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Artigo de método

G2-seq: Uma alta taxa de transferência baseada no sequenciamento técnica para identificar a tarde replicando regiões do genoma

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DOI:

10.3791/56286

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22 de março de 2018

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Neste artigo

Resumo

Nós descrevemos uma técnica de combinação de citometria de fluxo e sequenciamento de alto throughput para identificar regiões de replicação finais do genoma.

Resumo

Inúmeras técnicas têm sido desenvolvidas para acompanhar o progresso da replicação do DNA através da fase S do ciclo celular. A maioria destas técnicas tem sido direcionada para elucidação do local e hora de início da duplicação do genoma, ao invés de sua conclusão. No entanto, é fundamental que nós entendemos de regiões do genoma que são última para concluir a replicação, porque essas regiões sofrem níveis elevados de quebra cromossômica e mutação, e eles têm sido associados com doenças e envelhecimento. Aqui descrevemos como nós estendemos uma técnica que tem sido usada para monitorar a iniciação de replicação para em vez disso, identificar as regiões do genoma última a replicação completa. Esta abordagem é baseada em uma combinação de citometria de fluxo e sequenciamento de alto rendimento. Embora este relatório centra-se sobre a aplicação desta técnica a levedura, a abordagem pode ser usada com qualquer uma das células que pode ser classificada em um citômetro de fluxo de acordo com o conteúdo de DNA.

Introdução

Replicação do genoma eucariótico é iniciada em vários locais discretos, chamados origens de replicação, de que a replicação garfos procedem em ambas as direções (revistas em Fragkos et al, 20151). Origens variam em seu tempo e a eficiência de queima, e várias técnicas foram desenvolvidas para monitorar a atividade de origem de replicação e elucidar as causas desta variação. A atividade de origens individuais pode ser inferida níveis de single-stranded DNA2, que se forma em torno de origens ativas, ou por meio de eletroforese em gel 2D para monitorar a replicação específico intermediários3....

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Protocolo

1. preparação de células para Flow Cytometry classificação

  1. Inocular tubos de ensaio de 15 mL contendo 8 mL de caldo YEPD tal que as culturas atingem uma densidade de 5 x 106 a 1,5 x 107 células / mL após crescimento durante a noite (ver discussão Nota 1).
  2. Spin para baixo de células de levedura (1.400 x g, à temperatura ambiente ou 4 ° C) em um tubo de centrifugação de tampa de rosca 15 mL por 5 min, Ressuspender as células em 1,5 mL de etanol a 70% e transferir para um tubo de microcentrífuga de 1,6 mL, deixando este sentar-se por 1h à temperatura ambiente ou pelo menos 3 h no gelo ( podem ser armazenados indefinidamente a 4 °....

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Resultados

Temos utilizado o procedimento descrito acima para identificar sites replicação finais no fermento de brotamento. Esta abordagem usando uma região de replicação final conhecida em um cromossomo artificial de teste provou a técnica para ser precisa e confiável. Nossos resultados também demonstraram a importância biológica da conclusão atempada da replicação, mostrando que uma tarde região replicam no cromossomo 7, que identificamos como replicação final com base nos nossos resultados de G2.......

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Discussão

Enquanto esta técnica é robusta e relativamente direta, deve ser prestada especial atenção ao seguinte:

(1) recomendamos que culturas crescem pelo menos 12 h antes que eles atinjam a fase de registo, desde que diferenças se manifestar no ciclo celular distribuições se culturas são colhidas após ter alcançado a densidade desejada apenas 4 h após a inoculação. Nossa suposição é que uma distribuição de ciclo celular que atingiu um equilíbrio relativamente estável melhor representa uma distribuiçã.......

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Divulgações

Os autores não têm nada para divulgar.

Agradecimentos

Este trabalho foi apoiado por grant GM117446 NIH de A.B.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Kit de DNA Genômico YeaStarGenesee Scientific11-323
1 µ M SYTOX GreenThermoFisher57020ressuspender em 50 mM de citrato de sódio, pH 7,2
50 mM de citrato de sódio, pH 7,2
Solução de RNase (0,25 mg / mL)SigmaR65130,25 mg / mL RNaseA ressuspenso em 50 mM de citrato de sódio, pH 7,2, ferver a solução de RNase por 10 minutos antes do primeiro uso apenas, e a partir daí armazenar a -20°
solução de proteinase K (20 mg / mL)ThermoFisher / Invitrogen25530-015ressuspende em 10 mM Tris, pH 7,5, 2 mM CaCl2, 50% de glicerol, armazenar a -20° C
Modelo 50 Desmembrador SônicoFisher ScientificFB50A220
BD Biosciences FACSAria IIBD Biosciences644832
Colunas Zymo-spin IIIZymo ResearchC1005
Qubit dsDNA Kit de Ensaio HSThermoFisherQ32851
Qubit 3.0 FluorômetroThermoFisherQ33216
Covaris Modelo LE220 Ultrasonicator FocadoCovaris500219
Illumina TruSeq DNA LT Kit de Preparação de AmostrasIllumina15026486
Illumina HiSeq 2500instrumento IlluminaSY– 401– Software de alinhamento 2501
gsnapsoftware de código aberto / Genentechhttp://research-pub.gene.com/gmap

Referências

  1. Fragkos, M., Ganier, O., Coulombe, P., Mechali, M. DNA replication origin activation in space and time. Nat Rev Mol Cell Biol. 16, 360-374 (2015).
  2. Santocanale, C., Diffley, J. F. A Mec1- and Rad53-dependent checkpoint controls late-firing origins of DNA replication. Na....

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Reimpressões e permissões

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