Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

Модифицированная методика построения артериовенозной фистулы у кроликов

Published: February 10, 2023 doi: 10.3791/64352
* These authors contributed equally

Summary

В настоящем протоколе предлагается создание артериовенозной фистулы у кроликов с использованием модифицированной бесконтактной техники. Методика предполагает анастомоз общей сонной артерии и наружной яремной вены из стороны в сторону без рассечения перивенозных тканей или перерезания артерии.

Abstract

Юкста-анастомотический стеноз является сложной проблемой, которая часто вызывает несозревание и снижает проходимость артериовенозной фистулы (АВФ). Травмирование вен и артерий во время операции и гемодинамические изменения могут привести к гиперплазии интимы, приводящей к юкста-анастомозу. Чтобы уменьшить повреждение вен и артерий во время операции, в этом исследовании предлагается новая модифицированная бесконтактная техника (MNTT) для построения AVF, которая может снизить частоту юкста-анастомотического стеноза и улучшить проходимость AVF. Чтобы разгадать гемодинамические изменения и механизмы МНТТ, в этом исследовании была представлена процедура AVF с использованием этого метода. Несмотря на то, что эта процедура является технически сложной, 94,4% процессуальных успехов были достигнуты после соответствующей подготовки. В конечном счете, у 13 из 34 кроликов через 4 недели после операции был обнаружен функциональный АВФ, что привело к 38,2% проходимости АВФ. Однако через 4 недели выживаемость составила 86,1%. УЗИ показало активный кровоток через анастомоз AVF. Кроме того, в вене и артерии вблизи анастомоза наблюдался спиральный ламинарный поток, что позволяет предположить, что этот метод может улучшить гемодинамику АВФ. При гистологическом наблюдении при анастомозе АВФ наблюдалась значительная гиперплазия венозной интимы, в то время как при проксимальном отделе наружной яремной вены (EJV) анастомоза значимой гиперплазии интимы не наблюдалось. Данная методика позволит улучшить понимание механизмов, лежащих в основе применения МНТТ для построения АВФ, и обеспечит техническую поддержку для дальнейшей оптимизации хирургического подхода при построении АВФ.

Introduction

Конструкция артериовенозного свища (АВФ) широко используется в клинической практике у пациентов, находящихся на поддерживающем гемодиализе (МГД), и имеет более высокую проходимость и меньшее количество осложнений, чем артериовенозный трансплантат (АВГ) или катетер с туннельной манжетой (ТКК)1,2. Хотя АВФ является предпочтительным способом сосудистого доступа, он не идеален и имеет присущие ему ограничения. Показатели первичной проходимости AVF за 1 год составляют всего 60%-65%, при этом многие неудачи возникают в околоанастомозной области 3,4,5.

Сосуды подвергаются различной степени повреждения при традиционном хирургическом доступе, что в конечном итоге влияет на созревание АВФ. Новые хирургические методы, такие как бесконтактная техника (NTT) (дополнительный рисунок 1), предложенная Hörer et al.6, и экскурсия и реимплантация лучевой артерии (RADAR), предложенные Sadaghianloo et al.7,8 и Bai et al.9, были разработаны для снижения частоты юкстаа-анастомотического стеноза и улучшения проходимости свищей путем модификации хирургической техники. Хотя эффект RADAR был лучше, чем у NTT, приток артериального стеноза наблюдался более выраженным при RADAR. Чтобы еще больше уменьшить травмирование вен и артерий во время операции, в 2021 году была предложена новая модифицированная бесконтактная техника (MNTT) для создания радиоцефальной АВФ путем сохранения перивенозной ткани вокруг головной вены без перерезания лучевой артерии (дополнительный рисунок 1 и дополнительный рисунок 2). Предварительные результаты показали повышение первичной проходимости, снижение юкста-анастомотического стеноза и отсутствие стеноза артерий10,11.

Учитывая отсутствие в настоящее время животных моделей АВФ с использованием МНТТ и для дальнейшего изучения механизма МНТТ в хирургии АВФ, в этом исследовании представлена процедура АВФ общей сонной артерии (КСА) - наружной яремной вены (EJV) с использованием МНТТ.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Экспериментальные процедуры с использованием лабораторных животных были одобрены Комитетом по этике экспериментального благополучия животных Нанкинского медицинского университета. Для этого исследования использовались новозеландские кролики в возрасте 10 месяцев (обоих полов; масса тела 3,18 ± 0,24 кг). Животные были получены из коммерческого источника (см. Таблицу материалов).

1. Подготовка животных

  1. Обезболивают кроликов, используя смешанную внутривенную инъекцию гидрохлорида тилетамина и гидрохлорида золазепама (3 мг / кг) в вену краевого уха и внутримышечную инъекцию сумианксина II (0,02 мл / кг) (см. Таблицу материалов) в мышцу задних конечностей.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Примерно через 1-3 минуты анестезирующий эффект стабилизируется. Прежде чем продолжить, следует проверить уровень анестезии, ущипнув кожу за шеей и наблюдая за роговичным рефлексом. При необходимости во время операции можно добавить гидрохлорид тилетамина, гидрохлорид золазепама (0,5 мг / кг) и сумяньксин II (0,01 мл / кг).
  2. Положите кролика на неподвижный стол (см. Таблицу материалов) в положении лежа на спине, а конечности и резцы свяжите связками.
  3. Побрейте шею и верхнюю часть груди с помощью электрической бритвы и удалите волосы с помощью крема для депиляции животных (см. Таблицу материалов).
  4. Поддерживайте стерильные условия во время операции, автоклавируя хирургическое оборудование и очищая операционную область раствором повидон-йода.

2. Разрез кожи

  1. Расположите кролика головой к хирургу.
  2. Сделайте продольный разрез ~3 см между нижней челюстью и грудино-ключичным суставом с помощью хирургических ножниц или лезвия скальпеля.

3. Препарирование наружной яремной вены (EJV)

  1. Обнажите разрез и определите правильный EJV. Убедитесь, что EJV и его периваскулярные ткани хорошо видны и не рассечены.
    ПРИМЕЧАНИЕ: EJV показывает перевернутый рисунок «Y», и ветвь, расположенная рядом с медиальной шейкой, должна быть анастомозирована.
  2. Сделайте туннель, по которому можно будет пропустить сосудистый зажим (см. Таблицу материалов) по направлению, перпендикулярному EJV. Убедитесь, что расстояние между отверстиями с обеих сторон туннеля и EJV составляет >1 см.
  3. Установите сосудистый зажим вдоль туннеля.
  4. Сделайте еще один туннель (такой же, как и на шаге 3.2) в дистальном отделе EJV, используя тот же метод.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Убедитесь, что расстояние между двумя туннелями составляет ≥2 см.
  5. Наложите шов 4-0 (см. Таблицу материалов) и сосудистый зажим вдоль туннеля для контроля кровотока (рис. 1А).

4. Рассечение и подготовка общей сонной артерии (ККА)

  1. Используйте щипцы (см. Таблицу материалов) для исследования CCA латерально к трахее и медиально к грудино-ключично-сосцевидной мышце.
    ПРИМЕЧАНИЕ: CCA имеет пульсирующее ощущение и проходит параллельно шейному нерву.
  2. Тупо рассеките ССА на длину около 2 см.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Следует избегать травмирования блуждающего нерва и его ветвей при глубоком артериальном течении.
  3. Поместите шовную нить 4-0 вокруг CCA, чтобы контролировать кровоток, когда это необходимо.
  4. Наложите сосудистые зажимы (см. Таблицу материалов) как можно более дистально и проксимально (рис. 1B).

5. Подготовка анастомоза

  1. Для флеботомии и анастомоза используйте микроножницы (см. Таблицу материалов), чтобы рассечь внутреннюю часть EJV (длиной 4 мм) от окружающих тканей.
  2. Сделайте продольный разрез длиной 4 мм микроножницами в середине вены. Промыть вену раствором гепарина (100 МЕ/мл) для предотвращения тромбоза.
  3. Сделайте продольный разрез размером примерно 4 мм в передней стенке артерии с помощью острого лезвия и микроножниц. Промойте артерию раствором гепарина 100 МЕ / мл до тех пор, пока сосуд не очистится от крови.

6. Анастомоз из стороны в сторону

  1. Притяните EJV и CCA как можно ближе друг к другу.
  2. Примените техникуКунлина 12 для бокового анастомоза CCA и EJV с использованием 8-0 нерассасывающиеся нити (см. Таблицу материалов). Сначала ушивают заднюю стенку сосуда (рис. 1В), затем переднюю стенку сосуда.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Поскольку стенка EJV у кролика тонкая, во время операции следует соблюдать осторожность, чтобы предотвратить повреждение сосудов, которое впоследствии может нарушить проходимость анастомоза. В процессе сосудистого анастомоза раствор гепарина (100 МЕ/мл) необходимо многократно использовать для промывания просвета для предотвращения тромбообразования.

7. Удаление сосудистого зажима и перевязка вены

  1. Удалите по очереди дистальный сосудистый зажим CCA, проксимальный сосудистый зажим EJV и проксимальный сосудистый зажим CCA. Наблюдайте за активным кровотоком через анастомоз.
  2. Перевязать дистальный конец EJV с помощью шва 4-0, который был наложен ранее. Удалите дистальный сосудистый зажим EJV.
  3. Удалите шовную нить, которая была наложена вокруг CCA (рис. 1D).

8. Закрытие кожи и послеоперационный уход

  1. Убедившись, что в операционном поле нет значительного кровотечения, закройте кожу шеи прерванными швами (4-0).
  2. Поместите кролика в клетку до полного выздоровления. Обычно это занимает 30-45 минут.
    ПРИМЕЧАНИЕ: В случае неполного или отсроченного выздоровления следует позаботиться о том, чтобы кролик не испытал гемодинамический шок из-за кровотечения в области операции. При необходимости введите Sumianxin II (0,01 мл / кг) после операции.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Результатом успешного применения этой методики является патент АВФ в кроличью шею. В этом исследовании использовались следующие критерии для оценки успеха: (1) когда сосудистый анастомоз завершен, можно прикоснуться к венозному тремору АВФ и услышать сосудистый шум; (2) через 4 недели после установления АВФ активный кровоток через анастомоз внутреннего свища можно измерить с помощью цветного допплеровского ультразвука; (3) Через 4 недели после установления АВФ окрашивание гематоксилин-эозином (H & E) показывает значительную венозную гиперплазию интимы в анастомозе AVF.

Всего в это исследование было включено 36 здоровых новозеландских кроликов. В общей сложности 34 кролика имели сразу же успешную АВФ с использованием МНТТ. У трех кроликов было значительное послеоперационное кровотечение, а один умер из-за потери крови. Оставшимся двум кроликам понадобился компрессионный гемостаз, чтобы остановить кровотечение. Кроме того, четыре кролика умерли после операции с общими симптомами, включая чихание, кашель, насморк, анорексию и диарею. Наконец, 31 кролик выжил, а у 13 был функциональный AVF через 4 недели после операции. Выживаемость составила 86,1% (рис. 2).

АВФ оценивали с помощью цветной допплерографии (УЗИ) через 4 недели после операции для подтверждения проходимости, определяемой как активный кровоток через анастомоз АВФ (рис. 3). Кроме того, спиральный ламинарный поток наблюдался как в вене, так и в артерии вблизи анастомоза (рис. 3). Что касается ультразвуковых параметров между АВФ и нормальными сосудами на контралатеральной шейке, то были выявлены значимые различия в диаметре и ПСВ EJV и диаметре ОАС (табл. 1).

AVF был получен через 4 недели после операции и разбит на срезы. Окрашивание H&E проводилось на всех полученных участках. Значительная венозная гиперплазия интимы наблюдалась в месте анастомоза AVF (рис. 4), тогда как в проксимальном отделе EJV анастомоза не наблюдалось значительной гиперплазии интимы (рис. 4).

Figure 1
Рисунок 1: CCA-EJV AVF, созданный у кроликов с использованием MNTT . (A) Два туннеля были сделаны вдоль направления, перпендикулярного EJV. b) ОАС был мобилизован. (C) С помощью методики Кунлина был выполнен анастомоз ОАС и EJV из стороны в сторону. (D) Дистальный конец EJV был перевязан, и открытый кровоток был виден через проксимальный конец. Сокращения: CCA = общая сонная артерия; EJV = наружная яремная вена; АВФ = артериовенозный свищ; MNTT = модифицированная техника без касания. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Figure 2
Рисунок 2: Кривые выживаемости кроликов. Один кролик умер сразу после операции из-за потери крови. Остальные четыре кролика умерли на 3-й, 7-й, 10-й и 26-й дни после операции. Наконец, 31 кролик был жив через 4 недели после операции. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Figure 3
Рисунок 3: Атлас оценки CDU AVF . (A) CCA показал однонаправленные спектры кровотока с низким сопротивлением, потерю нормального трехфазного кровотока, расширенные систолические пики и обильный диастолический кровоток. (B) EJV показал артерийные спектры кровотока с низким сопротивлением, с увеличенным ПСВ и расширенными спектрами. (C) Активный кровоток через анастомоз AVF. (D) Спиральный ламинарный поток наблюдался в трактах оттока EJV. Сокращения: AVF = артериовенозный свищ; CCA = общая сонная артерия; EJV = наружная яремная вена; PSV = пиковая систолическая скорость. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Figure 4
Рисунок 4: Наблюдение за морфологией AVF кроликов через 4 недели после операции (окрашивание H&E). (A) Значимой гиперплазии интимы КЦА с патентованным АВФ не наблюдалось. (B) Эластичная мембрана EJV в месте анастомоза с патентованным AVF была сильно нарушена со значительной гиперплазией интимы. На внутренней стороне эластических мембран были отчетливо видны толстые гиперплазированные фиброзные ткани с редуцированными и фрагментированными эластических волокнами. (C) Проксимальный EJV анастомоза не имел значительной гиперплазии интимы с патентованным AVF. Это показало неповрежденные эластичные мембраны и тонкие, волнистые эластичные волокна. Сокращения: AVF = артериовенозный свищ; CCA = общая сонная артерия; EJV = наружная яремная вена. Увеличение: 200x. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Группа Наружная яремная вена Общая сонная артерия
Диаметр (мм) ПСВ (см/с) Диаметр (мм) ПСВ (см/с)
АВФ 7.21 ± 1.55 79.64 ± 39.31 3.06 ± 0.32 59.38 ± 32.25
Нормальное судно 3.13 ± 0.66 9.21 ± 2.77 2.17 ± 0.41 39.02 ± 11.56
t 5.413 3.996 3.779 1.329
P 0.001 0.004 0.005 0.22

Таблица 1: Сравнение ультразвуковых параметров между АВФ и нормальными сосудами на контралатеральной шее у кроликов (n = 5). Аббревиатура: ПСВ = пиковая систолическая скорость. T-критерий используется для анализа данных. Когда значение P составляет <0,05, сравнение между двумя группами является статистически значимым.

Дополнительный рисунок 1: Принципиальная схема режимов сосудистого анастомоза при хирургии АВФ. (А) Традиционная хирургия АВФ. (B) AVF, созданный с использованием NTT. (C) AVF, созданный с использованием MNTT. Сокращения: AVF = артериовенозный свищ; NTT = техника без касания; MNTT = модифицированная техника без касания. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы загрузить этот файл.

Дополнительный рисунок 2: Функциональный анастомоз АВФ «конец в сторону» с МНТТ. Сокращения: AVF = артериовенозный свищ; MNTT = модифицированная техника без касания. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы загрузить этот файл.

Дополнительный рисунок 3: Кроличья модель AVF, созданная с использованием традиционной техники. (A) EJV был рассечен из перивенозной ткани. (B) EJV и CCA были объединены. (C) С помощью методики Кунлина был проведен анастомоз ОАС и EJV из стороны в сторону. (D) Дистальный конец EJV был перевязан, и открытый кровоток заметно проходил через проксимальный конец. Сокращения: CCA = общая сонная артерия; EJV = наружная яремная вена; АВФ = артериовенозный свищ. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы загрузить этот файл.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

В настоящее время для AVF доступно несколько моделей животных. Среди них свиньи, овцы и собаки в основном используются в качестве моделей крупных животных13,14,15. Используемые модели мелких животных включают кроликов, крыс и мышей16,17,18. В этом исследовании использовались новозеландские кролики. Новозеландские кролики имеют обильные перивенозные ткани вокруг EJV, что делает их благоприятными для изучения метода MNTT. К преимуществам использования новозеландских кроликов можно отнести простую хирургическую операцию, удобное кормление и низкую стоимость. Тем не менее, модели крупных животных имеют преимущества перед моделями кроликов при изучении гемодинамики.

В этом исследовании была предложена уникальная процедура CCA-EJV AVF с использованием MNTT без рассечения перивенозной ткани или перерезания артерии. Функциональный сквозной анастомоз19,20 для создания АВФ осуществлялся путем артериовенозного анастомоза «бок-в-сторону» с последующей перевязкой дистального отдела EJV. По сравнению с традиционными методами (дополнительный рисунок 3), создание АВФ с помощью МНТТ более адекватно сохраняло перивенозную ткань. При артериовенозном сосудистом анастомозе из-за сохранения перивенозной ткани венозная стенка могла быть более полно обнажена за счет вытягивания перивенозной ткани, что способствовало сосудистому анастомозу.

При УЗИ наблюдался спиральный ламинарный поток в вене и артерии вблизи анастомоза, что указывает на то, что МНТТ может иметь более благоприятную гемодинамику, что может объяснить отличные показатели проходимости и созревания21,22. При гистологическом наблюдении при анастомозе АВФ наблюдалась значительная гиперплазия венозной интимы, в то время как при проксимальном EJV анастомоза не наблюдалось значительной гиперплазии интимы. Это открытие, вероятно, связано с улучшением юкста-анастомотического стеноза с помощью этой хирургической техники или спирального ламинарного потока.

Распространенные проблемы и предложения
Учитывая тонкую стенку EJV, при анастомозировании кровеносных сосудов необходима щадящая операция, чтобы предотвратить повреждение EJV. Поскольку ткань вокруг EJV сохраняется, ее можно вытянуть во время анастомоза, чтобы развернуть сосуд и сделать его более благоприятным для наложения швов. Тем не менее, сохранение ткани, окружающей EJV, является надоедливым. После венотомии, учитывая отток крови из венозных сосудов, кровеносные сосуды разрушаются и вызывают ретракцию EJV. Во время EJV-анастомоза необходимо использовать микрососудистый пинцет, чтобы вытянуть окружающие ткани EJV и полностью обнажить стенку вены. Кроме того, если расстояние между артериями и венами велико, CCA следует позволить свободной достаточной длине, чтобы гарантировать, что они находятся близко друг к другу и, таким образом, облегчить анастомоз. Ан 8-0 Для сосудистого анастомоза использовали стерильный сосудистый шов, чтобы уменьшить повреждение сосудов.

Технические ограничения
Подготовка вены по-прежнему требует туннелирования и зажима вдоль туннеля, и этот маневр может вызвать повреждение вен. Перед выполнением артериального и венозного анастомоза из стороны в сторону повреждение сосудов может возникнуть в результате вытягивания артерии и вены. Поскольку проходимость 38,2% была ниже, чем у других моделей AVF23,24, необходимо дальнейшее улучшение ухода и обнаружения кроликов после операции AVF.

Применение методики
Для дальнейшего изучения механизмов МНТТ и связанной с ними гемодинамики необходимы патологические, молекулярные и геномные исследования для подтверждения этого метода.

Заключение
В этом исследовании был успешно создан CCA-EJV AVF с использованием метода MNTT. Операция была простой, с хорошей воспроизводимостью и высоким уровнем успеха, что указывает на то, что этот метод может быть идеальным для дальнейших исследований по применению MNTT в хирургии AVF.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

У авторов нет потенциальных конфликтов интересов, связанных с лекарственными препаратами и материалами, используемыми в этой процедуре.

Acknowledgments

Это исследование было поддержано грантами Проекта научно-технического плана Сучжоу (SYS2020077), Проекта Плана развития медицинских и медицинских наук и технологий в зоне высоких технологий Сучжоу (2020z001), Проекта Плана развития науки и технологий Сучжоу - Инновации в области медицины и здравоохранения и технологий (SYK2021030), Общий проект Фонда развития науки и технологий Нанкинского медицинского университета (NMUB20210253), Научно-технического бюро Сучжоу применения проекта фундаментальных исследований (No SYSD2019205, No SYS2020119), Проект плана развития науки и технологий традиционной китайской медицины провинции Цзянсу (No MS2021098), Совместный образовательный проект сотрудничества между промышленностью и университетами Министерства образования (No 202102242003), Шестой проект «333 развития талантов высокого уровня» в провинции Цзянсу, Проект Научно-технического городского фонда Сучжоу 2022 года на уровне больницы (SZKJCYY2022014) и Молодежный научно-технический проект Сучжоу «KeJiaoXingWei» (KJXW2022086).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Animal Depilatory Fuzhou Feijing Biotechnology Co., Ltd. PH1877
Curved hemostatic forceps Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. ZH131R/RN
Dissecting forceps Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. ZDO25R/RN
electrical razor Shenbao Technology Co., Ltd PGC-660
Fixed Table Zhenhua Biomedical Instrument Co., Ltd ZH-DSB019
Halsey needleholder Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. ZM208R/RN
Heparin Dodium Injection Jiangsu Wanbang Biochemical Pharmaceutical Group Co., Ltd. H32020612
Medical gauze dressing Nanchang Kangjie medical hygiene products Co., Ltd 20172640135
Micro forceops Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. ZD275RN/T
Micro needle holder forceps Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. ZF2618RB/T
Micro scissors Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. ZF022T
Non-silk sutures 4-0 Kollsut Medical Instrument Co., Ltd. NMB020RRCN26C075-1
Non-absorbable sutures 8-0 (double needle) Yangzhou Yuankang Medical Instrument Co., Ltd. 10299023602
Povidone iodine solution Shanghai Likang Disinfection High-tech Co., Ltd. 310512
Rinse needle Jiangsu Tonghui Medical Instrument Co., Ltd 20180039
scalpel handle Shanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd. Surgical Instruments Factory J11030
Sharp blade Suzhou Medical Products Factory Co., Ltd. TY21232001
Sodium Chloride Injection  (100 mL) Guangdong Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd. B21K0904
Sugical Scissors Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. ZC120R/RN
Sumianxin II Jilin Dunhua Shengda Animal Pharmaceutical Co., Ltd. 20180801
Syringe with needle?5 mL) BD medical devices (Shanghai) Co., Ltd 2006116
Tiletamine Hydrochloride and Zolazepam Hydrochloride for Injection Virbac Pet Health, France 83888204
Triangle needle Hangzhou Huawei medical supplies Co., Ltd 7X17
Vascular clamp Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. ZF220RN
New Zealand rabbits Suzhou Huqiao Biological Co., Ltd. SCXK2020-0001

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Lok, C. E., et al. KDOQI Clinical Practice Guideline for Vascular Access: 2019 update. American Journal of Kidney Diseases. 75, 1 (2020).
  2. Schmidli, J., et al. Editor's choice - Vascular access: 2018 Clinical Practice Guidelines of the European Society for Vascular Surgery (ESVS). European Journal of Vascular and Endovascular Surgery. 55 (6), 757-818 (2018).
  3. Grogan, J., et al. Frequency of critical stenosis in primary arteriovenous fistulae before hemodialysis access: Should duplex ultrasound surveillance be the standard of care. Journal of Vascular Surgery. 41 (6), 1000-1006 (2005).
  4. Swinnen, J., Lean, T. K., Allen, R., Burgess, D., Mohan, I. V. Juxta-anastomotic stenting with aggressive angioplasty will salvage the native radiocephalic fistula for dialysis. Journal of Vascular Surgery. 61 (2), 436-442 (2015).
  5. Bharat, A., Jaenicke, M., Shenoy, S. A novel technique of vascular anastomosis to prevent juxta-anastomotic stenosis following arteriovenous fistula creation. Journal of Vascular Surgery. 55 (1), 274-280 (2012).
  6. Hörer, T. M., et al. No-touch technique for radiocephalic arteriovenous fistula--Surgical technique and preliminary results. The Journal of Vascular Access. 17 (1), 6-12 (2016).
  7. Sadaghianloo, N., et al. Salvage of early-failing radiocephalic fistulae with techniques that minimize venous dissection. Annals of Vascular Surgery. 29 (7), 1475-1479 (2015).
  8. Sadaghianloo, N., et al. Radial artery deviation and reimplantation inhibits venous juxta-anastomotic stenosis and increases primary patency of radial-cephalic fistulas for hemodialysis. Journal of Vascular Surgery. 64 (3), 698-706 (2016).
  9. Bai, H., et al. Artery to vein configuration of arteriovenous fistula improves hemodynamics to increase maturation and patency. Science Translational Medicine. 12 (557), (2020).
  10. Zhang, Y. Y., Wang, X. H., Liu, Z., Hou, G. C. Creating radio-cephalic arteriovenous fistula in the forearm with a modified no-touch technique. Journal of Visualized Experiments. (182), e62784 (2022).
  11. Hou, G. C., et al. Modified no-touch technique for radio-cephalic arteriovenous fistula increases primary patency and decreases juxta-anastomotic stenosis. The Journal of Vascular Access. , (2022).
  12. Kunlin, J. Long vein transplantation in treatment of ischemia caused by arteritis. Revue de Chirurgie. 70 (7-8), 206-235 (1951).
  13. Wang, Y., et al. Venous stenosis in a pig arteriovenous fistula model--Anatomy, mechanisms and cellular phenotypes. Nephrology, Dialysis, Transplantation. 23 (2), 525-533 (2008).
  14. Marius, C. F., et al. Sheep model of hemodialysis arteriovenous fistula using superficial veins. Seminars in Dialysis. 28 (6), 687-691 (2015).
  15. Ramacciotti, E., et al. Fistula size and hemodynamics: An experimental model in canine femoral arteriovenous fistulas. The Journal of Vascular Access. 8 (1), 33-43 (2008).
  16. Eiketsu, S., et al. Arterial enlargement, tortuosity, and intimal thickening in response to sequential exposure to high and low wall shear stress. Journal of Vascular Surgery. 39 (3), 601-612 (2004).
  17. Eddie, M., et al. A new arteriovenous fistula model to study the development of neointimal hyperplasia. Journal of Vascular Research. 49 (2), 123-131 (2012).
  18. Karl, A. N., et al. The murine dialysis fistula model exhibits a senescence phenotype: pathobiological mechanisms and therapeutic potential. American Journal of Physiology. Renal Physiology. 315 (5), 1493-1499 (2018).
  19. Hong, S. Y., et al. Clinical analysis of radiocephalic fistula using side-to-side anastomosis with distal cephalic vein ligation. The Korean Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 46 (6), 439-443 (2013).
  20. Tang, W. G., et al. A meta-analysis of traditional and functional end-to-side anastomosis in radiocephalic fistula for dialysis access. International Urology and Nephrology. 53 (7), 1373-1382 (2021).
  21. Marie, Y., et al. Patterns of blood flow as a predictor of maturation of arteriovenous fistula for haemodialysis. The Journal of Vascular Access. 15 (3), 169-174 (2014).
  22. Srivastava, A., et al. Spiral laminar flow, the earliest predictor for maturation of arteriovenous fistula for hemodialysis access. Indian Journal of Urology. 31 (3), 240-244 (2015).
  23. Loveland-Jones, C. E., et al. A new model of arteriovenous fistula to study hemodialysis access complications. The Journal of Vascular Access. 15 (5), 351-357 (2014).
  24. Wong, C. Y., et al. Vascular remodeling and intimal hyperplasia in a novel murine model of arteriovenous fistula failure. Journal of Vascular Surgery. 59 (1), 192-201 (2014).

Tags

Медицина выпуск 192
Модифицированная методика построения артериовенозной фистулы у кроликов
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Zhen, L., Guocun, H., Xiaohe, W.,More

Zhen, L., Guocun, H., Xiaohe, W., Jingfang, H., Jie, L., Minggang, W. A Modified Technique for Arteriovenous Fistula Construction in Rabbits. J. Vis. Exp. (192), e64352, doi:10.3791/64352 (2023).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter