Summary
Этот протокол демонстрирует точное и воспроизводимое измерение потребления кислорода в нечеловеческих островках поджелудочной железы приматов. Методы загрузки на аклетии и покрытие микроплиты обеспечивают основу для эффективного измерения дыхания в других типах культивированных сфероидов.
Abstract
Измерение потребления кислорода в сфероидных кластерах клеток, таких как островки поджелудочной железы ex vivo, исторически было сложным. Мы демонстрируем измерение потребления кислорода с помощью 96-лукосновейной микроплиты, предназначенной для измерения потребления кислорода в сфероидах. В этом анализе, сфероидные микроплиты покрыты клеткой и клей ткани на день до начала асссе. Мы используем небольшой объем клеевого раствора, чтобы стимулировать присоединение к аботам только в нижней части скважины. В день проведения асссея 15 островков загружаются непосредственно в основание каждой скважины с помощью техники, обеспечивающей оптимальное позиционирование островков и точное измерение потребления кислорода. Различные аспекты митохондриального дыхания исследуются фармакологически в нечеловеческих островках приматов, включая аТПл-зависимое дыхание, максимальное дыхание и протонную утечку. Этот метод позволяет для последовательных, воспроизводимых результатов, используя только небольшое количество островков на скважину. Теоретически его можно применять к любым культурным сфероидам аналогичного размера.
Introduction
Для того, чтобы поддерживать нормальный уровень глюкозы в крови, поджелудочная клетка должна чувствовать возвышения в глюкозе и выделять инсулин соответственно. Связь секреции инсулина с уровнем глюкозы напрямую связана с метаболизмом глюкозы и выработкой АТФ через митохондриальную окислительное фосфорилирование. Таким образом, митохондрии играют важную роль в стимул-секретии связи1. Оценка митохондриальной функции клеток может выявить дефекты, которые приводят к нарушению секреции инсулина. Секреция глюкагона клетками поджелудочной железы также тесно связана с митохондриальной функцией2. Хотя увековеченные линии островковых клеток оказались полезными для некоторых типов анализов, физиология этих клеток не точно резюмировать функцию целых островков, как показано на потенцировании секреции инсулина глюкагоном3,4 и ингибирование секреции глюкагона инсулином/соматостатином5,6 в нетронутых островках. Это свидетельствует о необходимости измерения потребления кислорода с помощью целых, нетронутых островков.
Методы измерения респирометрии клеток на случай развития произошли, начиная с использования чувствительных к кислороду флуоресцентных красителей7 и к твердотельным датчикам, которые непосредственно измеряют потребление кислорода8. Первоначально предназначенные для монослойных, адептов клеток, широко используемых систем клеточной культуры пластины оказались неэффективными для островков поджелудочной железы. Поскольку островки естественным образом не прилипают к скважинам, они склонны к вытеснению на периферию культуры, что приводит к неточному измерению потребления кислорода9. Для борьбы с этой проблемой были разработаны специализированные 24-колодчатые пластины с центральной депрессией, которые могли содержатьостровки. Тем не менее, 24-хорошая система пластины была ограничена большим количеством островков требуется (50-80 на скважину) и количество условий, которые могут быть проверены одновременно10. Недавняя разработка 96-колодчатых микроплит, разработанных специально для внеклеточного анализа потока в сфероидах, преодолела эти барьеры, позволив измерить островок с помощью 20 или меньше островков на10.
Здесь мы демонстрируем использование этой системы для измерения потребления кислорода в островках от японской макаки (Macaca fuscata), модель животных с аналогичной биологией островка для людей11,12. В этом протоколе анализируются 15 островков макаки на скважину. В наших руках, 15 островков на хорошо производится более высокое потребление исходного кислорода, чем меньше островков, с надежной активации и подавления дыхания в ответ на фармакологические манипуляции. Мы выделяем шаги по подготовке к ассею, эффективный метод последовательной загрузки островков в центре каждой скважины, и общие проблемы при выполнении этого асссе.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. Подготовка микроплиты и датчика картриджа на день до запуска асссе
Островки были изолированы от трехлетних японских макак, как ранее описано13. Этот метод очень похож на метод, используемый для изоляции островков человека от доноров трупов, но отличается от мышей, в которых панкреата часто раздувается раствором коллагеназы, в то время как животное находится под седативным и до удаления органов. Извлечение на изыма хитов было проведено в соответствии с руководящими принципами Институционального комитета по уходу и использованию животных (IACUC) Национального исследовательского центра приматов штата Орегон (ONPRC) и Орегонского университета здравоохранения и науки и было одобрено ONPRC IACUC. ОНПРК соблюдает Закон о защите животных и положения, применяемые Министерством сельского хозяйства Соединенных Штатов (USDA) и Политикой службы общественного здравоохранения в области гуманного ухода и использования лабораторных животных в соответствии с Руководством по уходу и использованию лабораторных животных, опубликованным Национальными институтами здравоохранения.
- Приготовление сфероидной микроплиты
- Приготовьте 3 мл раствора бикарбоната натрия 0,1 М. Фильтр стерилизовать решение. Мы использовали 0,45 мкм фильтр(Таблица материалов).
- В капюшоне клеточной культуры добавьте 200 кл/кл клея клеток и тканей(Таблица материалов)до 2,8 мл бикарбоната натрия 0,1 М. Затем добавьте 20 кЛ этого раствора в нижней части каждой скважины 96-хорошо сфероидной микроплиты(Таблица материалов). Убедитесь, что пузырьки воздуха удаляются из трубы кончика и только дно пластины покрыто. Покрытие микроплиты предотвращает движение островков вверх по сторонам колодцев, когда препараты добавляются и смешиваются в колодец во время асссе.
ПРИМЕЧАНИЕ: Это только необходимо, чтобы покрыть, как многие колодцы, как будет использоваться для островков, когда планка запущена. Если будет использовано всего несколько скважин, то раствор клея может быть уменьшен соответствующим образом. Клей, используемый в анализе, представляет собой раствор, разработанный из морской мидии. Кроме того, микроплитные скважины могут быть покрыты 20 мкг/мл поли-D-лизин. - Инкубировать тарелку в инкубаторе 37 градусов по Цельсию, некосо 2 в течение одного часа.
- В стерильной среде, аспирный клейный раствор из пластины. Вымойте каждый колодец два раза с 400 qL стерильной воды 37 градусов по Цельсию с помощью многоканальной трубы. Дайте высохнуть воздуху.
- Через 30-40 минут накройте тарелку и храните на ночь при 4 градусах Цельсия.
- Гидратация сенсорного картриджа
- В стерильной среде откройте пакет картриджей датчика(Таблица материалов)и удалите содержимое. Поместите картридж датчика вверх дном рядом с утилитой пластины.
- Заполните каждую скважину утилиты пластины с 200 л стерильной воды и опустите картридж датчика обратно в утилиту пластины. Поместите собранный сенсорный картридж и пластину полезности в инкубатор е37 кВ, не-CO2 на ночь.
- Подготовка Калибранта
- Aliquot 25 мл калибранта(Таблица материалов) в 50 мл конической трубки. Поместите трубку в инкубатор 37 градусов по Цельсию, не-CO2 на ночь.
2. Протокол по подготовке СРЕДСТВ массовой информации, загрузке островков и загрузке сенсорного картриджа в День Асса
- Подготовка средств массовой информации
- До 48,5 мл базовых носителей (минимальный DMEM, см. Таблица материалов),добавить 500 л каждый из 1 мм натрия пируват и 2 мм глутамина. Кроме того, добавьте 496 л из 200 мг/мл глюкозы (окончательная концентрация глюкозы в сми составляет 5,5 мм).
ПРИМЕЧАНИЕ: Базовая концентрация глюкозы была постоянной для этих экспериментов. Тем не менее, глюкоза также может быть использована для стимулирования дыхания в дополнение к фармакологических манипуляций описано удар10. - Подтвердите, что рН составляет 7,4 евро/- 0,1, при необходимости регулируя.
- До 48,5 мл базовых носителей (минимальный DMEM, см. Таблица материалов),добавить 500 л каждый из 1 мм натрия пируват и 2 мм глутамина. Кроме того, добавьте 496 л из 200 мг/мл глюкозы (окончательная концентрация глюкозы в сми составляет 5,5 мм).
- Приготовление сенсорного картриджа
- Выньте из инкубатора сенсорный картридж, снимите крышку патрона датчика и сбросьте воду из колодцев. Поместите 200 мл предварительно разогретого калибранта в каждую скважину и замените крышку патрона датчика.
- Поместите картридж датчика обратно в инкубатор в течение 1 часа (до необходимости).
- Препарат препаратов для митохондриального стресса
- Откройте набор стресс-тестов(Таблица материалов)и удалите содержимое. Составьте запас и рабочие решения для олигомицина, карбонилового цианида-4-(трифторометокси)фенилгидразона (FCCP) и Ротенона/Антимицина А (АА) следующим образом.
- Олигомицин: добавить 630 л собранных носителей в трубку, чтобы сделать 100 мкм запаса. Затем разбавить до 45 мкм средствами массовой информации для получения концентрации порта (окончательная концентрация скважины после инъекции составит 4,5 мкм)
- FCCP: добавить 720 л собранных носителей в трубку, чтобы сделать 100 мкм запаса. Разбавить до 10 КМ со средствами массовой информации для получения концентрации порта (окончательная концентрация скважины составит 1 мкм)
ПРИМЕЧАНИЕ: BSA и / или FBS не должны быть добавлены к средствам массовой информации, так как это может повлиять на действие митохондриальных uncouplers14. - Rotenone/AA: добавьте 540 qL собранных носителей в трубку, чтобы сделать 50 мкм запаса. Разбавить до 25 КМ со средствами массовой информации для получения концентрации порта (окончательная концентрация скважины составит 2,5 мкм)
ПРИМЕЧАНИЕ: Вышеуказанные концентрации дали последовательные результаты в наших руках. Дополнительные FCCP привело к дальнейшему увеличению дыхания. Тем не менее, концентрации наркотиков, возможно, должны быть скорректированы в зависимости от размера островка, и особенно с островками из различных видов или неостровных сфероидов. Для справки, средний диаметр нечеловеческого островка приматов составляет около 150 мкм15.
- Откройте набор стресс-тестов(Таблица материалов)и удалите содержимое. Составьте запас и рабочие решения для олигомицина, карбонилового цианида-4-(трифторометокси)фенилгидразона (FCCP) и Ротенона/Антимицина А (АА) следующим образом.
- Приготовление сфероидной пластины и перенос островков
- Ручные островки поджелудочной железы в 60 мм х 15 мм клеточной культуры блюдо, содержащее собранные средства массовой информации для получения около 100% чистоты.
ПРИМЕЧАНИЕ: Островки должны казаться округлыми, с четко определенной периферией, и казаться плотнее, чем загрязнители экзокринной ткани. Избегайте островков, которые кажутся поврежденными или изношенными. В этом эксперименте размер островка не измерялся напрямую, хотя мы пытались выбрать островки примерно эквивалентного размера для каждой скважины и образца. - Загрузите каждую скважину сфероидной микроплиты с 175 зл и средствами массовой информации с помощью многоканального пипетка.
- Используя пипетку P20, установленную на 15 кЛ, аспир 15 островков из тарелки клеточной культуры. Островки должны быть видны в кончике пипетки невооруженным глазом.
- Для переноса островков на сфероидную микроплиту, опустите наконечник пипетки на дно колодца, едва поднимите, и медленно вырвет очень небольшой объем (5 евро). Подтвердите, что все островки покинули наконечник пипетки. Каждая скважина должна получить 15 островков. Иногда проверить сфероид микроплиты под микроскопом, чтобы проверить, что островки находятся в нижней части каждого колодца, а не застрял в стороны.
ПРИМЕЧАНИЕ: Избегайте загрузки угловых колодцев островками. Кислород и рН поток из пластика может произойти во время ассе, и это усугубляется в четырех угловых скважин. - После того, как все островки были переданы в микроплиту сферидов, инкубировать микроплиту в инкубаторе 37 градусов по Цельсию, не-CO2 при завершении шагов ниже.
- Ручные островки поджелудочной железы в 60 мм х 15 мм клеточной культуры блюдо, содержащее собранные средства массовой информации для получения около 100% чистоты.
- Загрузка картриджа датчика и запуск асссея
- Удалите сенсорный картридж из инкубатора. Порты A-C для каждой скважины должны быть загружены либо снадобьем, либо спредами. Скважины, содержащие островки и четыре угловые колодцы, должны быть загружены с наркотиками. Неугловые скважины без островков должны быть загружены носителями. Порт D можно оставить пустым. Загрузите порт А (вверху слева от каждого датчика) с 20 зл олигомицина или носителя. Загрузите порт B (вверху справа) с 22 Зл FCCP или носителями. Загрузите порт C (внизу слева) с 25 Зл Ротено/АА или носителями.
- Программа внеклеточный анализатор потока анализатор для 30 минут базового периода дыхания (5 циклов 3 минуты смеси, 3 минуты измерения), 42 минуты олигомицина периода измерения (7 циклов 3 минуты смеси, 3 минуты измерения), 30 минут FCCP (5 циклов 3 минуты микс, 3 минуты измерения), и 30 минут Rotenone / AA (5 циклов 3 минуты измерения, 3 минуты измерения), 3 минуты измерения).
- Выполнить анализ и следовать инструкциям на экране для калибровки датчика и вставки микроплиты.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Для загрузки островков в микроплиту, 15 островков должны быть аспирированы в 15 ЗЛ носителей, как показано на рисунке 1A. Островки, естественно, оседают к нижней части наконечника трубы в течение нескольких секунд. Затем наконечник трубаопроката опускается на дно скважины. Наконечник очень слегка поднят, и небольшой объем (около 5 л) пронизан вместе с островками. Этот метод приводит к последовательному размещению на итогах микроплиты(рисунок 1B),что позволяет проводить точные измерения потребления кислорода.
Рисунок 2 показывает репрезентативные результаты по индивидуальным скважина для потребления кислорода на протяжении всего исследования. Данный эксперимент показывает, что может произойти, когда скважины загружаются плохо, при этом многие островки застряли по бокам скважины, а не на дне скважины. Это может быть вызвано pipetting слишком много средств массовой информации в колодец после островки уже пипетки из кончика. Поток дополнительных носителей выталкивает островки из нижней части скважины. Когда это произойдет, базовый уровень потребления кислорода будет очень низким, и это хорошо покажет практически никакой реакции на FCCP. Смелая линия на рисунке 2 демонстрирует это явление.
На рисунке 3 показан другой эксперимент, в котором большинство скважин показали значительное базовое дыхание и реакцию на наркотики. Тем не менее, две скважины (с смелыми линиями) не показали никакого ответа на ротенон / АА. Это говорит о том, что препарат не был должным образом выпущен в колодец. В этом случае, как и в случае отсутствия базального потребления кислорода, эти скважины могут быть исключены из дальнейшего анализа.
На рисунке 4 показаны результаты успешного исследования. Здесь мы покажем пример сводных данных из отдельного эксперимента, в котором скважины были должным образом загружены островками и правильно вводили с наркотиками. АТФ-зависимый митохондриальный кислород потребление было эффективно ингибируется олигомицин, максимальное дыхание-хорошо выше базальных уровней- был индуцирован FCCP, и митохондриального дыхания был полностью закрыт ниже уровней олигомицина путем ингибирования сети транспортировки электронов с rotenone / AA.
Рисунок 1: Техника трубоукладчика для загрузки островков в микроплиту. (A) Приблизительно 15 островков (красная стрелка) pipetted с 15 ЗЛ носителей. (B) Островки по центру в нижней части сфероидной микроплиты. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Рисунок 2: Хорошо хорошо изменчивость из-за разницы в загрузке на акром. Скважины загружены неправильно (смелый синей линии) показывают практически нет базального потребления кислорода и минимальной реакции на наркотики стресс-тестирования клеток. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Рисунок 3: Отказ от инъекций наркотиков. Две скважины (смелые синие линии) не были введены с ротеноном / АА и не показывают существенного снижения потребления кислорода. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Рисунок 4: Средние данные по всем скважинам в эксперименте после исключения плохо загруженных или вводимых скважин. Среднее потребление кислорода на протяжении всего анализа стресс-теста клеток в отдельном эксперименте, включая 16 технических репликатов. Ошибки баров показывают стандартное отклонение для n No 16 скважин. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Изучение потребления кислорода островка ранее было затруднено сферической формой островков, их несоблюдением культурных поверхностей и количеством островков, необходимых для скважины. В этом протоколе мы подчеркиваем эффективность 96-хорошей сфероидной микроплиты для измерения потребления кислорода на небольшом количестве островков и демонстрируем технику обработки и загрузки островков, которая технически осуществима и обеспечивает согласованность Результаты.
Для того, чтобы островки придерживались нижней части микроплиты и были невозмущены во время смешивания шагов во время всего асссе, 96-хорошая микроплита покрыта клеевым раствором за день до проведения асссе. Хотя это, как правило, полезно, если островки не загружаются должным образом они могут придерживаться стороны скважины, а не дно, тем самым влияя или исключая точное измерение. Для борьбы с этим, мы рекомендуем покрытие скважин с очень небольшим объемом клея раствора только 20 Л. Кроме того, техника трубоукладки мы демонстрируем гарантирует, что островки загружаются на дно скважины и не толкаемых вверх по бокам потоком дополнительных носителей .
96-хорошая микроплита сфероидов преодолела предыдущие ограничения измерения потребления кислорода островка, включая большое количество необходимых островков и количество условий, которые могут быть проверены одновременно. Действительно, недавнее исследование10 продемонстрировали использование этой системы с одним человеческим наикстом на скважину. Однако измерение потребления кислорода с использованием отдельных островков привело к очень низким базальным измерениям потребления кислорода, которые были значительно выше фона только на крупнейших островках (диаметр более 290 мкм). Островки NHP, как правило, меньше, чем человеческие островки, со средним диаметром всего 150 мкм15. В наших руках, 15 островков NHP на хорошо показал более высокий базовый универсал и более отзывчивый профиль во время теста на стресс клетки, чем меньше островков. Мы также протестировали пять и десять островков на скважину, но обнаружили, что потребление кислорода базальным и сигнал к шуму были значительно сокращены.
В дополнение к возможности использовать небольшое количество островков на скважину, 96-хорошая микроплита позволяет для тестирования нескольких различных условиях одновременно. Это полезно в тех случаях, когда островки обрабатываются различными соединениями или генетически манипулируются. Однако при сравнении групп островков приматов человека или нечеловека, которые поступают из разных источников (например, диабетических и недиабетических островков), образцы часто поступают в разные дни. Таким образом, в этих случаях невозможно в полной мере воспользоваться этой системой.
Для того, чтобы количественно различные аспекты потребления митохондриального кислорода, мы манипулировали различными аспектами дыхания фармакологически. Используемые концентрации наркотиков основывались на проницаемом исследовании в островках человека10. Доза FCCP была оптимизирована, чтобы вызвать максимальное митохондриальное дыхание в наших руках. В частности, концентрация олигомицина составила 4,5 мкм, FCCP - 1 мкм, а ротенона/АА - 2,5 мкм. Однако эти концентрации, вероятно, необходимо откалибровать для различных применений этого протокола.
Полученные данные могут быть либо проанализированы непосредственно, либо нормализованы с помощью ряда методов. В этом эксперименте для каждой выборки использовалось равное количество островков аналогичных размеров, и данные не нормализовались по количеству клеток или размеру островка, что может быть трудно напрямую оставить количественной оценке. Альтернативным методом нормализации является тотальный клеточный белок, который включает в себя лизинг оветки после проведения анализа и количественную оценку уровня белка. Данные также могут быть нормализованы до базальных уровней дыхания. Это может быть информативным в некоторых случаях, таких, как количественная оценка резервных мощностей в процентах от базальных уровней. Однако, с этими методами нормализации и другие, информация может быть потеряна во время нормализации, как ранее описано16.
Система, описанная здесь, является уникальным инструментом для лучшего понимания физиологии на газе. Действительно, важность потребления кислорода в здоровье на килетах иллюстрируется наблюдением, что показатели потребления кислорода на каши тесно связаны со здоровьем на регулярном уровне и вероятностью успешной пересадки газа17. Эта система обеспечивает отличную платформу для последовательной количественной оценки потребления кислорода на газе, который теоретически может быть применен к любым аналогичным размерам культивированных сфероидов.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторам нечего раскрывать.
Acknowledgments
Авторы хотели бы отметить Vanderbilt High Throughput скрининга core для использования их объектов, Agilent биотехнологии, д-р Пол Kievit (Орегон здравоохранения и науки университета) для не-человеческих приматов изысканий приматов, и Эрик Донахью (Университет Вандербильта) за помощь с рисунком 1. J.M.E. была поддержана NIGMS Национальных институтов здравоохранения под номером премии T32GM0007347. М.Г. была поддержана NIH/NIDDK (R24DK090964-06) и Департаментом по делам ветеранов (BX003744).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Cell culture dish, 60 mm X 15 mm style | Corning | 430166 | |
| Cell-Tak Cell and Tissue Adhesive | Corning | 354240 | |
| Conical tube, 50 mL | Falcon | 352070 | |
| Dextrose anhydrous | Fisher Scientific | BP350-1 | For glucose solution, 200 mg/ml, sterile filetered |
| Disposable reservoirs (sterile), 25 ML | Vistalab | 3054-1033 | for loading multichannel pipet |
| EZFlow Sterile 0.45 μm PES Syringe Filter, 13 mm | Foxx Life Sciences | 371-3115-OEM | |
| L-glutamine | Gibco | 25030-081 | 200 mM (100x) |
| Multichannel pipette tips | ThermoFisher Scientific | 94410810 | |
| Multichannel pipette, 15-1250 μL | ThermoFisher Scientific | 4672100BT | Recommended |
| P20, P200, and P1000 pipettes | Eppendorf | 2231000602 | |
| pH Probe | Hanna Instruments | HI2210-01 | |
| Pipette tips, 20 μL, 200 μL, 1000 μL | Olympus | 24-404, 24-412, 24-430 | |
| Seahorse XF Base Media | Agilent | 103334-100 | |
| Seahorse XF Cell Mito Stress Test Kit | Agilent | 103015-100 | Includes Oligomycin, FCCP, and Rotenone/Antimycin A |
| Seahorse XFe96 Analyzer | Agilent | S7800B | Including prep station with 37 °C non-CO2 incubator |
| Seahorse XFe96 Spheroid Fluxpak Mini | Agilent | 102905-100 | Includes sensor cartridge, spheroid microplate, and calibrant |
| Sodium bicarbonate | Fisher Scientific | BP328-500 | |
| Sodium pyruvate | Gibco | 11360-070 | 100 mM (100x) |
| Stereo Microscope | Olympus | SZX9 | |
| Syringe (sterile), 5 mL | BD | 309603 | For sterile filtration |
| Water (sterile) | Sigma | W3500-500mL |
References
- Mulder, H. Transcribing β-cell mitochondria in health and disease. Molecular Metabolism. 6 (9), 1040-1051 (2017).
- Maechler, P., Wollheim, C. B. Mitochondrial signals in glucose-stimulated insulin secretion in the beta cell. The Journal of Physiology. 529 (Pt 1), 49-56 (2000).
- Curry, D. L. Glucagon Potentiation of Insulin Secretion by the Perfused Rat Pancreas. Diabetes. 19 (6), 420 (1970).
- Song, G., Pacini, G., Ahrén, B., D'Argenio, D. Z. Glucagon Increases Insulin Levels by Stimulating Insulin Secretion Without Effect on Insulin Clearance in Mice. Peptides. 88, 74-79 (2017).
- Vergari, E., et al. Insulin inhibits glucagon release by SGLT2-induced stimulation of somatostatin secretion. Nature Communications. 10 (1), 139 (2019).
- Watts, M., Ha, J., Kimchi, O., Sherman, A. Paracrine regulation of glucagon secretion: the β/α/δ model. American Journal of Physiology--Endocrinology and Metabolism. 310 (8), E597-E611 (2016).
- Sweet, I. R., et al. Continuous measurement of oxygen consumption by pancreatic islets. Diabetes Technology & Therapeutics. 4 (5), 661-672 (2002).
- Agilent Seahorse XF Instruments Overview and Selection Guide. , Agilent Technologies. https://www.agilent.com/en/products/cell-analysis/seahorse-xf-instruments-selection-guide (2019).
- Wikstrom, J. D., et al. A novel high-throughput assay for islet respiration reveals uncoupling of rodent and human islets. PLoS One. 7 (5), e33023 (2012).
- Taddeo, E. P., et al. Individual islet respirometry reveals functional diversity within the islet population of mice and human donors. Molecular Metabolism. 16, 150-159 (2018).
- Conrad, E., et al. The MAFB transcription factor impacts islet alpha-cell function in rodents and represents a unique signature of primate islet beta-cells. American Journal of Physiology--Endocrinology and Metabolism. 310 (1), E91-E102 (2016).
- Steiner, D. J., Kim, A., Miller, K., Hara, M. Pancreatic islet plasticity: interspecies comparison of islet architecture and composition. Islets. 2 (3), 135-145 (2010).
- Elsakr, J. M., et al. Maternal Western-style diet affects offspring islet composition and function in a non-human primate model of maternal over-nutrition. Molecular Metabolism. , (2019).
- Soutar, M. P. M., et al. FBS/BSA media concentration determines CCCP's ability to depolarize mitochondria and activate PINK1-PRKN mitophagy. Autophagy. , 1-10 (2019).
- Hirshberg, B., et al. Pancreatic Islet Transplantation Using the Nonhuman Primate (Rhesus) Model Predicts That the Portal Vein Is Superior to the Celiac Artery as the Islet Infusion Site. Diabetes. 51 (7), 2135-2140 (2002).
- Divakaruni, A. S., Paradyse, A., Ferrick, D. A., Murphy, A. N., Jastroch, M. Analysis and interpretation of microplate-based oxygen consumption and pH data. Methods in Enzymology. 547, 309-354 (2014).
- Papas, K. K., et al. Islet Oxygen Consumption Rate (OCR) Dose Predicts Insulin Independence in Clinical Islet Autotransplantation. PLoS One. 10 (8), e0134428 (2015).
