הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

מודל טרום קליני להעריך את ההתאוששות המוח לאחר שבץ חריף בחולדות

8.2K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/60166

⸱

6 בנובמבר 2019

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Beijing Yinfeng Dingcheng Biological Engineering Technology Ltd., 2Hulunbuir People's Hospital, 3Shandong Qilu Stem Cell Engineering Co. Ltd.

* These authors contributed equally

במאמר זה

סיכום

מטרת מחקר זה היא להקים ולאמת מודל בעלי חיים עבור מחקר בשלבים שחזור והצלה של איסכמיה של המוח על ידי בדיקת אוטם המוח ואת הפונקציה sensorimotor לאחר חסימה באמצע עורק מוחין/reperfusion (MCAO/R) לאחר 1-90 ימים בחולדות

תקציר

מטרת מחקר זה היתה להקים ולאמת מודל איסכמיה של המוח בעלי חיים בשלבי ההחלמה והסקוולה. עורק המוח האמצעי סגר/reperfusion (MCAO/R) מודל בחולדות ממין זכר-דאולי נבחר. על ידי שינוי משקל העכברוש (260-330 גרם), את סוג הברק חוט (2636/2838/3040/3043) ואת המוח סיכונים זמן (2-3 h), הציון של Longa גבוה יותר, נפח סיכונים גדול יותר יחס הצלחה מודל גדול הוקרן באמצעות הציון של Longa ו TTC כתמים. מצב מודל אופטימלי (300 g, 3040 בורג חוט, 3 h סיכונים זמן המוח) נרכש והשתמשו בתקופת התצפית 1-90 יום לאחר reperfusion באמצעות הערכה של sensorimotor פונקציות ונפח סיכונים. בתנאים אלה, מבחן ה-סימטריה הדו היה הבדל משמעותי בין 1 ל 90 ימים, ואת מבחן רשת הליכה היה הבדל משמעותי בין 1 ל 60 ימים; שני ההבדלים יכולים להיות מבחן פונקציונלי sensorimotor מתאים. כך, המצב המתאים ביותר של מודל עכברוש הרומן בשלבי ההתאוששות ובשלבים של איסכמיה המוח נמצא: 300 g חולדות שעברו MCAO עם בורג 3040 המוח סיכונים ולאחר מכן מחדש. המבחנים הsensorimotor פונקציונליים המתאימים היו בדיקת סימטריה דו-צדדית ומבחן הליכה ברשת.

מבוא

איסכמיה של המוח מחולקת לשלושה שלבים עם מחווני שלאחר שבץ שונים: השלב האקוטי (בתוך שבוע), שלב ההחלמה (1 שבוע עד 6 חודשים), ובשלב הסקוויה (יותר מ -6 חודשים). כיום, רוב המחקרים מתמקדים בשלב אקוטי של איסכמיה של המוח בשל השפעתה המשמעותית ומודלים רב יחסיים מחקר1,2,3. עם זאת, לא ניתן להתעלם מההתאוששות ומשלבים הרצף של איסכמיה מוחית עקב סיבוך לטווח ארוך של מוגבלויות. לכן, מטרת מחקר זה היא לחקור מודל יציבה, אמין בעלי חיים פשוטה יחסית כדי לחקור את שלבי ההתאוששות והרצף של איסכמיה של המוח.

בין הדגמים הרבים של איסכמיה של המוח ניסיוני, אנו משתמשים בעורק מוחין באמצע הסגר (MCAO) באמצעות בורג פתיל החדרת לתוך עורק המוח האמצעי הימני (MCA). מודל זה דומה שבץ האדם, אשר יכול לייצר כרכים סיכונים גדולים, התוצאה של הפרעות התנהגותיות רבות הקשורות לקו, והוא יכול לאפשר reperfusion דם (R) על ידי הסרת הברק פתיל4,5,6. MCAO/R נחשב גם מודל החיים תקן זהב של איסכמיה של המוח7. יתר על כן, חומרת הפגיעה במוח תלוי בקוטר ואת אורך הכניסה של בורג פתיל, משך של איסכמיה המוח, ואת משקל בעלי חיים (חולדות גדול יותר יש מוח גדול יותר כלי מוחין עבה)8. לכן, על ידי שינוי סוג הברק פתיל, את הזמן הסיכונים, ואת משקל החולדה, מודל מתאים ניתן למצוא עבור שלבי ההתאוששות והרצף של איסכמיה של המוח בחולדות MCAO/R. כדי לאמת את המודל עכברוש, ביצעו יום אחד, 35 יום, 60 יום, ו 90-יום מחקר של מודל MCAO/R באמצעות כתמים TTC ו sensorimotor פונקציות ניסויים (בדיקת סימטריה דו צדדית, מבחן הליכה הרשת, מבחן rotarod ומבחן חבל הרמה).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

הנוהל והשימוש בנושאי בעלי חיים אושרו על ידי המכון הלאומי לבריאות לטיפול ושימוש בחיות מעבדה. פרוטוקול זה מותאם במיוחד עבור המבחנים של סגר עורק המוח האמצעי/reperfusion (MCAO/R) ו sensorimotor פונקציה.

1. תכנון וקיבוץ ניסיוניים

  1. השתמש עכברוש MCAO/R מודל למסך המוח חולדה השיטה מודל שיטת עם פגיעה חמורה יותר במוח ויחס הצלחה מודל גדול יותר באמצעות הציון של Longa ו TTC כתמים.
    1. בצעו את הניסוי על עכברי הג-דאולי הזכרים במשקל 260-330 גרם שגילם הוא 7-9 שבועות. משקל עכברוש אמיתי הוא 275 ± 15 g עבור 275 g, 300 ± 10 g עבור 300 g, ו 320 ± 10 g עבור 320 g.
    2. השתמש בשבע הקבוצות הבאות (משקל, סוג בורג פתיל, סיכונים time): קבוצה 1 עם 15 חולדות (275 g, 2636, 2 h); קבוצה 2 עם 15 חולדות (275 g, 2636, 3 שעות); קבוצה 3 עם 15 חולדות (275 g, 2838, 2 h); קבוצה 4 עם 15 חולדות (275 g, 2838, 3 h); קבוצה 5 עם 13 חולדות (300 g, 3040, 3 h); קבוצה 6 עם 10 חולדות (320 g, 3040, 3 h); קבוצה 7 עם 13 חולדות (300 g, 3043, 3 h).
  2. ללמוד את המצב התאוששות מוחית על-ידי כתמים TTC, ולהשתמש בדיקות sensorimotor function מתאים כדי לציין את לטווח ארוך הפונקציונליות הפונקציונלית על ידי מבחן סימטריה דו-סימטרי, מבחן הליכה ברשת, rotarod בדיקה ומתיחת חבל לאחר 1, 35, 60, 90 ימים של MCAO/R.
    1. השתמש בחולדות הגברי-דאולי במשקל 300 ± 10 g כי הם 8 עד 9 שבועות של גיל.
    2. השתמש בחמש הקבוצות הבאות: שליטה (רגילה) קבוצה עם 20 חולדות; קבוצה של יום אחד עם 16 חולדות; קבוצה 35 של יום עם 16 חולדות; קבוצה 60 של יום עם 17 חולדות; וקבוצת 90 ליום עם 19 עכברושים.
  3. לאחר הציון של Longa בשלב 1.1 או sensorimotor בדיקות תפקודית בשלב 1.2, הרדים ולערוף את ראשו של כל חולדות עבור כתמים TTC.

2. הקמת מודל MCAO/R חד צדדי בחולדות9

הערה: במהלך המבצע, השתמש במיקרולקחיים בעדינות כדי למנוע שבירת כלי הדם. הימנע נזק לעצבים ולכלי דם אחרים בצוואר החולדה כאשר כלי הקיבול מבודד. טיפול יש לנקוט כדי להציג טכניקה מתאימה אספטי עבור כל ההליכים כירורגי הישרדות. הטכניקה מומחש מאוחר יותר בווידאו יש לתרגל במהלך ההליך כולו.

  1. במהלך הניתוח, לשמור על טמפרטורת הגוף של חולדות ב 37.0 ± 0.5 ° c בתרמוסטט בעלי חיים קטנים. הכינו 4 התפרים 5-0 ס מ.
  2. הגדר את קצב זרימת החמצן של מכונת הרדמה בעלי חיים קטנה (עם מכשיר לטיפול בפסולת גז) ב 0.4-ליטר/דקה והריכוז של isofלאנה להיות 5%. מניחים את החולדה. במכונת ההרדמה
  3. לאחר שהחיה התעלפה, הניחו את העכברוש על שולחן כירורגי. לחבר את הפה של החולדה למסכה של מכונת ההרדמה (שיעור זרימת החמצן נשאר ללא שינוי; להתאים את הריכוז של isofלאנה להיות 3%). ודא כי החיה נכנס הרדמה עמוקה על ידי התבוננות בחוסר מתח הגפיים, רפלקסים הקרנית, וכאב.
  4. תקן את איבריו לשכב על שולחן הניתוחים עם תחבושות נייר (או כלים אחרים).
  5. הסר את מעיל הצוואר עם מכונת גילוח חשמלית ועקר עם 75% אלכוהול (שפתי-העין הוא טוב יותר). . תקן את הפה של העכברוש עם קרס
  6. חותכים 2-3 ס מ לאורך צורת האורך המרכזי של הצוואר עם מספריים אופטלמולוגי.
  7. . הפרד את עורק העורק המשותף הפרד את השריר התת-עורי. עם מלקחיים אופטלמולוגיות השתמש במפסק תוצרת בית כדי לחשוף במלואו את שדה הראייה. לאחר הפרדת השריר הקדמי של קנה הנשימה עם מלקחיים אופטלמולוגי, נפרדים לאורך גיד הירך הימני העין עד העורק הראשי המשותף גלוי.
  8. לבודד את עורק הראש המשותף, עורק הראש החיצוני ועורק הראש הפנימי עם מלקחיים אופטלמולוגי. ליגייט העורק הראשי המשותף (הקשר הקשה), עורק הראש החיצוני רחוק מקצה הלב (הקשר הקשה), עורק הראש הפנימי (קשר רופף) עם 5-0 תפרים. קו עורק הראש החיצוני ליד סוף הלב עם 5-0 תפרים.
  9. הוסף בורג הליך משנה. חותכים פתח קטן בעורק הראש החיצוני באמצעות מספריים אופטלמולוגי ומכניסים בעדינות את הבורג. שהיה בקשר רופף. וחתך את עורק העורק החיצוני
    1. שחררו את הקשר הרופף של עורק הראש הפנימי והמשיכו להוסיף את הברק לתחילת עורק המוח האמצעי (תפר מסומן). ואז לחתוך את בורג החוט החשוף.
  10. אחרי הזמן האיסכמי הוא הגיע (2-3 h), לתקן את השבר של עורק הראש החיצוני עם מיקרומלקחיים אחד, ובעדינות לשלוף את הבריח פתיל עם מיקרומלקחיים אחרים. כאשר הקצה הקדמי של בורג החוט הוא נסוג לחלוטין מן העורק הראשי הפנימי, לקחת את העורק הראשי החיצוני שהיה מצופה עם 5-0 תפרים, ולאחר מכן לשלוף את הבורג פתיל לחלוטין.
  11. שחרר את עורק הראש המשותף, ואת מיור ~ 50,000 U של אבקת נתרן על פני השטח של הפצע כדי למנוע זיהום. תפר תת שרירי ועור עם 4 תפרים.
  12. תן ~ 0.2 mL של תמיסת מלח סטרילי לחולדה דרך הפה באמצעות מזרק 1 מ מ (SQ-עט הזרקת הוא טוב יותר) כדי למנוע מחסור במים הניתוח לאחר הצבת חולדה בחזרה לכלוב.
  13. בחר את בעלי החיים לאחר 24 שעות של reperfusion על פי הציון של Longa10. בחר בעלי חיים עם הציון של Longa של 1 עד 3 עבור כתמים TTC הבא בשלב 1.1, ובעלי חיים עם הציון של Longa של 2 על 3 ציון עבור 1, 35, 60, 90 ימים לימוד בשלב 1.2.
    הערה: הציון של Longa10: 0 ציון, אין גרעון נוירולוגי; 1 ציון, אי להרחיב את החוק לקידמה שמאל; 2 ציון, מסתובב שמאלה; 3 ציון, נפילה שמאלה; 4 ציון, לא יכול ללכת ספונטנית ויש לו תודעה מדוכאת.
  14. לנתח את הציון של Longa על ידי בדרך אחת ANOVA. ערכים המוצגים מייצגים את הממוצע ± ש גויטיין P < 0.05 מציינים הפרש.

3. TTC צביעת

הערה: התבנית והלהב ממוח החולדה חייבים להיות מקורר מראש במקרר של 20 ° c לפני השימוש כדי למנוע הדבקה הנגרמת על ידי הבדל טמפרטורה גדול. במהלך הצביעת, למנוע הדבקה בין פרוסות המוח לבין צלחת התרבות, אשר יכול לגרום להכתמים מספיק.

  1. הרליד החולדה על ידי הזרקה תוך הצפק של 400 מ"ג/ק"ג כלוראל לאחר הציון של Longa בשלב 1.1 או בדיקות תפקודית sensorimotor בשלב 1.2.
  2. הוא ערוף את ראשו של העכברוש עם מספריים כירורגיים להסיר את המוח עם מספריים כירורגיים מלקחיים הומוסטטי.
  3. שים את המוח במקרר ב -20 ° c במשך 30 דקות כדי להקל על החיתוך.
  4. להסיר את המוח מהמקרר ולמקם אותו בתבנית מקורר המוח החולדה פרוסת. חותכים את המוח לשישה חלקים רצופים בעובי של 2 מ"מ עם להב מקורר.
  5. הכתם את הסעיפים עם 2% 5-triphenyl-2H-טטרזוכלוריד (TTC) בצלחת התרבות 6-היטב.
  6. התרבות הסעיפים של 30 עד 60 דקות ב-37 מעלות צלזיוס במיטת טלטול. הפוך את הסעיפים כל 10 דקות עד אזור איסכמיה של המוח ואת האזור הרגיל הם בבירור לבן ואדום.
  7. לסדר את פרוסות המוח באופן אנכי מהגב לקדמת המוח. השתמש בסרגל כדי לוודא שהאורך הכולל של כל שורה זהה. צלם תמונות עם מצלמה דיגיטלית.
  8. נתח את אמצעי האחסון הסיכונים.
    1. טרום טיפול בתמונה עם תוכנת photoshop
      1. יבא את התמונה באמצעות photoshop CS6. 00:00-00:14
      2. לחץ על בחירה כדי לבחור את פרוסות המוח, לחץ על בחר | הופכי. 00:15-00:36
      3. לחץ על הקידמה כדי לבחור בשחורולחץ על אישור. 00:37-00:42
      4. הקש Alt + Delete כדי למלא את צבע הרקע, ו- CTRL + D כדי לבטל את הבחירה. 00:43-00:46
      5. לחץ על קובץ | שמור לשולחן העבודה. 00:47-01:08
    2. הטיפול מראש את התמונה עם תוכנת תדמית Pro Plus.
      1. פתח תמונה Pro פלוס 6.0 תוכנה ולייבא את התמונה. 01:09-01:24
      2. לשינוי פגם, התאימו את הבהירות בעזרת הכלי שיפור ניגודיות , כך שהרקע יהיה שחור. 01:25-01:37
      3. השתמש בכלי חציון במסנן כדי להסיר את הסימונים. 01:38-01:46
    3. לחשב את האזור השמאלי (נורמלי) המוח עם תוכנת Pro פלוס תוכנה
      1. בחרו צבע בעזרת פילוח והתאימו את הערך של H/S/I, כך שפרוסות המוח מופרדות מהרקע השחור. 01:47-02:12
      2. חזור לספירה | . בגודלהזה 02:13-02:16
      3. לחץ על הספירה | פצל אובייקטים בעריכה כדי להפריד את המוח מהקו האמצע. התוכנה להבדיל באופן אוטומטי את אזורי המוח השמאלי והימני. 02:17-02:49
    4. לחשב את אזור המוח סיכונים הנכון עם תוכנה Pro Plus התמונה
      1. יישום שלב 3.8.1-3.8.2. 02:50-03:14
      2. בחר ספירה | . בגודלהזה 03:15-03:21
      3. לחץ על צייר | כלי מיזוג אובייקטים בעריכה. בחר באופן ידני את אזור האיסכמי ולחץ על Count כדי לחשב את אזור האיסכמי. 03:16-05:31
    5. לחשב את האזור בריאות המוח עם תוכנת Pro פלוס תוכנה
      1. יישום שלב 3.8.1-3.8.2. 05:32-06:44
      2. בחר צבע באמצעות פילוח והתאם את הערך של H/S/I, כך שהחלק הרגיל של פרוסות המוח מופרד מהרקע השחור. 06:45-07:10
      3. חזור לספירה | גודל ולחץ על הספירה כדי לחשב את האזור. 07:11-07:21
      4. לחץ על לפצל אובייקטים בעריכה כדי להפריד את המוח מאמצע הקו. התוכנה להבדיל באופן אוטומטי את אזורי המוח השמאלי והימני. 07:22-08:08
  9. חישוב אמצעי האחסון הסיכונים (%) והסיכונים וכיווץ אמצעי אחסון (%)

    סיכונים נפח (%) = [אזור ימני סיכונים/(2 x אזור המוח השמאלי)] x 100.
    סיכונים וכיווץ נפח (%) = [(שמאל אזור המוח הימני באזור המוח)/(2 x באזור המוח השמאלי)] x 100.

    הערה: המוח הימני הוא החלק הנפגע. הנתונים נותחו על-ידי ANOVA בכיוון אחד. ערכים המוצגים מייצגים את הממוצע ± ש גויטיין P < 0.05 מציינים הפרש.

4. הערכה של פונקציה sensorimotor

הערה: חולדות (300 g, 3040 בורג החוט, 3 המוח סיכונים זמן) עם הציון של Longa של 2 לפני 3 נבחרו לבצע ניסויים sensorimotor פונקציה מתוך 1-90 ימים. שמרו על שקט ואל תפריע לבעלי החיים בתקופה זו של הלימודים. הנתונים נותחו על-ידי ANOVA בשתי כיוון. ערכים המוצגים מייצגים את הממוצע ± ש גויטיין P < 0.05 מציינים הפרש.

  1. מבחן א-סימטריה הדו11
    1. סרט נייר עטוף (5 ס מ אורך, 0.8 ס מ רחב) על החלק saphenous של כל חוק לעכל של חולדה שלוש פעמים עם לחץ שווה.
    2. עבור כל עכברוש, להקליט את מספר הפעמים כל החוק לקידמה הוא קשר והקלטת הוסר ב 5 דקות עם המצלמה, כולל כף מושפע וזמני מושפע.
    3. לאחר 30 דקות, חזור על שלבים 4.1.1 ו-4.1.2 שוב.
    4. חשב את הערך הממוצע של ההטיה הsensorimotor (%)
      Sensorimotor הטיה (%) = (מושפע מפעם לפעם כפה מושפעות)/(כפה מושפעים פעמים + כפה מושפעות) x 100
  2. מבחן רשת-הליכה
    1. מניחים את העכברוש במרכז פלטפורמת שטח מוגבה (שטח: 1 m2; גובה: 90 ס מ) עם פתחי הרשת של 2.5 ס מ2.
    2. דחף את הירכיים של העכברוש בקלילות כדי לעודד את העכברוש לחצות את משטח הרשת.
    3. הקלט את מספר תקלות הרגל שנעשו על ידי הגפיים מושפע (מימין) ו מושפע (משמאל) ואת מספר השלב הכולל ב 1 דקות עם מצלמה.
    4. חשב את זמני השגיאה:
      זמני שגיאה (%) = [לא מושפע (מימין) האיבר מושפע (שמאל) הגפה]/מספר השלב הכולל x 100.
      הערה: מספר הצעדים הכולל מתחת לנתוני 20-השלבים הוסרו.
  3. Rotarod test12,13
    1. הגדר את העכברוש מסתובבת העכבר מנגנון עייפות (קוטר 90 מ"מ) של חולדות באמצעות התוכנה התומכת מהירות של 13 סל ד על פני תקופה של 5 דקות במחשב.
    2. הפעל את תוכניות המחשב ומניחים את העכברוש על rotarod לבי באותו זמן.
    3. לסיים את המשפט אם העכברוש נופל מן השלב או ממשיך ללכת 5 דקות ולהקליט את הזמן מסתובבת.
    4. . החולדה תנוח בעוד 30 דקות
    5. חזור על הצעדים 4.3.2-4.3.4 פעמיים ובחר את הערך המירבי כך שיהיה הזמן האחרון לסיבוב.
  4. מבחן חבל הרמה14
    1. מניחים את הכלי חבל הרמה (70 ס מ גבוה; החבל הוא 0.2 ס"מ קוטר ו 40 ס מ ארוך) על השולחן.
    2. החולדה תחזיק את החבל עם. התחת שלו ותתלה את העכברוש
    3. תעד את זמן התלייה וחשב את התוצאות.
      הערה: ציון של 3:0-2 על החבל; ציון של 2:3-4 על החבל; ציון של 1:5-6 על החבל; ציון של 0: יותר מ 7 על החבל.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

באמצעות ההליך הנ ל מודל MCAO/R עם הציון של Longa וצביעת TTC, טיפולים שונים של משקל ממוצע (275/300/320 g), סוגי בריחים (2636/2838/3040/3043; שולחן 1) ושעות האיסכמי (2-3 h) ו 1 יום reperfusion שימשו למסך עבור המודל איסכמיה המוח אופטימלית בחולדות. מודל פרמטרים של 300 גרם משקל, 3040 בורג חוט, ו 3 h המוח סיכונים זמן היו המתאימים ביותר עבור אוטם מוחין הגדול ביותר, הציון של Longa הגבוהה ביותר ויחס הצלחה מודל הגדול ביותר. זה השתפר באופן משמעותי על הטיפול המקובל של 275 גרם משקל, 2...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

דגמים רבים הקמת שיטות ואינדיקטורים התנהגותיים כי הם משמשים היטב איסכמיה מוחית חריפה לא יכול להיות שינויים משמעותיים בשלבים ההתאוששות והרצף של איסכמיה של המוח16,17. עם זאת, מספר המטופלים עם הסכמי המוח של שלבי ההתאוששות והרצף הוא הגדול ביותר. זה חיוני כדי לבחור מודל מתאים בעלי חיים עבור שלבי ההתאוששות והרצף של שבץ איסכמיה.

אנו משתמשים מודל MCAO/R בחולדות כדי למסך את המשקל המתאים של חולדות (260-330 g), סוג של בורג החוט (2636/2838/3040/304...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

. למחברים אין מה לגלות

תודות

עבודה זו נתמכת על ידי הקרן הלאומית למדע הטבע של סין (81603315, 81603316), מפתח R & D תוכנית של מחוז ג'יאנגשי בסין (20171ach80001), פרויקטים תעשייתיים ושיתוף פעולה אקדמי במכללות ואוניברסיטאות של מחוז פוג'יין ב סין (2018Y41010011).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
מיקרוסקופ אנטומיLeica (גרמניה)S8מכשיר הפעלה מיקרוסקופי
להבג'לט/חיתוך קטעי מוח
בטמפרטורה קבועה מיטה רועדתTaicang מפעל ציוד ניסיוניTHZ-Cכדי לשמור על חלקי המוח מוכתמים באופן שווה ובטמפרטורה קבועה
מצלמה דיגיטליתCanon700Dלצילום תמונות של TTC מכתים
מכונת גילוח חשמליתשנחאי Yuyan Scientific Instruments Co., Ltd.3000#הסרת שיער מצוואר חולדות
מלקחיים המוסטטישנחאי מכשיר רפואי ושות', בע"מ14 ס"משימוש להסרת מוח
Image Pro Plus תוכנהמדיה Cybernetics Inc.6.0נתח את נפח האוטם
IsofluraneRWD מדעי החיים217170702גז הרדמה
מיקרו-מלקחייםשנחאי Jinzhong Medical Devices Co., Ltd.10 ס"ממיקרומניפולציה של כלי הדם
MicroshearShanghai Jinzhong Medical Devices Co., Ltd.10 ס"ממיקרומניפולציה של כלי הדם
מלקחיים עינייםשנחאי Jinzhong מכשירים רפואיים ושות', בע"מ10 ס"מאנטומיה של עור ושרירים עזר
מספריים עינייםשנחאי Jinzhong מכשירים רפואיים ושות', בע"מ10 ס"משימוש לחיתוך עור הצוואר
עובש פרוסת מוח חולדהשנחאי Yuyan Scientific Instruments Co., Ltd.400 גרםלחיתוך סטנדרטי ואחיד של רקמת מוח
מנגנון עייפות בר מסתובב עכברושAnhui Zhenghua מכשיר וציוד ביולוגי ושות 'בע"מZH-300Bלבדיקת התפקוד הסנסורי-מוטורי
מכונת הרדמה לבעלי חיים קטניםשנחאי Yuyan Scientific Instruments Co., Ltd.ABM3000מכונת הרדמה בגז
תרמוסטט לבעלי חיים קטניםבייג'ינג Damida Technology Co., Ltd.DM.7-YLS-20Aכדי לשמור על טמפרטורת גוף בעלי חיים קבועה במהלך הניתוח
מספריים כירורגייםשנחאי מכשיר רפואי ושות', בע"מ16 ס"משימוש לעריפת ראש והסרת מוח
תפרשנחאי Jinhuan מכשירים רפואיים ושות', בע"מ4-0 / 5-0שימוש לתפרי עור ושרירים / שימוש לקשירת כלי דם
חוטבייג'ינג Cinontech Co. Ltd.2636/2838/3040/3043-A4חסימה של עורק המוח האמצעי בחולדות
5-triphenyl-2H-tetrazolium chloride (TTC)SigmaLOT#BCBP3272Vמגיב צביעה בחתך המוח
בורג

מקורות

  1. Kong, L. L., et al. Neutralization of chemokine-like factor 1, a novel C-C chemokine, protects against focal cerebral ischemia by inhibiting neutrophil infiltration via MAPK pathways in rats. Journal of Neuroinflammation. 11, 112(2014).
  2. Jiang, M., et al. Neuroprotective effects of bilobalide on cerebral ischemia and reperfusion injury are associated with inhibition of pro-inflammatory mediator production and down-regulation of JNK1/2 and p38 MAPK activation. Journal of Neuroinflammation. 11, 167(2014).
  3. Thomas, A., Detilleux, J., Flecknell, P., Sandersen, C. Impact of Stroke Therapy Academic Industry Roundtable (STAIR) Guidelines on Peri-Anesthesia Care for Rat Models of Stroke: A Meta-Analysis Comparing the Years 2005 and 2015. PLoS One. 12, e0170243(2017).
  4. Kumar, A., Aakriti,, Gupta, V. A review on animal models of stroke: An update. Brain Research Bulletin. 122, 35-44 (2016).
  5. Tong, F. C., et al. An enhanced model of middle cerebral artery occlusion in nonhuman primates using an endovascular trapping technique. AJNR Am. Journal of Neuroradiology. 36, 2354-2359 (2015).
  6. Li, F., Omae, T., Fisher, M. Spontaneous hyperthermia and its mechanism in the intraluminal suture middle cerebral artery occlusion model of rats. Stroke. 30, 2464-2470 (1999).
  7. Herson, P. S., Traystman, R. J. Animal models of stroke: translational potential at present and in 2050. Future Neurology. 9, 541-551 (2014).
  8. Abrahám, H., Somogyvári-Vigh, A., Maderdrut, J. L., Vigh, S., Arimura, A. Filament size influences temperature changes and brain damage following middle cerebral artery occlusion in rats. Exp. Brain Res. 142, 131-138 (2002).
  9. Sun, M. N., et al. Coumarin derivatives protect against ischemic brain injury in rats. European Journal of Medicinal Chemistry. 67, 39-53 (2013).
  10. Longa, E. Z., Weinstein, P. R., Carlson, S., Cummins, R. Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats. Stroke. 20, 84-91 (1989).
  11. Smith, E. J., et al. Implantation site and lesion topology determine efficacy of a human neural stem cell line in a rat model of chronic stroke. Stem Cell. 30, 785-796 (2012).
  12. Zhang, S., et al. Protective effects of Forsythia suspense extract with antioxidant and anti-inflammatory properties in a model of rotenone induced neurotoxicity. Neurotoxicology. 52, 72-83 (2016).
  13. Milani, D., et al. Poly-arginine peptides reduce infarct volume in a permanent middle cerebral artery rat stroke model. BMC Neuroscience. 17, 19(2016).
  14. DeGraba, T. J., Ostrow, P., Hanson, S., Grotta, J. C. Motor performance, histologic damage, and calcium influx in rats treated with NBQX after focal ischemia. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 14, 262-268 (1994).
  15. Liu, P., et al. Validation of a preclinical animal model to assess brain recovery after acute stroke. European Journal of Pharmacology. 835, 75-81 (2018).
  16. Zuo, W., et al. IMM-H004 prevents toxicity induced by delayed treatment of tPA in a rat model of focal cerebral ischemia involving PKA-and PI3K-dependent Akt activation. European Journal of Neuroscience. 39, 2107-2118 (2014).
  17. Yang, L., et al. L-3-n-butylphthalide Promotes Neurogenesis and Neuroplasticity in Cerebral Ischemic Rats. CNS Neuroscience & Therapeutics. 21, 733-741 (2015).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

גלה מאמרים נוספים

חסימה של העורק המוחי האמצעימודל של איסכמיה במוח חולדהבדיקות תפקוד סנסורי-מוטוריותניתוח צביעה ב-TTCבדיקת אסימטריה דו-צדדיתבדיקת הליכה על רשתהחדרת בורג חוטנפח אוטם מוחימניעת התייבשות לאחר ניתוחטכניקה כירורגית אספטית
מודל טרום קליני להעריך את ההתאוששות המוח לאחר שבץ חריף בחולדות
צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.