Summary
Il Differential Radial Capillary Action of Ligand Assay (DRaCALA) può essere utilizzato per identificare piccole proteine leganti il ligando di un organismo utilizzando una libreria ORFeome.
Abstract
L'ultimo decennio ha visto enormi progressi nella comprensione di piccole molecole di segnalazione nella fisiologia batterica. In particolare, le proteine bersaglio di diversi messaggeri secondari derivati da nucleotidi (NSM) sono state sistematicamente identificate e studiate in organismi modello. Questi risultati sono dovuti principalmente allo sviluppo di diverse nuove tecniche tra cui la tecnica del composto di cattura e l'azione capillare radiale differenziale del saggio del ligando (DRaCALA), che sono state utilizzate per identificare sistematicamente le proteine bersaglio di queste piccole molecole. Questo documento descrive l'uso di NSM, guanosina penta- e tetrafosfati (p)ppGpp, come esempio e dimostrazione video della tecnica DRaCALA. Utilizzando DRaCALA, 9 su 20 note e 12 nuove proteine bersaglio di (p)ppGpp sono state identificate nell'organismo modello, Escherichia coli K-12, dimostrando la potenza di questo test. In linea di principio, DRaCALA potrebbe essere utilizzato per studiare piccoli ligandi che possono essere etichettati da isotopi radioattivi o coloranti fluorescenti. I passaggi critici, i pro e i contro di DRaCALA sono discussi qui per un'ulteriore applicazione di questa tecnica.
Introduction
I batteri utilizzano diverse piccole molecole di segnalazione per adattarsi ad ambienti in costante cambiamento1,2. Ad esempio, gli autoindoduttori, i lattoni N-acilomoserina e i loro oligopeptidi modificati, mediano la comunicazione intercellulare tra i batteri per coordinare il comportamento della popolazione, un fenomeno noto come quorum sensing2. Un altro gruppo di piccole molecole di segnalazione sono gli NSM, tra cui l'adenosina monofosfato ciclico (cAMP), il di-AMP ciclico, il monofosfato ciclico di di-guanosina (di-GMP ciclico) e i guanosina penta- e tetra fosfati (p)ppGpp1. I batteri producono questi NSM come risposta a una varietà di diverse condizioni di stress. Una volta prodotte, queste molecole si legano alle loro proteine bersaglio e regolano diverse vie fisiologiche e metaboliche per far fronte agli stress incontrati e migliorare la sopravvivenza batterica. Pertanto, l'identificazione delle proteine bersaglio è un prerequisito inevitabile per decifrare le funzioni molecolari di queste piccole molecole.
L'ultimo decennio ha visto un boom di conoscenza di queste piccole molecole di segnalazione, principalmente a causa di diverse innovazioni tecniche che hanno svelato le proteine bersaglio di queste piccole molecole. Questi includono la tecnica del composto di cattura3,4,5e l'azione capillare radiale differenziale del saggio del ligando (DRaCALA)6 da discutere in questo articolo.
Inventato da Vincent Lee e colleghi nel 20116,DRaCALA utilizza la capacità di una membrana nitrocellulosa di sequestrare in modo differenziale ligandi liberi e legati alle proteine. Molecole come le proteine non possono diffondersi su una membrana nitrocellulosa, mentre piccoli ligandi, come gli NSM, sono in grado di farlo. Mescolando l'NSM(ad esempio,ppGpp) con la proteina da testare e individuandoli sulla membrana, ci si possono aspettare due scenari (Figura 1): Se (p)ppGpp si lega alla proteina, il (p)ppGpp radiomarcato sarà trattenuto al centro dello spot dalla proteina e non si diffonderà verso l'esterno, dando un piccolo punto intenso (cioè., forte segnale radioattivo) sotto un fosforiger. Tuttavia, se (p)ppGpp non si lega alla proteina, si diffonderà liberamente verso l'esterno per produrre una grande macchia con segnale radioattivo di fondo uniforme.
Inoltre, DRaCALA può rilevare l'interazione tra una piccola molecola e una proteina nonpurata in un intero lisi cellulare se la proteina è presente in quantità sufficiente. Questa semplicità consente l'uso di DRaCALA nell'identificazione rapida di bersagli proteici utilizzando una libreria di espressioni ORFeome. Infatti, le proteine bersaglio di cAMP7, di-AMPciclico 8, ciclico di-GMP9,10e (p) ppGpp11,12,13 sono state sistematicamente identificate utilizzando DRaCALA. Questo articolo video utilizza (p)ppGpp come esempio per dimostrare e descrivere i passaggi critici e le considerazioni per eseguire uno screening DRaCALA di successo. Da notare, una descrizione più approfondita di DRaCALA14 è altamente raccomandata da leggere in combinazione con questo articolo prima di eseguire DRaCALA.
Figura 1: Il principio di DRaCALA. (A) Schema del saggio DRaCALA. Vedi il testo per i dettagli. (B) Quantificazione e calcolo della frazione vincolante. Vedi il testo per i dettagli. In breve, le macchie DRaCALA saranno analizzate disegnando due cerchi che circoscrivono l'intero punto e il punto scuro interno(cioèil (p)ppGpp trattenuto a causa del legame della proteina testata). Il segnale di legame specifico è il segnale radioattivo del cerchio interno (S1) dopo aver sottratto il segnale di fondo non specifico (calcolato da A1 × ((S2-S1)/(A2-A1))). La frazione di legame è il segnale di legame specifico diviso per il segnale radioattivo totale (S2). Abbreviazioni: DRaCALA = Differential Radial Capillary Action of Ligand Assay; (p)ppGpp = guanosina penta- e tetrafosfati; RT = temperatura ambiente. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
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Protocol
1. Preparazione di lizzati a cellule intere
- Inoculare i ceppi di raccolta E. coli K-12 ASKA ORFeome15 in 1,5 mL di brodo di lisogenia (LB) contenente 25 μg/mL di cloramfenicolo in piastre di pozzetti profondi 96 pozzetti. Crescere durante la notte (O/N) per 18 ore a 30 °C con agitazione a 160 giri/min. Il giorno successivo, aggiungere isopropil β-d-1-tiogalattosiranoside (IPTG) (0,5 mM finale) alle colture O/N per indurre l'espressione proteica a 30 °C per 6 ore.
- Celle a pellet a 500 x g per 10 min. Congelare il pellet a -80 °C fino all'uso. Per lisi delle cellule, aggiungere 150 μL di tampone di lisi L1 (40 mM Tris pH 7,5, 100 mM NaCl, 10 mM MgCl2, integrato con 2 mM fenilmetilsulfonilfluoruro (PMSF), 40 μg / mL DNasi 1 e 0,5 mg / mL lisozima) per sospendare il pellet.
- Congelare le celle a -80 °C per 30 minuti, quindi scongelare a 37 °C per 20 minuti. Ripeti questo ciclo tre volte per lisi delle cellule. Conservare i lasati a -80 °C prima dell'uso.
2. Purificazione di Relseq e GppA
NOTA: Le proteine ricombinanti Relseq di Streptococcus equisimilis e GppA di E. coli K-12 sono utilizzate per sintetizzare rispettivamente pppGpp e ppGpp radiomarcati.
- Crescere e raccogliere cellule sovraesprimendo ogni proteina.
- Coltivare il ceppo E. coli BL21 DE3 fino alla fase esponenziale (densità ottica (OD) ~ 0,3-0,4) in brodo LB e girare verso il basso 1 mL di coltura a 6000 x g per 5 minuti. Decantare il surnatante e riconsosciare le cellule con 100 μL di brodo TSB ghiacciato (brodo LB integrato con 0,1 g/mL PEG3350, 0,05 mL/mL dimetilsolfossido, 20 mM MgCl2).
- Mescolare i plasmidi con il relseq e il gppAmarcati con istidina, ciascuno 100 ng, con le sospensioni cellulari di cui sopra in TSB, e incubare sul ghiaccio per 30 minuti. Shock termico delle celle a 42 °C per 40 s. Mettere la miscela su ghiaccio per 2 minuti e aggiungere 1 mL di brodo LB a temperatura ambiente per consentire alle cellule di recuperare per 1 ora a 37 °C con agitazione a 160 giri/min.
- Placcare le cellule recuperate su piastre di agar LB integrate con gli antibiotici corrispondenti (Relseq:100 μg/mL di ampicillina; GppA: 30 μg/mL kanamicina). Il giorno successivo, inoculare le colonie in brodo LB per iniziare le precolture O/N di entrambi i ceppi a 37 °C.
- Dopo 18 ore, inoculare 500 mL di LB medium con 10 mL delle colture O/N e gli antibiotici corrispondenti. Coltivare le colture agitando a 160 giri/min a 37 °C. Quando l'OD600nm raggiunge 0,5-0,7, indurre l'espressione proteica aggiungendo 0,5 mM IPTG e crescendo per 3 ore a 30 °C con agitazione a 160 rpm.
- Raccogliere le cellule ruotando a 6084 x g per 10 minuti a 4 °C. Riconsegregare il pellet in 20 mL di soluzione salina ghiacciata tamponata con 1x fosfato (PBS) e ricentrizzare a 1912 x g per 20 minuti a 4 °C. Decantare il surnatante e congelare il pellet a -20 °C prima dell'uso.
- Purificazione dell'affinità dell'acido nichel-nitrilotriacetico (Ni-NTA)
NOTA: da questo punto in poi, assicurarsi che i campioni siano freddi.- Aggiungere 40 mL di tampone di lisi ghiacciato L2 (50 mM Tris pH 7,5, 150 mM NaCl, 5% glicerolo, 10 mM imidazolo, 10 mM β-mercaptoetanolo integrato con inibitori della proteasi (compressa senza EDTA; vedere la tabella dei materiali)per sospendare il pellet. Lisi delle celle tramite sonicazione (ampiezza del 60%, 2 s ON / 4 s OFF per 8 min ON). Eliminare il lisito ruotando a 23.426 x g per 40 minuti a 4 °C e continuare con il surnatante per la purificazione.
- Durante la centrifugazione di cui sopra, preparare la resina Ni-NTA.
- Trasferire 500 μL di resina Ni-NTA omogeneizzata in una colonna di cromatografia in polipropilene in piedi e lasciarla depositare per 15 minuti e la soluzione di stoccaggio sgocciola. Lavare la resina con 15 ml di acqua ultrapura due volte, quindi lavare la colonna con 15 ml del tampone di lisi L2.
- Caricare il surnatante eliminato del lisi di cella dal passaggio 1 sulla colonna e lasciarlo scorrere. Lavare la colonna con 30 mL di tampone di lavaggio (50 mM Tris pH 7,5, 150 mM NaCl, 5% glicerolo, 20 mM imidazolo).
- Eluire le proteine con 400 μL del tampone di eluizione (50 mM Tris pH 7,5, 150 mM NaCl, 5% glicerolo, 500 mM imidazolo) tre volte. Quindi, ripetere l'eluizione con altri 300 μL del tampone di eluizione. Combinare le proteine eluite ad un volume finale di 700 μL.
- Filtrazione del gel
- Preparare il tampone di filtrazione in gel (50 mM Tris, pH 7,5; 200 mM NaCl; 5% glicerolo). Lavare la colonna di esclusione delle dimensioni con un volume di colonna (25 ml) del tampone di filtrazione del gel.
- Caricare il campione di cui sopra di 700 μL utilizzando un anello da 500 μL, eseguire a 0,5 ml / min e raccogliere 2-3 frazioni, ciascuna di 0,5 mL di volume, contenenti le rispettive proteine.
- Combinare e concentrare le frazioni contenenti ciascuna delle proteine utilizzando una colonna di spin e misurare la concentrazione proteica utilizzando il test di Bradford.
3. Sintesi di 32pppGpp e ppGpp con etichetta P
- Assemblare una reazione Relseq su piccola scala in un tubo con tappo a vite (vedere Tabella 1).
NOTA: Lavorare con reagenti radioattivi solo in un luogo autorizzato e con dispositivi di protezione individuale.
| Volume (μL) | ||
| Piccola scala | Grande scala | |
| Acqua ultrapura | ||
| 10x Relseq buffer* | 2 | 50 |
| ATP (8 mM finale) | ||
| Relseq (4 μM finale) | ||
| 32 anni P-α-Guanosina trifosfato (GTP) (finale 120 nM) (ATTENZIONE) | 0.2 | 5 |
| totale | 20 | 500 |
Tabella 1: Informazioni di assemblaggio per le reazioni di sintesi su piccola e grande scala di 32pppGpp con etichetta P. *10x tampone Relseq contiene 250 mM Tris-HCl, pH 8,6; 1M NaCl; 80 mM MgCl2. Abbreviazione: pppGpp = guanosina pentafosfato.
- Incubare il tubo a 37 °C in un bimbyxer per 1 ora, poi a 95 °C per 5 minuti e metterlo sul ghiaccio per 5 minuti. Abbassare la proteina precipitata a 15.700 x g per 5 minuti e trasferire il surnatante (sintetizzato 32P-pppGpp) in un nuovo tubo a vite.
- Per sintetizzare 32P-ppGpp da 32P-pppGpp, trasferire metà del prodotto 32p-pppGpp in un nuovo tubo con tappo a vite e aggiungere 1 μM GppA. Incubare il tubo a 37 °C per 10 minuti, a 95 °C per 5 minuti, quindi posizionare sul ghiaccio per 5 minuti.
- Abbassare la proteina precipitata a 15.700 x g per 5 minuti e trasferire il surnatante (sintetizzato 32P-ppGpp) in un nuovo tubo a vite.
- Analizzare i 32P-pppGpp e 32P-ppGpp eseguendo 1 μL dei campioni su una piastra di cromatografia a strato sottile (TLC di cellulosa modificata da polietileneimina) utilizzando il 1,5 M KH2PO4, pH 3,4, come fase mobile.
NOTA: Utilizzare il guanosina 5'-trifosfato con etichettaα-32P(32P-α-GTP) come controllo. - Asciugare completamente la piastra TLC, posizionarla tra una cartella di plastica trasparente ed esporla a uno schermo al fosforo per 5 minuti. Visualizza e quantifica i segnali utilizzando un fosforimmager.
NOTA: Quando i rapporti di 32P-pppGpp e 32P-ppGpp sono superiori all'85%, una reazione su larga scala (500 μL, sufficiente per lo screening di 20 piastre a 96 pozzetti) potrebbe essere assemblata e sintetizzata utilizzando la Tabella 1.
4. Screening DRaCALA delle proteine bersaglio di (p)ppGpp
- Scongelare e trasferire 20 μL di lizzati a cellule intere in una piastra microtitolato a V a 96 pozzetti. Aggiungere 2,5 U/well di endonucleasi da Serratia marcescense incubare a 37 °C per 15 minuti per ridurre la viscosità del lsato. Mettere i lasati sul ghiaccio per 20 min.
- Mescolare i 32P-pppGpp e i 32P-ppGpp in un rapporto 1:1 e aggiungere 1x tampone di lisi L1 per rendere la concentrazione finale di (p)ppGpp pari a 4 nM.
NOTA: Data la somiglianza chimica tra pppGpp e ppGpp, un mix di entrambe le sostanze chimiche semplificherà il processo di screening. - Utilizzare una pipetta multicanale e punte di pipetta filtrate per aggiungere e miscelare 10 μL della miscela (p)ppGpp con il l'alleato cellulare. Incubare a temperatura ambiente (RT) per 5 min.
- Lavare lo strumento a 96 x pin inserendo una soluzione allo 0,01% di detergente non ionico per 30 s e asciugare su carta velina per 30 s. Ripetere il lavaggio dello strumento pin 3x.
- Posizionare lo strumento pin nelle piastre campione a 96 pozzetti sopra e attendere 30 s. Sollevare l'utensile pin verso l'alto e posizionarlo direttamente su una membrana di nitrocellulosa per 30 s.
NOTA: se manca un punto, individuare 2 μL dei campioni corrispondenti con una pipetta e punte filtrate. Si consiglia di creare un punto duplicato dello stesso campione come indicato di seguito. - Asciugare la membrana per 5 minuti a RT. Posizionare la membrana tra una cartella di plastica trasparente ed esporla a uno schermo di fosforo di stoccaggio per 5 minuti. Visualizza utilizzando un fosforiger.
5. Quantificazione e identificazione di potenziali proteine bersaglio
- Utilizzare il software di analisi associato al phosphorimager per aprire il file .gel delle piastre visualizzate. Utilizzare la funzione di analisi array per definire i 96 punti impostando una griglia di 12 colonne x 8 righe.
- Definite grandi cerchi per circoscrivere il bordo esterno dell'intero punto (consultate la Figura 1B). Esporta Volumn+Sfondo e Area dei cerchi grandi definiti e salva in un foglio di calcolo.
NOTA: se necessario, riposizionare ogni singolo cerchio in modo che si sovrapponga perfettamente ai punti e ridimensionare ogni singolo cerchio per renderlo leggermente più grande del punto effettivo. - Ridimensiona i cerchi definiti per circoscrivere i piccoli punti interni. Esportare Volumn+Sfondoe Area dei piccoli cerchi definiti e salvarli in un foglio di calcolo.
- Calcolare le frazioni di associazione nel foglio di calcolo utilizzando l'equazione nella Figura 1Be tracciare i dati. Identificare le potenziali proteine leganti nei pozzi che mostrano elevate frazioni di legame rispetto alla maggior parte degli altri pozzi.
Figura 2: Flusso di lavoro complessivo del processo di screening DRaCALA. La produzione di proteine da una raccolta di Escherichia coli ASKA è indotta e le cellule vengono lizzate. Nel frattempo, le proteine ricombinanti Relseq-His e GppA-His sono purificate e utilizzate per sintetizzare 32pppGpp e ppGpp etichettati con P da 32P-α-GTP. Le molecole (p)ppGpp etichettate radioattivamente vengono quindi mescolate con i lisati e uno strumento a 96 pin viene utilizzato per individuare le miscele su una membrana di nitrocellulosa per la successiva esposizione a uno schermo di stoccaggio del fosforo, imaging e quantificazione dei segnali radioattivi. Abbreviazioni: DRaCALA = Differential Radial Capillary Action of Ligand Assay; (p)ppGpp = guanosina penta- e tetrafosfati; RT = temperatura ambiente; IPTG = isopropil β-d-1-tiogalatopiranoside; GTP = guanosina 5'-trifosfato; SDS-PAGE = elettroforesi su gel di dodecilsolfato-poliacrilammide di sodio; TLC = cromatografia su strato sottile. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
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Representative Results
Seguendo il protocollo sopra descritto si produrranno in genere due tipi di risultati (Figura 3).
La Figura 3A mostra una piastra con segnali di legame di fondo relativamente bassi (frazioni di legame < 0,025) dalla maggior parte dei pozzi. Il segnale di legame positivo dal pozzo H3 dà una frazione di legame di ~0,35 che è molto più alta di quella osservata per gli altri pozzi. Anche senza quantificazione, beh H3 è notevole, suggerendo che una proteina bersaglio espressa in bene H3 si lega a pppGpp, ppGpp o entrambi. Infatti, la proteina sovraespressa in pozzo H3 è l'ipoxantina fosforibosiltransferasi Hpt, che è nota per legare (p)ppGpp12,16.
Figura 3: Piastre di screening DRaCALA rappresentative (a sinistra) e quantificazione (a destra). (A) Macchie DRaCALA della piastra ASKA-50. L'unico colpo positivo, Hpt, ha dato un forte segnale di legame che si distingue sia nello spot che nel diagramma di quantificazione. (B,C) Due punti DRaCALA replicati della piastra riorganizzata 31. I cerchi e le frecce spezzati neri indicano le vere proteine bersaglio di (p)ppGpp, mentre i cerchi spezzati rossi indicano i falsi positivi. Vedi il testo per i dettagli. Abbreviazioni: DRaCALA = Differential Radial Capillary Action of Ligand Assay; (p)ppGpp = guanosina penta- e tetrafosfati; RT = temperatura ambiente; IPTG = isopropil β-d-1-tiogalatopiranoside; GTP = guanosina 5'-trifosfato; SDS-PAGE = elettroforesi su gel di dodecilsolfato-poliacrilammide di sodio; TLC = cromatografia a strato sottile; Hpt = ipoxantina fosforibosiltransferasi; PrfC = fattore di rilascio della catena peptidica RF3; NadR = NMN adenililtransferasi; HflX = GTPasi traslazionale. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
L'altro risultato tipico dello screening è mostrato in Figura 3B,C. In questa piastra, diversi pozzetti hanno mostrato segnali di legame di fondo relativamente più alti di quelli della Figura 3A. Questo è chiaramente visibile dai punti interni relativamente forti per molti pozzi. La quantificazione ha anche mostrato che molti pozzi hanno frazioni leganti nell'intervallo 0,02-0,04. Uno sfondo più alto del segnale di legame è probabilmente causato dal fatto che il lisato cellulare intero è viscoso nonostante i trattamenti con DNasi I e l'endonucleasi di S. marcescens, che degradano il DNA cromosomico rilasciato. Per piastre come questa, è importante confrontare i due punti di replica della piastra (passaggio 4.5; Figura 3B,C). La quantificazione di entrambe le piastre mostra che gli autentici bersagli positivi (cerchi neri, pozzetti A10 PrfC, B11 NadR) tendono a dare frazioni di legame costantemente elevate.
In particolare, alcuni bersagli reali potrebbero anche dare frazioni di legame variabili (Well D5, HflX12) come i falsi positivi (cerchi rossi). La ragione di questa variabilità sta nel fatto che non tutte le proteine in una libreria sono espresse in forma solubile e in quantità richieste. Se la concentrazione di una proteina è vicina o appena al di sotto del valore Kd, ci si possono aspettare risultati di legame variabili, anche per i veri bersagli. In effetti, grandi quantità di proteina HflX solubile non sono state ottenute dal ceppo ASKA12. Per determinare se queste proteine sono veri leganti o meno, le proteine potenziali devono essere purificate all'omogeneità e il legame confermato utilizzando una concentrazione più elevata (50-100 μM) delle proteine.
Attraverso questo screening, sono state identificate 9 delle 20 proteine bersaglio note di (p)ppGpp12 (vedere la sezione di discussione), convalidando l'utilità di DRaCALA per questo compito. Inoltre, sono stati scoperti e confermati 12 nuovi bersagli di (p)ppGpp, dimostrando che DRaCALA è una tecnica potente per scoprire nuove proteine bersaglio di (p)ppGpp.
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Discussion
Uno dei passaggi critici nell'esecuzione dello screening DRaCALA è quello di ottenere buoni lasati a cellule intere. In primo luogo, le proteine testate dovrebbero essere prodotte in grandi quantità e in forme solubili. In secondo luogo, la lisi delle cellule dovrebbe essere completa e la viscosità del lizzate deve essere minima. L'inclusione del lisozima e l'uso di tre cicli di congelamento-disgelo sono spesso sufficienti per far lisi completamente le cellule. Tuttavia, il DNA cromosomico rilasciato rende viscoso il lisiato e genera un segnale di legame di fondo elevato, con conseguente falso positivo come mostrato nella Figura 3B,C. Per mitigare questo, DNasi 1 e / o endonucleasi da S. marcescens possono essere utilizzati e i campioni possono essere incubati per un tempo più lungo per degradare il DNA.
Sia i controlli negativi (vettore plasmidico vuoto) che quelli positivi (proteina bersaglio nota) devono essere utilizzati per ottimizzare le condizioni per la preparazione del lizzatato a cellule intere e il test di legame DRaCALA prima di eseguire uno screening su larga scala. Quando viene trovata una condizione così ottimale, diventa inutile includere i controlli nello screening effettivo di ciascuna piastra. Questo perché la procedura di screening è molto breve e perché ci si aspetta che la maggior parte delle proteine in una piastra non si leghi a (p)ppGpp. Pertanto, queste proteine fungono da controlli negativi quando si quantificano le frazioni leganti (Figura 3).
La produzione di pppGpp e ppGpp con etichetta P 32purer è anche essenziale per lo screening DRaCALA. Ad esempio, il rapporto di conversione da GTP a pppGpp potrebbe variare. Pertanto, è importante ottimizzare il pH, le concentrazioni di magnesio e gli enzimi utilizzati e il tempo di reazione. Le reazioni su piccola scala sono quindi importanti per identificare la condizione migliore prima di impostare una reazione su larga scala.
DRaCALA ha chiaramente alcuni vantaggi e svantaggi (vedi Roelofs et al.9 per ulteriori discussioni) rispetto ad altre tecniche come la tecnica del composto di cattura. In primo luogo, DRaCALA utilizza il 32P-labeled (p)ppGpp, che non influisce sulla struttura chimica di (p)ppGpp, preservando così la sua interazione con potenziali proteine bersaglio. In secondo luogo, una volta preparati i 32p-(p)ppGpp e i lasati cellulari, ci vuole solo una settimana per esaminare ~ 60 piastre della libreria ORFeome di E. coli usando DRaCALA. Infatti, la breve procedura sperimentale (sezione 4) ha permesso l'identificazione anche delle proteine che degradano il (p)ppGpp (MutT, NudG)12,17,che la tecnica del composto di cattura ha mancato18.
Tuttavia, l'uso di DRaCALA richiede una libreria di espressioni ORFeome, che è disponibile solo per un numero limitato di organismi modello. Inoltre, i tag di purificazione dell'affinità, che sono progettati per facilitare la purificazione delle proteine nella libreria ORFeome, a volte influenzano l'espressione o il corretto ripiegamento delle proteine, producendo alcuni falsi negativi. Una nuova libreria ORFeome richiederà idealmente la determinazione se la maggior parte (>80%) delle proteine sono espresse in forma solubile e in quantità adeguate. Tale test consente inoltre ai ricercatori di valutare la copertura e l'efficacia dei risultati dello screening DRaCALA.
Nonostante queste limitazioni, DRaCALA è una potente tecnica per scoprire con successo nuove proteine bersaglio di diversi messaggeri secondari nucleotidici. In linea di principio, DRaCALA potrebbe essere utilizzato per studiare qualsiasi piccolo ligando se potesse essere etichettato utilizzando isotopi radioattivi o persino coloranti fluorescenti.
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Disclosures
Gli autori non hanno alcun conflitto di interessi da divulgare.
Acknowledgments
Il lavoro è supportato da una sovvenzione del progetto NNF (NNF19OC0058331) a YEZ e dal programma di ricerca e innovazione Horizon 2020 dell'Unione europea nell'ambito della convenzione di sovvenzione Marie Skłodowska-Curie (Nº 801199) a MLS.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 32P-α-GTP | Perkinelmer | BLU006X250UC | |
| 96 x pin tool | V&P Scientific | VP 404 | 96 Bolt Replicator, on 9 mm centers, 4.2 mm Bolt Diameter, 24 mm long |
| 96-well V-bottom microtiter plate | Sterilin | MIC9004 | Sterilin Microplate V Well 611V96 |
| Agar | OXOID - Thermo Fisher | LP0011 | Agar no. 1 |
| ASKA collection strain | NBRP, SHIGEN, JAPAN | Ref: DNA Research, Volume 12, Issue 5, 2005, Pages 291–299. https://doi.org/10.1093/dnares/dsi012 | |
| Benzonase | SIGMA | E1014-25KU | genetically engineered endonuclease from Serratia marcescens |
| Bradford Protein Assay Dye | Bio-Rad | 5000006 | Reagent Concentrate |
| DMSO | SIGMA | D8418 | ≥99.9% |
| DNase 1 | SIGMA | DN25-1G | |
| gel filtration10x300 column | GE Healthcare | 28990944 | contains 20% ethanol as preservative |
| Glycerol | PanReac AppliChem | 122329.1214 | Glycerol 87% for analysis |
| Hypercassette | Amersham | RPN 11647 | 20 x 40 cm |
| Imidazole | SIGMA | 56750 | puriss. p.a., ≥ 99.5% (GC) |
| IP Storage Phosphor Screen | FUJIFILM | 28956474 | BAS-MS 2040 20x 40 cm |
| Isopropyl β-d-1-thiogalactopyranoside (IPTG) | SIGMA | I6758 | Isopropyl β-D-thiogalactoside |
| Lysogeny Broth (LB) | Invitrogen - Thermo Fisher | 12795027 | Miller's LB Broth Base |
| Lysozyme | SIGMA | L4949 | from chicken egg white; BioUltra, lyophilized powder, ≥98% |
| MgCl2 (Magnesium chloride) | SIGMA | 208337 | |
| MilliQ water | ultrapure water | ||
| multichannel pipette | Thermo Scientific | 4661110 | F1 - Clip Tip; 1-10 ul, 8 x channels |
| NaCl | VWR Chemicals | 27810 | AnalaR NORMAPUR, ACS, Reag. Ph. Eur. |
| Ni-NTA Agarose | Qiagen | 30230 | |
| Nitrocellulose Blotting Membrane | Amersham Protran | 10600003 | Premium 0.45 um 300 mm x 4 m |
| PBS | OXOID - Thermo Fisher | BR0014G | Phosphate buffered saline (Dulbecco A), Tablets |
| PEG3350 (Polyethylene glycol 3350) | SIGMA | 202444 | |
| phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF) | SIGMA | 93482 | Phenylmethanesulfonyl fluoride solution - 0.1 M in ethanol (T) |
| Phosphor-imager | GE Healthcare | 28955809 | Typhoon FLA-7000 Phosphor-imager |
| Pipette Tips, filtered | Thermo Scientific | 94410040 | ClipTip 12.5 μl nonsterile |
| Poly-Prep Chromatography column | Bio-Rad | 7311550 | polypropylene chromatography column |
| Protease inhibitor Mini | Pierce | A32955 | Tablets, EDTA-free |
| screw cap tube | Thermo Scientific | 3488 | Microcentifuge Tubes, 2.0 ml with screw cap, nonsterile |
| SLS 96-deep Well plates | Greiner | 780285 | MASTERBLOCK, 2 ML, PP, V-Bottom, Natural |
| spin column | Millipore | UFC500396 | Amicon Ultra -0.5 ml Centrifugal Filters |
| Thermomixer | Eppendorf | 5382000015 | Thermomixer C |
| TLC plate (PEI-cellulose F TLC plates) | Merck Millipore | 105579 | DC PEI-cellulose F (20 x 20 cm) |
| Tris | SIGMA | BP152 | Tris Base for Molecular Biology |
| Tween 20 | SIGMA | P1379 | viscous non-ionic detergent |
| β-mercaptoethanol | SIGMA | M3148 | 99% (GC/titration) |
References
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