실린) 및 시판 플라스미드 정제 키트를 사용하여 MIDI-또는 맥시 플라스미드 제조를 수행한다.
생산자 세포주 (116)에 pAdFTC 플라스미드 및 HCAdV 벡터의 프리 앰프에서 HCAdV - 게놈의 2 출시
- 단계 1.11에서 클로닝 GOI를 함유 pAdFTC 기반 플라스미드, 아데노 바이러스 생산)에서 20 μg의 다이제스트총> 2 시간 동안 37 ° C에 있지 I (20 U)를 사용하여 100 ㎕의 부피 및 수행 페놀 - 클로로포름 추출을 EtOH 회 침전시켰다. 20 30 μL 살균 DH 2 O에 용해
- 겔 전기 영동에 의해 1시 10분 희석 소화 pAdFTC-GOI-DNA의 분취 량을 확인합니다. GOI, HCAdV 게놈 (크기 : 28- 36킬로바이트) 미국 제 DNA 단편의 크기에 따라 9킬로바이트의 플라스미드 백본 단편이 검출된다.
참고 : 아니 내가 다이제스트의 대표적인 예는 그림 2D에 표시됩니다. 선형 DNA는 몇 주 동안 4 ℃ 또는 -20 ℃에서 수 일 동안 저장 될 수있다. - 프로토콜을 진행하기 전에, 헬퍼 바이러스 AdNG163R-2 4 증폭되어 있는지 확인하십시오.
참고 : pAdFTC 파생 HCAdV 벡터로 형질 세포는 바이오 안전성 레벨 2 (BSL-2), 적절한 봉쇄 및 폐기물 처리를 이용하시기 바랍니다으로 분류 된 유전자 변형 유기체BSL-2 층류 후드 아래 개인 보호 장비, 작업을 포함하여 조치. - 이글 MEM 배지에서 배양 116 세포는 10 % FBS 및 하이 그로 마이신 B (/ ㎖ 100 μg의)로 보충. (통로 10 이하) 씨 낮은 통로가 50 80 % 컨 플루 다음날에 도달 할 수 있도록 형질 전환 전에 60mm 조직 배양 접시 하루에 116 세포 (~ 0.4 10 6 세포).
- 예컨대 칼슘 포스페이트 트랜 스펙 션 또는 기타 시판되는 형질 감염 시약 (도 3a)와 같은 방법을 사용하여 116 세포에 상기 단계 (2.1)에서 선형화 HCAdV 게놈 형질. 16 18 시간 후 형질 전환, 조심스럽게 셀 당 (합류 이후 HV AdNG163R-2 3 4 5 열 변환 장치를 적용 (TU)로 세포를 3 ㎖를 추가, 새로운 배지 (MEM, 5 % FBS)을 매체를 제거하고 감염 60mm 조직 배양 접시 ~ 3.2 10 6 세포 포함) HV의 ~ 1.6 10 7 TU 추가 할 수 있습니다.
- 부드럽게에 감염 후 첫 한 시간 동안 요리마다 20 분을 이동동일 HV 분포를 확인합니다. 37 ° C에서 감염된 세포를 배양하고 5 % CO 2. 바이러스 복제에 의한 효율적인 바이러스 증폭 세포 변성 효과 (CPE)의 경우에는 관찰된다 (세포 반올림 느슨하게 연결된 또는 조직 배양 접시로부터 분리된다) 이후 infection.If CPE 관찰되는 48 시간 이전 HV의 양은해야 감소 될 수있다. CPE 나중에 시작되면, 더 헬퍼 바이러스가 사용되어야한다.
- 배양액을 사용하여 배양 접시에서 세포를 세척하여 상등액 48 시간의 감염 후 세포를 수확 포함. 자신의 배지에 현탁 세포 통로 0 (P0)라고한다. 두 분수로 분할 P0.
- 분리 된 세포를 0.5 ml를 000 XG에서 3 분 동안 세포를 스핀 다운하고 세포 펠렛으로부터 매질을 제거으로부터 해당 나중에 증폭 과정 qPCR에 기초하여 분석 게놈 DNA (gDNA를)를 분리시키는 데에 사용된다. 추가 처리 할 때까지 -20 ℃에서 보관 세포 펠렛.
- 2.5에서분리 된 세포 ml의 자신의 매체 3-4 배에 재현 탁 된 세포를 (액체 질소 -80 ° C에서 또는에서) 동결 (37 ° C의 물을 욕조 실온에서 또는에서) 해동하여 바이러스 입자를 놓습니다. 이 부분은 P0의 호출 해물보다.
- FBS (10 %)과 하이 그로 마이신 B (100 μg의 / ㎖) 및 HV 보충 MEM-매체를 이용하여 90 - 95 %의 포화 상태로 성장 (116) 세포와 그 조직 배양 접시를 확인 다음 계대 단계에 사용할 수 있습니다.
- 60mm 조직 때문에 셀 (당 2 TU 적용 HV를 추가하고, 3.5 ㎖의 최종 부피로 선행 통로 (단계 2.6.2)로부터의 분해물의 2.5 ml의 신선한 매체 (MEM, 5 % FBS)의 1 ml에 섞어 90 - 95 %의 포화 상태에서 배양 접시가 ~ 3.2 10 6 세포 포함) HV의 ~ 6.4 배 (10) 6 TU 추가 할 수 있습니다. (그림 3B). 조심스럽게 116 세포 60mm 접시에서 배지를 제거하고 세포에 바이러스 혼합물을 추가한다. 단계를 반복 2.6) - 2.8) 두 번 패스의 해물을 얻기나이 P1과 P2.
- ~ 포함 P2에서 해물의 2.5 ㎖로 17.5 ml의에게 신선한 미디어 (MEM, 5 % FBS)을 혼합하고 80 100 %의 포화 상태에서 150mm 조직 배양 접시 때문에 세포 (당 2 TU 적용 HV를 추가 배 (10) (7) 세포) ~ HV의 4 배 (10) 7 TU를 추가합니다. (116) 셀의 150mm 접시에서 매체를 제거하고 바이러스의 혼합물로 세포를 감염. 37 ° C에서 감염된 세포를 배양하고 5 % CO 2.
- 같은 단계 2.6에 설명 된 48 시간 후 감염 수확 세포는) 유로 (P3) (그림 3B)을 얻었다.
- 단계를 반복 2.6) 1.
- 재현 탁 세포 P3 출시 바이러스 입자의 나머지 19.5 ml의에서 서너 번 동결 융해에 의한. 이 부분은 P3의 호출 해물보다.
주 :이 충분히 증폭 될 때까지 일부 벡터는 결국 150mm 요리에 추가 구절이 필요할 수 있습니다. 따라서 사전 증폭 과정의 유효성은 직렬 패스 동안 모니터링 될 필요노화. (3) (또한도 4a 참조)에 설명 된대로 증폭 과정 qPCR에 기초하여 분석이 수행 될 수있다. 녹색 형광 단백질 (GFP)에 대한 발현 카세트를 운반 HCAdV 사전 증폭 쉽게 형광 현미경 (도 4b)을 이용하여 GFP flourecscent 신호를 관찰함으로써 평가 될 수있다.
정량 실시간 PCR (qPCR에)를 사용하여 증폭 과정 3. 모니터링 (또한도 4a 참조).
- 2.10) 배양 세포에서 gDNA를의 격리 또는 선택한 다른 방법 상업적 DNA 분리 키트를 사용하여 - preamplifaction (2.6 단계)의 각 통로에서 세포 펠렛에서 gDNA를 격리. 최적의 PCR 결과를 가능한 한 신선한로 gDNA를 사용합니다. 그렇지 gDNA를 추가로 사용할 때까지 -20 ℃에서 저장 될 수있다.
- 표준 곡선 10 (1)를 이용한 생성 qPCR의 분석에 의해 각각의 통로의 세포 내에 존재 HCAdV 게놈의 수를 결정하는 </ SUP> - 10 HCAdV 게놈에 포함 GOI 운반 플라스미드 9 사본.
- HCAdV 게놈에 포함 된 GOI에 대한 특정 프라이머의 400 nm의를 사용하여 qPCR에 적용 P0- P3 (단계 2.6- 2.10)에서 gDNA를 같은 양을 분석합니다. 각각의 qPCR에 화학 물질의 qPCR의 추적 제조업체의 지침을 수행하십시오. 다음과 같이 qPCR에 프로그램을 설정합니다 미리 배양을 95 ℃에서 10 분, 10 초 동안 95 ° C의 40주기의 증폭, 15 초 동안 55- 60 ℃, 20 초, 72 ° C에 대해. 표준 곡선에 기초하여 상기 반응에서 HCAdV 게놈의 번호는 보간 될 수있다.
서스펜션의 성장 (116) 세포에서 HCAdV 벡터 4. 대규모 증폭
- 3 리터 스피너 문화 플라스크 (그림 3B)에 10 % FBS와 하이 그로 마이신 B (100 ㎕ / ml)이 첨가 된 데워진 (37 ° C) 신선한 (MEM)의 900 ML을 추가합니다.
- 1 적어도 10 개인 150mm 조직 배양 접시에서 매체를 제거(16) 세포를 90- 100 %의 컨 플루 언시로 성장하고 10 mL로 세포를 세척 신선한 예열 (37 ° C) MEM FBS (10 %) 및 혈청 학적 피펫을 사용하여 하이 그로 마이신 B (100 ㎕ / ml)이 첨가. 최대 피펫 아래로 여러 번 균일 한 세포 현탁액을 얻을 수 있습니다. 이미) 단계 4.1에서 900 ml에 포함 된 스피너 플라스크에 직접 세포를 전송합니다.
참고 : 부정적인 서스펜션 세포의 성장에 영향을 미칠 수 있으므로 트립신 / EDTA를 사용하지 마십시오. 매체의 제거 후 즉시 스피너 플라스크에 세포를 전송합니다. 한 번에 두 개 이상의 조직 문화 요리를 취급하지 마십시오. 긴 대기 시간이 더 어려워 신선한 미디어를 첨가 한 후에는 조직 배양 접시에서 세포를 분리하는 것이다. - 37 ° C에서 24 시간 동안 조직 배양 인큐베이터에서 마그네틱 교반기에 최적 세포 성장 인큐베이션 스피너 플라스크를 보장하고, 5 % CO 2로. 유리 표면에 세포의 부착을 방지하기 위해 70 rpm으로 자석 교반기를 조정합니다. 회 문화 플라스크에서 자란 세포가 생존 여부를 그들이 충분한 양을 증가 여부를 검토 회 문화 플라스크에 세포의 성장을 모니터링합니다. 60mm 조직 배양 접시에 생물 반응기에서 신선한 매체 전송 2 ml에 추가하기 전에 때마다. 현미경으로 세포 형태를 관찰한다.
참고 : 배지에 떠있는 덩어리를 형성하는 세포가 최적의 성장과 생존을 (또한 그림 (c) 참조)을 나타냅니다. 24 시간 후 그들은 조직 배양 접시의 표면에 콜로니를 형성한다. 30 50 %의 합류는 최적의 밀도를 나타냅니다. - 24 시간 회 문화 플라스크를 설정 한 후 하이 그로 마이신 B (100 ㎕ / ml)이 첨가 된 새로운 미디어의 500 ㎖ (MEM, 10 % FBS)를 추가합니다. 24 시간 이상이 단계를 반복합니다.
- 72 시간 회 문화를 설정 한 후, 세포 현탁액의 3 L의 총 부피의 결과로 하이 그로 마이신 B (100 ㎕ / ml)이 신선한 MEM 미디어 (10 % FBS)의 1,000 ml에 추가 할 수 있습니다.
- 24 시간 AV에 도달 한 후실온에서 500 XG에 10 분 동안 원심 분리하여 삼리터, 수확 (116) 서스펜션 세포의 olume. 상층 액을 버린다. 조직 문화 후드 아래 비워 회 문화 플라스크를 유지합니다.
- 신선한 MEM에 재현 탁 된 세포 펠릿 균질 세포 현탁액을 얻는 아래 약 8-10 배를 피펫 팅에 의해 5 % FBS로 보충. 매질의 부피는 단계 2.10) (2)로부터인지 해물에 의존한다. 1 (19.5 ㎖의 단계 4.8 참조). 옵션) 또는 단계 5.9에서 HCAdV의 정제 된 바이러스 주) 2. (바이러스 역가 depanding 여러 μL는 단계 4.8 참조) 2., 옵션 B) 세포의 감염을 위해 사용된다. 150 ml의 총 부피를 사용한다.
- 옵션은 : 멸균 자기 교반 막대 또는 250ML 작은 규모의 스피너 플라스크가 장착 된 250 ml의 저장 병에 P3 (주 증폭) 단계 4.8에서 전송 세포)에서 해물과 116 서스펜션 세포의 감염과 세포를 공동 감염 P3 (단계 2.10.2)과 셀 당 HV의 2 TU에서 해물 내에서 바이러스. 배의 밀도를 가정105 ml의 세포 당, 총 세포 수는 9 배 10 8 세포이다. 따라서 HV의 1.8 배 (10) (9) TU를 추가합니다.
- 옵션 B는 : 정제 바이러스 재고 116 서스펜션 세포의 감염, 멸균 자기 교반 막대 또는 250ML 작은 규모의 스피너 플라스크가 장착 된 250 ml의 저장 병 단계 4.8에서 전송 세포) 100 바이러스 입자와 세포를 공동-감염 (단계 5.9에서) 이전에 정제 HCAdV 2의 세포 당.). 정제 HCAdV와 HV의 1.8 배 (10) (9) TU (6 단계 260 나노 미터에서 흡광도를 측정) 따라서 실제 역가에 따라 9 배 (10) (10) 부사장을 추가합니다.
- 60 rpm에서 2 시간 동안 CO 2를 37 ° C에서 조직 문화 인큐베이터에서 자석 교반기에 9월 4.8.1) 또는 4.8.2)에서 세포 바이러스 혼합물을 저어 5 %. 저장 병이 완전히 공기 순환 할 수 있도록 폐쇄되지 않았는지 확인합니다.
- 2 시간의 후 감염은 3 리터 스피너 숭배에 다시 세포 바이러스 혼합물의 총 부피를 전송URE 플라스크 및 48 시간에서 37 ° C, 5 % CO 2에서 조직 배양 인큐베이터에서 2 L의 총 부피로 5 % FBS가 보충 된 신선한 예열 (37 ° C) MEM 미디어 1,850 mL를 추가하고 부화 70 RPM.
- 500 ml의 원심 분리기 튜브에 실온에서 890x g에서 10 분 동안 원심 분리하여 수확 세포. 배지를 제거하고 DPBS 28 mL의 총 부피에서 세포 펠렛을 재현 탁. 균일 한 세포 현탁액을 얻기 위해 아래 피펫합니다. 서스펜션이 완전히 고정되어 있는지 확인하고 액체 질소 또는 -80 ° C에서 세포 바이러스 현탁액을 동결. 바이러스 정화를 시작 할 때까지 -80 ° C에서 세포 바이러스 서스펜션을 저장합니다.
5. 정제 및 HCAdV의 투석
- 세슘 클로라이드 (CSCL) 그라디언트 바이러스 해물을 준비 37 ° C의 네 배에 물을 욕조에 액체 질소와 해동 단계 4.11에서 세포 바이러스 서스펜션)를 고정합니다.
- R에서 8 분 동안 500 XG에 바이러스 해물을 원심 분리기T와는 HCAdV을 포함하는 상층 액을 수집합니다.
- 초 원심 분리, 그리고 31,25 G (1.35 g / cm 3), 33.5 g (1.5 g / cm 3) 협동 학습 해결책으로 follows.Weigh 37.5 g을 준비 (1.25 g / ㎤) CSCL 분말 각각 채운다 DH 2 O 25 ml의 최대.
- 솔루션까지 Stirr 명확하고 살균 필터에게 솔루션을하게된다. 마지막으로 각 솔루션 1 ㎖를 제거하고 밀도가 올바른지 어떠했는지를 확인하는 미세 규모에 무게. 1ml를 각각 1.5 g, 1.35 및 1.25 g의 무게를해야합니다.
- 농도가 너무 높으면 멸균 DH 2 O. 작은 볼륨 (μL)을 첨가하여 단계적으로 조정 DH 2 O를 첨가 한 후 다시 densitiy을 측정한다. 필요하면 더 DH 2 O를 추가
- 밀도가 올 때까지 절차를 반복합니다. 농도가 너무 낮 으면 CSCL 분말을 소량 첨가하여 조정한다. 살균 필터는 다시 밀도를 확인합니다. 농도가 너무 높으면 애드하여 조정G DH 전술 한 바와 같이 2 O. 밀도는 여전히 너무 낮은 추가 MOR CSCL, 살균 필터를 다시 밀도를 확인됩니다. 밀도가 올 때까지 절차를 반복합니다.
- 여섯 분명 초원 심 분리기 튜브에서 협동 학습 단계 구배를 준비합니다. 조심스럽게 천천히 다음과 같은 순서로 사용하여 튜브에 협동 학습 솔루션을 피펫 : 1.5 0.5 ml의 g / ㎤ 협동 학습 솔루션, 1.35의 3 ㎖ g / ㎤ 협동 학습 솔루션과 1.25의 3.5 ml의 g / ㎤ 협동 학습 솔루션 (그림 2C) .
- 오버레이 ~ 1.25 g / ㎤ CSCL 층의 상단에 단계 5.2에서 지워 벡터 상층 액의 4.5 ㎖). 원심 분리기 빈 입자와 세포에서 바이러스 입자를 포함하는 별도의 HCAdV 게놈에 느린 가속과 감속 226,000 XG (35,000 RPM)에서 최소 2 시간 동안 12 ℃에서 회 전자 (SW-41) 스윙을 사용하여 초 원심 분리기에서 그라디언트 부스러기.
참고 : 위에 세포 파편 FORMES의 최적의 조건에서 확산 대역튜브. 두 아래의 흰색 띠가 관찰 할 수있다. 낮은 밴드 HCAdV (도 2C 및 5A)를 동일 반면 상위 대역은 빈 입자를 포함하고 있습니다. - 신중 세포 파편 및 빈 입자의 층을 분리하고 50 ㎖ 멸균 된 튜브에 깨끗한 피펫 팁 각 튜브 및 전사 바이러스로부터 낮은 대역 1 ㎖를 수집한다. G 수집 된 바이러스 입자 / ㎤ 협동 학습 솔루션을 조심스럽게 혼합 1.35 24 ml의 최대 추가합니다.
- 1.35 g / ㎤ 초 원심 분리기에서 12 ° C에서 226,000 XG (35,000 RPM)에서 상단과 원심 분리기 O / N (18 20 시간) 3 CSCL 바이러스 솔루션 로터 스윙을 사용하여 (SW-41 원심 분리기 튜브를 입력 ) 느린 가속 및 감속.
- 눈에 띄는 낮은 대역에 존재하는 HCAdV를 수집합니다. 잠재적 인 위 밴드가 비어 입자가 피펫을 사용하여 위에서 상위 계층을 제거 포함으로 그런 다음 하단 밴드 USI를 빼앗아 (도 2C 및도 5b 참조)피펫을 겨.
- 완충액 교환 수집 바이러스 입자를 투석.
- 길이가 약 8cm의 3 회 살균 DH 2 O로 씻어 : 투석 튜브 (50,000 MWCO)의 스트립을 잘라. 그런 다음 플라스틱 클램프 투석 튜브의 한쪽을 닫고 1-ML 피펫을 사용하여 튜브로) 단계 5.8에서 수집 된 바이러스를 전송합니다. 튜브 내의 공기 방울을 피하고 플라스틱 클램프 투석 폐쇄와 반대편에 닫습니다.
- 4 ° Cwith 천천히 교반에서 2 시간 동안 투석 완충액 (10 mM 트리스 - 염산 (PH 7.5), 10 % 글리세롤 및 탈 H 2 O 1 mM의의 MgCl 2) 1L의 투석에. 2 투석 버퍼의 L 천천히 교반하면서 4 ° C에서 O / N을 투석과의 교류 투석 버퍼입니다. 또한 sucrosebuffer (140 mM의 염화나트륨, 5 mM의 나 2 HPO 4 x2H 2 O, 1.5 mM의 KH 2 PO 4, 730 MM의 자당, 산도 7.8)를 사용합니다.
- 단계 5.9) 2에서 투석 바이러스 입자를 수집합니다. 1 ml의 피를 사용하여ipette. 원하는 소량 (25 ~ 100 μL)의 여러 분취 량을 준비하고 -80 ° C에서 정제 된 바이러스를 저장합니다.
6. 측정 광학 밀도의 최종 HCAdV의 준비의 물리적 역가 (OD)
- 용해 완충액 (10 mM 트리스 - 염산 (pH를 7.5) 475 μL와 단계 5.9) (2)에서 최종 벡터 제제의 25 μL 희석 된 10 mM EDTA (PH 8.0), 0.5 % SDS))는 부드럽게 20 분으로 흔들어 RT 및 최종적 15,000 × g으로 실온에서 2 분 동안 원심 분리.
- 260 나노 미터 (A260)에서의 흡광도 값이 낮은 보통이므로, 상청액 100 μL를 사용하여 흡광도를 네 번 측정하고 네 개의 측정 값의 평균을 계산한다. 다음 식을 사용 mL의 바이러스 입자의 수를 (VP / ㎖ -1) 계산 : KB에서 VP / ㎖ -1 = (A260 평균) X (20) × (1.1 × 10-12) × (36킬로바이트 / HCAdV 크기 ).
주 : 절대 바이러스 입자 (OD 역가)의 전형적인 수율의 결과를도 7a에 나타낸다
7. 총 입자, qPCR에 의한 최종 벡터 준비에 HCAdV과 HV 오염 수준의 감염성 단위 측정합니다. 적정 절차의 방식은 그림 6에 표시됩니다
- 6 또는 12 웰 조직 배양 플레이트에 시드 HEK293 세포가되도록 세포를 다음날에 90 % 포화 상태에 도달한다. 감염성 바이러스 입자의 수 (전염성 역가)을 결정하기 위해, 1 ㎕의 단계 5.9로부터의 정제 된 바이러스를 10 μL와 제 2 웰)로 다중 - 웰 플레이트에 웰 하나의 세포를 감염 3.
- 수확 세포 3 시간 게시물 감염. 매체 제거하고 전체 잘 다루 트립신을 추가하고 3 부화7 ° C와 5 %의 5 분 CO 2. 피펫을 사용하여 트립신으로 세포를 세척하고 실온에서 3 분 동안 890 XG에서 세포를 스핀 다운.
- DPBS 200 μL의 펠렛 세포를 재현 탁하고 무료 (비 감염성) 벡터 입자를 제거하기 위해 철저히 씻는다. 실온에서 890 XG에 3 분 동안 원심 분리기. 신선한 DPBS 200 μL에 뜨는에 resuspend 세포 펠렛을 폐기하십시오.
참고 : 감염 역가의 정확한 결정의 경우, 치료 및 철저한 세척 트립신 세포 표면에서 모든 비 감염성 바이러스 입자를 제거하기 위해 매우 중요합니다. - 전체 바이러스 입자 수 (감염성 입자 및 비 감염성 입자 = 실제 역가)을 확인하려면, 수확은 그들의 문화 매체는 피펫을 사용하여 세포를 세척하여 트립신없이 두 우물에서 HEK293 세포를 감염되지 않은.
- RT에서 890 XG에서 3 분 동안 세포를 스핀 다운. 매체를 취소하고 DPBS 200 μL에 펠렛 세포를 재현 탁. 스와bsequently 각각 직접 세포에 1 μL 정제 HCAdV 준비 10 μl를 추가합니다. gDNA를 분리 이후 Q-PCR에 대해 동일한 조건을 보장하기 위해, 배경과 같은 비 감염된 세포를 사용한다.
- HEK293 단계 7.3에서 파생 된 세포) 7.5에서 gDNA를 격리)
- DPBS 3 초 동안 (단계 7.3 및 7.4), 200 μL에 재현 탁 소용돌이 세포는 SDS 용액 200 μl를 추가합니다. (10 mM 트리스 - 염산 (PH 7.5), 10 mM의 EDTA (PH 8.0), 0.5 % SDS)와 프로 테이나 제 K 20 ㎕를 (20 ㎎ / ㎖) 및 와류 현탁액 3 초. 55 ° C에서 12 (16) 시간을 품어 천천히 흔들. 그때의 RNAse 2 μL (20 ㎎ / ㎖)를 첨가하고, 37 ° C에서 30 분 동안 배양한다.
- 15,000 X g에서 2 분 동안 이소 아밀 알코올과 원심 분리기 : 클로로포름 : 페놀의 350 μl를 추가합니다. 새로운 튜브에 뜨는을 전송하고 한 번이 단계를 반복합니다
- 새로운 튜브에 상청을 전송 초산 나트륨 50 μL (PH 5, 3 M) 및 1 ml의 빙 감기를 EtOH (99.8 %)를 첨가하고, 현탁액을 혼합한다. 원심 펌프15,000 XG에 10 분 동안 fuge 샘플은 게놈 DNA를 펠렛.
- 이어서, 상등액을 제거 15,000 x g에서 2 분 동안 70 %의 EtOH 500 ㎕의 원심 분리를 추가한다. , 뜨는을 제거 70 %의 EtOH 500 μl를 추가하고 실온에서 30 분 동안 흔들어. 그리고 15,000 X g에서 2 분 동안 원심 분리.
- 뜨는 공기 건조 DNA 펠렛을 제거합니다. 이 용액을 gDNA를 얻기 어렵게되는 바와 같이, 장시간 건조하지 DNA 펠렛을한다. DH 2 O의 120 μL의 DNA 펠렛을 재현 탁 떨고 동안 37 ℃에서 ~ 1 시간 동안 배양한다. DNA 용액이 점성이 나타나는 경우, 37 ℃에서 몇 시간 동안 흔들어, 또는 ~ 1 시간 동안 55 ° C에서 품어.
- HCAdV 게놈에 포함 GOI 운반 플라스미드 10 카피 8 - 감염성 HCAdV 입자 절대 HCAdV 입자를 결정하기 위해, 10 (1)의 표준 곡선을 생성한다.
- 감염된 HEK293 (C)의 gDNA를 동일한 양을 분석함으로써 전체 입자 및 감염성 입자를 결정할단계 7.3) 및 7.4)에서 ELL 학생은 qPCR에가 HCAdV 게놈에 포함 된 GOI에 대한 특정 프라이머의 400 nm의를 사용하여 적용 할 수 있습니다.
- 다음과 같이 PCR 프로그램을 설정합니다 미리 배양을 95 ℃에서 10 분, 증폭을 위해 10 초 동안 95 ° C의 40주기, 10 초, 55 ℃, 20 초, 72 ° C에서. 표준 곡선 (단계 7.7)에 기초하여, 반응의 아데노 바이러스 게놈 수를 보간.
- 다음 formular를 사용하여 최종 벡터 준비 아데노 바이러스 게놈의 수를 계산한다 (HCAdV / 무게의 수를 반응에 gDNA를의 NG에) × (μL에 무게를 모든 세포의 DNA의 NG에 감염된 접시에 / 볼륨 바이러스) .
참고 : 절대 및 감염성 바이러스 입자 수익률의 일반적인 범위는 1 × 7 -1x10 8 바이러스 입자 / μL 주위. 여기서 보여보다 10 배는 더 높거나 더 낮은 역가가 정상으로 간주 할 수있다. 높은 역가가 개선 될 것이다. 절대 HCAdV의 partic의 비율에 대하여레 전염성 HCAdV 입자에, 경험은 절대 HCAdV 입자의 약 5-10 %의 감염 (그림 7A) 것을 보여준다. - HV와 오염 수준을 결정하기 위해, HV 게놈에 존재하는 유전자가 아데노 바이러스 후기 3 (L3)의 부분을 증폭함으로써 qPCR을 수행. 표준 곡선 (단계 7.7)을 생성하는 아데노 바이러스 후기 유전자 3 (L3)을 운반하는 플라스미드를 사용한다.
- 이 반응에서 프라이머 L3 400 nm의 적용 순방향 5'-AGA AGC TTA TCC GCA GTT ACT CGA GTT GG-3 '와 L3 역방향 5'-ATA GTT CAT AGC TTG CAG GGT ATG GAT GG-3'와 함께 내지 300nm L3 특정 프로브의 5'-식구-CCA CCC GTG TGT ACC TGG TGG ACA-탐라-3 '.
- 다음과 같이 PCR 프로그램을 설정 사전 인큐베이션 / 활성화를 95 ° C에서 10 분, 증폭을 위해 15 초 1 분 동안 60 ° C, 95 ° C, 40 사이클 동안. PCR은 qPCR에 반응에 mastermix 어떤 보편적 인 프로브를 사용합니다. 표준 곡선 (단계 7.7)에 기초하여, In의 수를 계산최종 벡터 준비 fectious HV 입자. HV 입자의 전형적인 수율에 대한 (그림 7A)를 참조하십시오.
- 마지막 벡터 제제의 품질을 평가하는 HV 오염 수준 HCAdV 절대 감염성 입자의 비율을 계산한다.
참고 : 지금 남아있는 HV의 작은 부분을 배제 할 수 없습니다 때까지. 일반적 HV 오염의 비율은 허용 감염성 입자 이하인 ~ 5 %, (도 7b)이다. 가능한 한 적은 HV 바람직하다 물론 같이 벡터 제제는 동물 실험으로 사용하는 경우에는 특히.
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Representative Results
복제, 증폭 및 HCAdV 준비 정화용 여기에 대표적인 예는 표시됩니다. 효소 소화 제한에 의해 복제 전략의 개요 (그림 1)과 복제에 대한 대표적인 예와 HCAdV 게놈의 릴리스는 (그림 2)이 제공된다. 소화 나는 PI- SceI 제한 I 및 I-CEU에 의해 pHM5에서 GOI-발현 카세트 및 후속 페놀 - 클로로포름 추출 및 EtOH로 침전의 출시 후 일반적인 제한 패턴 (그림 2A)를 표시된다 (도 1.2 ~ 1.5 단계). 일반적 pHM5 플라스미드 백본 및 GOI의 발현 카세트에 대응하는 제 2 대역에 대응 ~ 3킬로바이트 밴드를 관찰 할 수있다. GOI 발현 카세트를 함유하는 밴드이어서, 아가 로스 겔로부터 정제한다. 정제 된 GOI-발현 카세트는 정제, 탈 인산화 pAdVFTC와 함께 아가 로스 젤에 분석 W 그정확한 크기를 확인하고 이후 결찰 (도 2B)에 대한 분자의 상대적 양을 추정하기 위해 I-SceI 제한 PI- 및 I- CEU 각각 I (단계 1.7)로 분해로. 결찰 후 암피실린에 선택 나는 포경 pAdFTC 이후 페놀 - 클로로포름 추출 및 EtOH로 침전 (1.9 단계), 결찰 제품은 박테리아와 클론로 변환 제거 소화 페놀 - 클로로포름 추출 및 EtOH로 침전과 SWA 다음 (단계 1.8 참조) LB- 한천 플레이트를 포함. 일반적으로 클론의 수백 수십 5- 10 클론 플라스미드 DNA 미니 준비에 대한 준비가되어있는, 얻을 수있다. 함께 음성 대조군 (도 1.10 단계 참조) 빈 pAdFTC와 긍정적이고 부정적인 클론의 분석 Hinc II 다이제스트의 제한 패턴 (그림 2C) 표시됩니다. 여기에 긍정적 인 클론 빈 pAdFTC과 부정 복제 및 1.7 kb의 단편이 표시에 존재 5킬로바이트 밴드를 표시하지 않습니다즉, 빈 pAdFTC 음의 클론에 존재하지 않습니다. 이 각각의 GOI를 들어이 그쪽으로 복제가 성공을 나타냅니다. midiprep를 통해 정제 된 긍정적 인 클론은 pAdVFTC-GOI (단계 2.2)에서 GOI를 들고 HCAdV 게놈을 해제 없음 TI로 소화했다. 마지막 아니오 TI는 IST 회 116 세포 내로 형질 감염에 대한 후속 DNA의 높은 순도를 보장하는 페놀 - 클로로포름 추출 및 침전을 EtOH를 사용하여 정제 DNA를 소화되지. 아니오 TI의 작은 분획의 분석은 아가 로스 겔상에서 pAdVFTC-GOI 소화 pAdFTC 플라스미드 백본 (GOI 발현 카세트의 크기에 따라) ~ 최대 36킬로바이트의 큰 대역에 대응 ~ 9킬로바이트 대역을 도시 HCAdV 게놈 (그림 2D)에 해당. 증폭 및 정제 파이프 라인의 개요를 개략적으로 (도 3)를 나타낸다. 벡터 사전 증폭 프로세스 모니터링의 대표적인 예들이 제공된다 (
pAdFTC에 GOI를 복제 그림 1. 순서도. GOI는 pHM5 셔틀 플라스미드의 MCS로 복제됩니다. 플라스미드 pAdFTC 및 pHM5-GOI은 I-CEU I 및 PI- SceI 제한 I로 분해 페놀 - 클로로포름 추출 및 EtOH를 침전에 의해 정제된다. 소화 pAdFTC 플라스미드 탈 인산화 반면 소화 pHM5은 관심 유전자 (또한 단계 1.5 참조) 정제 제조용 아가 로스 겔에 로딩한다. 이어서 CIP 처리 pAdFTC와 연결 반응과 트랜스 유전자 발현 카세트를 설정한다 (단계 1.8 참조) 완료 후, 페놀 - 클로로포름 추출 및 침전을 EtOH로 정제한다. 페놀 - 클로로포름 추출 및 침전을 EtOH이어서 결찰 생성물의 후속 SWA I 다이제스트 삽입없이 pAdFTC 운반 클론의 성장을 방지한다. 블랙 트리각도는 제한 효소 인식 부위를 나타낸다; 회색 상자가 AdV5 터미널 반복 반전 표시 (ITR), Ψ로 표시된 흰색 상자가 AdV5 포장 신호를 표시, 빨간색 화살표는 프로모터를 나타내고, 녹색 상자 (관심의 유전자, GOI)로 표현되는 유전자를 표시, 파란색 상자는 폴리아 데 닐화 신호, 오렌지 나 블루를 표시 화살표 플라스미드 백본의 항생제 내성 유전자를 표시, 각각. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 pAdVFTC에서 HCAdV 게놈의 복제 절차 및 자료 2. 대표 결과. PI- SceI 제한 I 및 I-CEU 나는 다이제스트 (도 1.2 ~ 1.5 단계 참조) pHM5에서 GOI-발현 카세트의 (A) 릴리스. (B) SceI 제한 I 및 I-CEU 각각 I (단계 1.7)로 분해 GOI-발현 카세트 및 정제, 탈 인산화 pAdVFTC를 정제 하였다. (C)와 GOI (또한 1.10 단계 참조)없이 pAdVFTC 클론의 분석 Hinc II 다이제스트. 아니 TI 다이제스트에 의해 pAdVFTC-GOI에서 GOI를 들고 HCAdV - 게놈 (단계 2.2)의 (D) 릴리스 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
. 고용량 아데노 바이러스 벡터 증폭 및 정제를위한도 3 개략도 (A) HCAdV의 DNA 형질 감염 및 헬퍼 바이러스 (HV) 감염 : HCAdV 프로듀서 세포주에 GOI 운반 선형화 HCAdV 게놈의 형질 감염 (116 세포 [4]) 및 SUHV AdNG163R-2 bsequent 감염 [4]. (B) HCAdV 증폭 : 사전 증폭 단계 후에 연속적으로 새로운 조직 배양 접시에 세포 용 해물을 전송 및 HV와 공동 감염시켜, 대규모 생산을 3 L의 현탁 배양에서 수행된다 (C) HCAdV 정화 :. 들어 정제, 바이러스는 염화 세슘 구배를 사용하여 초 원심 분리에 의해 단리된다 (D) 투석 :. 정제 HCAdV 입자는 2 L 저장 완충액에 대해 투석한다. HCAdV, 고용량의 아데노 바이러스 벡터; ITR, 아데노 바이러스 혈청 형 5 터미널 반복 반전; Ψ, 포장 신호; HV, 헬퍼 바이러스; MOI, 감염의 다양성은. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
<BR /> 증폭 과정 qPCR에를 사용하여 바이러스 게놈의 증폭에 의해 사전 증폭 과정 (A) 모니터링의 그림 4. 대표 결과 (또한 제 3 절 참조). (B)는 GOI이 유전자로 GFP가 포함되어있는 경우, 사전 - 증폭 과정은 형광 현미경에 의해 모니터 될 수있다. (C)는 스피너 플라스크에서 대규모 증폭 과정의 대표 결과 HCAdV 부호화 GFP위한 examplified. 왼쪽 패널은 스피너 플라스크에서 감염된 116 세포의 현미경 사진을 보여줍니다. 배지 및 세포 시료를 60mm 조직 배양 접시에 옮겼다. 증폭 된 세포 덩어리가 볼 수 있습니다. 오른쪽 패널은 형광 현미경을 사용하여 같은 그림을 보여줍니다. 세포의 거의 100 % HCAdV는 GFP를 운반하는 형질 도입된다. 여기를 클릭하십시오이 그림의 더 큰 버전을 볼 수 있습니다.
CSCL 구배 원심 분리 한 후 그림 5. 대표 결과 (A) 단계 구배 (도 5.5 단계 참조)을 수행 후,.. 연속 그라데이션 (또한 5.7 단계) 후에 (B)를 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
적정 절차의 개요 제 도식도. 감염성 입자의 (A) 측정 : 멀티 웰 플레이트의 세포가 정제 된 바이러스의 서로 다른 볼륨에 감염된 세포 펠렛으로 수집 (B) 측정 오.절대 입자 F : Unifected 세포를 트립신 처리하고 원심 분리에 의해 수집되는 멀티 웰을 형성한다. 부유 정제 바이러스가 추가되고 게놈 DNA가 고립 된 후. 게놈 DNA의 (C) 분리. (D) 정량 PCR (Q-PCR)을 수행 바이러스 게놈 사본 번호를 정량화하기. 이의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오 그림.
최종 벡터 준비의 특성 7. 대표 결과 그림. (A) 다른 방법으로 결정될 제시된 프로토콜에 따라 벡터 제제의 입자의 절대 번호 :. OD 역가가 qPCR의 (7)에 의해 측정 된 광학 밀도 (6 장), 전염성 역가 HV 오염에 의해 측정 한 (B)qPCRs (7 항)에 의해 측정 된 총 감염 HCAdV 입자와 HV 오염 레벨 사이의 비율. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
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Discussion
여기에 제시된 프로토콜은 전술 한 절차에 기초 4,12 인간 아데노 바이러스 형 5에 기초 HCAdV 벡터들의 정화를 허용한다. pAdFTC 플라스미드 내의 HCAdV 게놈은 모든 아데노 바이러스 유전자의 결여 만 5'- 및 3'- LTR에 및 포장 신호를 전달한다. 이 전략에서 HV AdNG163R-2 (4)는 트랜스 효율적인 바이러스 생산에 필요한 모든 유전자를 제공한다. 또는 아데노 관련 바이러스 (AAV) 기반 벡터 - 이것은 명확하게 제 1 및 제 2 세대 AdVs 또는 널리 사용되는 렌티 바이러스 (LV)을 outcompetes 최대 35킬로바이트의 포장 용량을 제공합니다. 특히 생체 내 (in vivo) 적용을위한 HCAdV의 두번째 장점은 제일 - 대조적 또는 2 세대 AdVs 그들이 세포 독성의 감소 된 수준과 5-8 바이러스 단백질의 발현으로 인한 면역 부작용을 표시한다는 점이다.
그럼에도 불구하고 여기에 설명 된 프로토콜이 시간이고다른 바이러스와 같은 LV- 같은 벡터 또는 AAV-벡터뿐만 아니라 1 세대 또는 2 세대 AdVs보다 많이 작동합니다. 가장 큰 장애물은 큰 유전자의 복제 및 바이러스 생산 플라스미드 PADV-FTC에 후속 전송입니다. 유도 엔도 뉴 클레아의 사용은 SceI 제한 I 및 I-CEU 내가 셔틀 플라스미드 pHM5에서 유전자의 정확하고 직접 삽입을 제공 PI-,하지만 강력하게 절단 된 DNA를 엄선 단점이있다. 복제 과정에서 plasmid- 삽입-DNA 준비 할 때 이러한 이유로 많은 페놀 - 클로로포름 정리 단계가 필요합니다. 따라서 엄격하게 제공하는 복제 프로토콜에 따라 엄격하게 권장합니다. HCAdV 게놈을 복제하는 것은 제한되지 I 의해 플라스미드 pAdFTC로부터 해제 된 후 효소 소화이어서 생산자 세포주에 형질. 최초의 형질 전환 효율이 충분한 바이러스의 증폭을 달성하기위한 매우 중요합니다. 중요한 프로토콜은 여러 단계를 구비하는 절차는 다음 단계가 실패 할 경우 다시 시작할 수 있습니다. 사전 - 증폭 동안 해물의 1/3 지점부터 다시 시작하는 과정을 이상의 바이러스를 제조해야하는 경우에, 반복을 단축 백업으로 저장 될 수있다.
HCAdV, 큰 복잡하거나 여러 유전자 또는 특정 투표자의 DNA를 운반하는 것은 예상보다 느린 증폭 될 수있다. 따라서, 현탁 배양이 스피너 플라스크에서 성장 전에 반드시 사전 증폭 과정을 수행하는 것이 중요하다. 미리 증폭이 성공적이지 않으면, 절차는 정지하고 처음부터 다시 시작해야한다. 사전 - 증폭 비효율적 인 경우 바이러스의 양이 3 L 스피너 플라스크에서 배양 세포를 감염시킬 때까지 충분히 높은 추가 계대이 필요할 수있다. 스피너 플라스크로 현탁 배양에 대한 대안으로서, 20 (150) 내지 30mm 조직 배양 접시는 최종 통과를 위해 사용될 수있다. 그러나, 이것은 더 많은 시간하고 집중 작동 할 수 있습니다.
qPCR에 측정의 gDNA를 역시 여기에 언급 된 프로토콜 또는 배양 세포에서 gDNA를의 분리에 대한 시판 키트를 통해 정제 할 수있다. 시판되는 키트를 사용하여 프로토콜 하루 단축 할 수 있지만, 감염된 세포에 존재하는 HCAdV 게놈 사본의 변화 부분이 사용 키트에 따라, 정제 중에 손실 될 수있다. 따라서 HCAdV 게놈 단계 7.4에서 제시 한 방법)에 비해 Q-PCR 측정을 다음에 약간 과소 대표 될 것입니다.
Obtai마지막 벡터 준비 네드 총 감염 역가가 1 × 10 5 × 10 11 감염성 입자 하나의 스피너 플라스크 범위에서 유래. 이 양은 시험 관내 실험에서 수많은 수행하기에 충분하다. 생체 내 실험에서 또한, 표적 세포에 의존하는 여러 실시 할 수있다. 예를 들어, 전신 투여 후 충분한 간 전달을 달성하기위한 1 × 109 감염성 입자가 요구된다.
요약하면, 광범위한 세포 친 화성 및 HCAdV의 개선 된 안전성 프로파일과 함께 캡시드 - 개질 된 아데노 바이러스를 생성 할 수있는 가능성은 모든 바이러스 유전자의 결여는 이러한 HCAdV 벡터 시스템 유전자 치료 응용을위한 매우 유용한 도구를 렌더링하는 벡터.
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Disclosures
저자는 그들이 더 경쟁 재정적 이익이 없다는 것을 선언합니다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| I-CeuI | New England Biolabs | R0699S | restriction digest |
| PI-SceI | New England Biolabs | R0696S | restriction digest |
| T4 Ligase | New Engand Biolabs | M0202S | ligation |
| SwaI | New England Biolabs | R0604S | restriction digest |
| NotI | New England Biolabs | R0189S | restriction digest |
| Calf Intestinal Alkaline Phosphatase (CIP) | New England Biolabs | M0290S | dephosphorylation of digested plasmids |
| Hygromycin B | PAN Biotech | P02-015 | selection of CRE expressing 116 cells |
| DMEM | PAN Biotech | P04-03590 | Hek293T cell culture medium |
| Minimal Essential Medium (MEM) Eagle | PAN Biotech | P04-08500 | 116 cell culture medium |
| Dulbecco’s phosphate buffer saline (DPBS) | PAN Biotech | P04-36500 | washing of cells, resuspension of cells |
| 250-ml storage bottle | Sigma | CLS430281-24EA | infection of 116 cells grown in suspension |
| 500-ml PP CentrifugeTubes | Sigma | CLS431123-36EA | sedimentation of cells from suspension culture |
| Spinner flask | Bellco | 1965-61030 | growth of 116 cells in suspension |
| Ultra Clear Ultracentrifuge tubes | Beckmann Coulter | 344059 | density gradient centrifugation |
| Ultracentrifuge | Beckmann Coulter | density gradient centrifugation | |
| SW-41 rotor | Beckmann Coulter | density gradient centrifugation | |
| Spectrum Laboratories Spectrapor Membrane | VWR | 132129 | dialysis tubing |
| ready-to-use dialysis cassettes | Thermo | 66383 | dialysis |
| one shot DH10B electrocompetent E. coli | invitrogen | C4040-52 | transformation of ligation reactions |
| PureYield Plasmid Midiprep System | Promega | A2495 | midiprep |
| peqGOLD Tissue DNA Mini Kit | Peqlab | 12-3396-02 | isolation of genomic DNA |
| SuperFect Transfection Reagent | Qiagen | 301305 | tranfection of 116 cells |
| opti MEM (10% FBS) | Gibco | 31985-062 | transfection of 116 cells |
| iQ SYBR Green Supermix | BioRad | 170-8882 | q-PCR |
| CFX 96 C1000 touch | Biorad | qPCR machine | |
| Phenol/Chloroform/Isoamyl alcohol | Carl Roth | A156.1 | purification of DNA |
| Cesium chloride | Carl Roth | 8627.1 | density gradient centrifugation |
| sodium acetate 99% | Carl Roth | 6773.2 | DNA precipitation |
| LB medium | Carl Roth | X968.3 | bacterial growth medium |
| ethanol 99.8% pure | Carl Roth | 9065.5 | DNA precipitation and washing |
| SDS 99.5% | Carl Roth | 2326.2 | lysis buffer |
| EDTA | Carl Roth | 8043.2 | lysis buffer |
| Tris-HCl 99% | Carl Roth | 9090.3 | dialysis buffer/ lysis buffer |
| glycerol 99.5% | Carl Roth | 3783.1 | dialysis buffer |
| MgCl2 98.5% | Carl Roth | KK36.2 | dialysis buffer |
| NaCl | Carl Roth | 3957.1 | optional dialysis buffer |
| KH2PO4 | Carl Roth | 3904.2 | optional dialysis buffer |
| sucrose | Carl Roth | 9286.1 | optional dialysis buffer |
| Na2HPO4x2H2O | Carl Roth | 4984.2 | optional dialysis buffer |
| 1.5-ml tubes | sarstedt | 72,730,005 | storage of virus preparations at -80 °C |
References
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- Parks, R. J., et al. A helper-dependent adenovirus vector system: removal of helper virus by Cre-mediated excision of the viral packaging signal. Proc Natl Acad Sci U S A. 93 (24), 13565-13570 (1996).
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- Morral, N., et al. High doses of a helper-dependent adenoviral vector yield supraphysiological levels of alpha1-antitrypsin with negligible toxicity. Hum Gene Ther. 9 (18), 2709-2716 (1998).
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- Ehrhardt, A., et al. A gene-deleted adenoviral vector results in phenotypic correction of canine hemophilia B without liver toxicity or thrombocytopenia. Blood. 102 (7), 2403-2411 (2003).
- Cots, D., Bosch, A., Chillon, M. Helper dependent adenovirus vectors: progress and future prospects. Curr Gene Ther. 13 (5), 370-381 (2013).
- Mizuguchi, H., Kay, M. A. Efficient construction of a recombinant adenovirus vector by an improved in vitro ligation method. Hum Gene Ther. 9 (17), 2577-2583 (1998).
- Mizuguchi, H., Kay, M. A. A simple method for constructing E1- and E1/E4-deleted recombinant adenoviral vectors. Hum Gene Ther. 10 (12), 2013-2017 (1999).
- Ehrhardt, A., Kay, M. A. A new adenoviral helper-dependent vector results in long-term therapeutic levels of human coagulation factor IX at low doses in vivo. Blood. 99 (11), 3923-3930 (2002).
- Jager, L., et al. A rapid protocol for construction and production of high-capacity adenoviral vectors. Nat Protoc. 4 (4), 547-564 (2009).
- Sambrook, J., Russell, D. W. Molecular Cloning: A Laboratory Manual. 1-3, Cold Spring Harbor Laboratory Press. New York. (2001).
