Name: Visualizzazione di sviluppo craniofacciale nei SOX10: Kaede transgenici Zebrafish line utilizzando Time-lapse Microscopia confocale (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-09-30T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 35 s
Description: Impara a visualizzare la migrazione delle cellule della cresta neurale in Danio rerio utilizzando la fotoconversione Kaede e la microscopia confocale time-lapse. Questo metodo permette di studiare in vivo lo sviluppo craniofaciale.

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Gli autori ringraziano Robert Kelsh per gentile condividere il zebrafish reagente promotore SOX10.

1. Embrione Collection per Fotoconversione <ol><li> Impostare almeno dieci coppie di SOX10: Kaede zebrafish transgenico tra il 5 e 6:00 di sera. </li><li> La mattina successiva, tirare divisori e raccogliere le uova intorno a mezzogiorno. Trasferirli su piastre di Petri e metterli in 28,5 ° C incubatore. </li><li> A circa 24 ore dopo la fecondazione, pulire i piatti Petri, eliminando gli embrioni morti. Controllare lo stadio di sviluppo degli embrioni 13 usando la microscopia campo di luce e ogni microscopio a fluorescenza con una maggiore proteina fluorescente verde (EGFP) del filtro. Kaede sarà visibile attraverso questo filtro. </li><li> Quando gli embrioni raggiungono il 60 trasferimento hpf cinque embrioni fluorescenti vivaci in una capsula di Petri separata e dechorionate se necessario. </li></ol> 2. Montaggio di embrioni per Fotoconversione <ol><li> Montare l&#39;embrione utilizzando un microscopio fluorescente normale. Montaggio di embrioni su microscopio confocale è estremamente impegnativo. </li><li> Utilizzare supportoacqua ard E3 o preparare E3 fresco con la seguente ricetta: Aggiungere il seguente per litro di acqua distillata dH acqua 2 O aggiungere il seguente rendere 1x E3L: 0.292 g 5.0 mM NaCl 0,013 g 0.17mm KCl 0.044 g 0,33 mm CaCl 2 (essiccante, 96%, il reagente ACS) 0,081 g 0,33 mM MgSO4 (anhydrated) Facoltativo: aggiungere 200 ml di 0,05% di blu di metilene a 1X E3 come fungicida e mescolate. Piano mantiene a temperatura ambiente per 1 settimana. </li><li> Utilizzare tricaine standard o preparare tricaine usando seguente ricetta: Per 5 L di 0,2% tricaine mescolare i seguenti ingredienti: 45 ml Tris-Cl (1M pH9.5) 5 LH 2 O 10 g tricaine </li><li> Preparare &#39;succo film&#39; (50 ml E3, soluzione tricaine 0,015%), con l&#39;aggiunta di 3,75 ml di 0,2% tricaine a 46.25 ml E3. </li><li> Preparare agarosio mescolando 46.25 ml di acqua E3 a 46,35 mg basso punto di fusione (LMP) agarosio in un pallone di vetro da 50 ml e sciogliere le particelle solide da forno a microonde. Quindi aggiungere3,73 ml 0,2% tricaine di agarosio e mettere boccetta di vetro con agarosio in 50 ° C a bagnomaria fino a quando utilizzo. </li></ol> 3. Preparazione e Montaggio di Embryo <ol><li> Anestetizzare gli embrioni con una soluzione tricaine E3/0.015% made in fase 1.1.2 e trasferimento di embrioni di diapositiva da camera. </li><li> Immergetevi in ​​eccesso E3 con il tessuto carta e la messa agarosio su embrione. </li><li> Posizione embrione dorsale perfettamente con punte microloader. Assicurarsi che l&#39;intero embrione non galleggia sopra l&#39;agarosio, ma spingere il corpo verso il basso. Poi versare la soluzione tricaine E3/0.015% rispetto dell&#39;embrione agarosio incorporato fino a camera è completamente riempita di fluido. </li></ol> 4. Regolazione delle impostazioni del software sul microscopio confocale <ol><li> Utilizzare 20X obiettivo dell&#39;aria immersible (apertura numerica 0,75; dimensione pinhole 20) per mettere a fuoco l&#39;embrione. Quindi premere il pulsante della luce L100 sul microscopio e selezionare i canali nel software. Controls/A1settings aprire le icone di visualizzazione / acquisizione e premetek il pulsante di configurazione confocale. Avanti fare clic su &#39;auto&#39; e seleziona seguenti canali prima di chiudere nuovamente la finestra: Ch1: DAPI canale 403.4 nm (lunghezze d&#39;onda tra 350-410 nm possono essere utilizzati) CH2: 488,0 nm Ch3: 561,9 nm </li></ol> 5. Fotoconversione <ol><li> Spegnere Ch1 e 3 e accendere Ch2 prima di fare clic sul pulsante Rimuovi blocco e la scansione. </li><li> Focus su cellule di interesse per fotoconversione, che è meglio farlo partendo da 1frame/sec e alta tensione (HV) 200 e poi andare nella fotogrammi / sec e abbassando la HV di conseguenza fino a raggiungere 1/32 fotogrammi / sec e HV intorno 100-120, a seconda del rumore di fondo. </li><li> Quando l&#39;embrione è a fuoco, guardare sul lato destro dello schermo, afferrare il bordo verde e renderlo più piccolo modo che si inserisce l&#39;area di interesse per fotoconversione e fare clic destro con il mouse. Più piccolo è meglio perché la fotoconversione è irreversibile. </li><li> Girare fotogrammi / sec a 1 e HV 200 e colpirescansione. Una immagine ingrandita dell&#39;area di fotoconversione è ora visibile. </li><li> Cellule Photoconvert girando sul canale 1 (403.4 nm). Esporre al laser photoconverting ovunque 5-60 secondi, a seconda delle dimensioni della regione fino Kaede verde come si è visto attraverso il canale GFP è quasi assente. </li><li> Quando il segnale Kaede verde è quasi assente, girare Ch1 off. Girare Ch2 e 3. Quindi fare clic a destra sulla finestra sul campo area di scansione A1 e premere &#39;ritorno alla dimensione originale&#39; per verificare se sono stati photoconverted cellule desiderate. </li></ol> 6. Fare un Z-stack <ol><li> Trovare l&#39;icona &#39;cattura Z-serie&#39; nella barra dei menu e impostare i limiti superiore e inferiore della Z-stack prima di avviarlo. Imposta LUT. </li></ol> 7. Software-Settings Time-lapse <ol><li> Vai al box A1Simple GUI e selezionare le impostazioni seguenti: 1/32 fotogrammi / sec dimensioni 1024 mediamente 4 o 8X seconda del numero di Z-stack che deve essere presa in un loop </li><li> Vai a:controlli view / acquisizione / ND acquisizione sequenza e telaio tempo impostato (8-30min), fare clic su continua e fare clic su Z-stack. Imposta frontiere come provato prima e iniziare film. </li><li> Continuare ad aggiungere E3/0.015% soluzione tricaine diapositiva camera tutto il giorno. Di notte, riempire camera completamente. Che durerà fino al mattino successivo. </li><li> La mattina seguente, riempire soluzione tricaine E3/0.015% e verificare se embrione è ancora vivo. Perdita di fluorescenza indica morte. Continua ricariche e controlli per tutta la giornata. </li><li> Quando la struttura è terminata formatura, o l&#39;embrione è morto, finire il film. </li></ol> 8. Elaborazione post-produzione <ol><li> Fare clic su &#39;show proiezione massima intensita&#39; sulla barra degli strumenti, quindi fare clic destro sull&#39;immagine e creare un nuovo documento. Il video è ora visibile nella migliore qualità possibile. Vai a eliminare i fotogrammi che non sono necessari e regolare LUT. Infine salvare come. Avi. Questo formato sarà bene per Windows. Per Mac software scaricare to convertire. mov o. wmv. </li></ol>

<ol><li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prevalence+at+Birth+of+Cleft+Lip+With+or+Without+Cleft+Palate%3A+Data+From+the+International+Perinatal+Database+of+Typical+Oral+Clefts+%28IPDTOC%29%5BTitle%5D)+AND+%22Cleft+Palate+Craniofac.+J%22%5BJournal%5D)">Prevalence at Birth of Cleft Lip With or Without Cleft Palate: Data From the International Perinatal Database of Typical Oral Clefts (IPDTOC).</a> Cleft Palate Craniofac. J. 48 (1), 66-81 (2011).</li>
<li>Dixon, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cleft+lip+and+palate%3A+understanding+genetic+and+environmental+influences%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Genet%22%5BJournal%5D)">Cleft lip and palate: understanding genetic and environmental influences.</a> Nat. Rev. Genet. 12 (3), 167-178 (2011).</li>
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<li>Ando, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+optical+marker+based+on+the+UV-induced+green-to-red+photoconversion+of+a+fluorescent+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U+S+A%22%5BJournal%5D)">An optical marker based on the UV-induced green-to-red photoconversion of a fluorescent protein.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 99 (20), 12651-12656 (2002).</li>
<li>Kimmel, C. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stages+of+embryonic+development+of+the+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Dyn%22%5BJournal%5D)">Stages of embryonic development of the zebrafish.</a> Dev. Dyn. 203 (3), 253-310 (1993).</li>
<li>Kawakami, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+zebrafish-secreted+matrix+protein+you%2Fscube2+is+implicated+in+long-range+regulation+of+hedgehog+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">The zebrafish-secreted matrix protein you/scube2 is implicated in long-range regulation of hedgehog signaling.</a> Curr. Biol. 15 (5), 480-488 (2005).</li>
<li>Lombardo, V. A., Sporbert, A., Abdelilah-Seyfried, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+tracking+using+photoconvertible+proteins+during+zebrafish+development%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Cell tracking using photoconvertible proteins during zebrafish development.</a> J. Vis. Exp. (67), e4350(2012).</li>
</ol>

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari in competizione.

Qui è illustrato un nuovo metodo per la visualizzazione di sviluppo craniofacciale nel modello zebrafish. I SOX10: Kaede transgenico linea zebrafish è stato usato con successo per descrivere il modello migratorio di CNCC in dettaglio viene utilizzato come organismo modello 5. Precedenti studi hanno utilizzato i luoghi di interesse lordi come l&#39;occhio alle cellule bersaglio e si sono affidati a iniezione Kaede mRNA, saggi fotoconversione o in gabbia fluoresceina destrano per fo...

Schisi oro-facciali rappresentano la deformità cranio-facciale più diffusa, con 1/700-1, 000 consegne interessati 1. Turbativa del primo embrionale sviluppo craniofacciale può portare alla formazione di labio-palatoschisi (CL / P). Mentre cause di schisi sindromica sono stati ampiamente dimostrato, le basi genetiche ed epigenetiche delle forme non sindromiche di clefting orofacciale devono ancora essere scoperti 2-4. Per comprendere l&#39;eziologia e la patogenesi di queste malformazioni, è necessario chiarire lo sviluppo di strutture craniofacciali su base cellulare. In tutte le specie di vertebrati le cellule della cresta neurale cranica (CNCC) migrano dal tubo neurale dorsale per popolare gli archi faringei, che contribuiranno alla formazione di strutture oro-facciale. Turbativa di sviluppo embrionale cresta neurale precoce può portare alla formazione di malformazioni cranio-facciali tra cui CL / P 5-7. In annunciodizione di somiglianze strutturali tra zebrafish e mammiferi sviluppo craniofacciale (CNCCs risiedono in regioni omologhe), la rete di regolamentazione gene è altamente conservata. È stato anche dimostrato che CNCCs evolve allo stesso modo tra specie amniote e zebrafish 8, rendendo il zebrafish un potente organismo per lo studio di base dello sviluppo e genetica di CL / P. Ha molti vantaggi, tra cui piccole dimensioni, rapida ed ex-utero sviluppo embrionale, e di alti tassi di allevamento. Inoltre, l&#39;embrione è otticamente trasparente, rendendolo suscettibile di osservazione di eventi evolutivi complessi sotto il microscopio 9. Si tratta di un modello animale ideale per lo studio della migrazione e differenziazione delle cellule della cresta neurale cranica. Ampliando precedentemente lavoro pubblicato 8, 10, 11, il modello migratorio di CNCC è stato descritto in dettaglio utilizzando le SOX10: kaede modello transgenico 5. Kaede è una proteina foto-convertibile che turns da verde a rosso dopo l&#39;attivazione di foto e permette di tracciare con precisione CNCCs. Durante questa trasformazione il scheletro peptidico viene scisso, suggerendo che la conversione è stabile, cioè le cellule possono essere monitorate per la loro destinazione finale 12. Linee transgeniche etichettati con Kaede sotto il controllo trascrizionale di SOX10 hanno mostrato che il palato amniote e la piastra etmoide di zebrafish sono formate omologo dalla fusione di protuberanze mascellari bilaterali (MXP) con il rilievo frontonasale (FNP) e che la cucitura di fusione a forma di Y è analogo tra specie. Tra le altre applicazioni, i SOX10: Kaede transgenici modello zebrafish è stato utilizzato per generare video di embrioni di zebrafish a diversi stadi di sviluppo di mostrare formazione delle strutture cranio-facciali normali e anormali. Fotoconversione di gruppi specifici di cellule permette di monitorare il loro sviluppo. Con questo metodo un metodo per creare immagini dal vivo di sviluppare craniofacstrutture IAL di zebrafish viene introdotta, rendendo più facile dimostrare visivamente il processo di sviluppo complesso. Questo protocollo è finalizzato a condividere l&#39;esperienza di generare questi video utilizzando il normale sviluppo della piastra etmoide in SOX10: Kaede zebrafish transgenico come esempio. Questo protocollo può essere ulteriormente applicato a fare video time-lapse di qualsiasi struttura derivata da craniche cellule della cresta neurale in zebrafish.

<table><tbody><tr><td>Sox10:kaede transgenico zebrafish linea </td><td>MGH</td><td></td><td>Disponibile tramite il laboratorio Liao</td></tr><tr><td>Piastre Petri 100x15 mm</td><td>BD Falcon</td><td>351029</td><td></td></tr><tr><td>piastre Petri 35 mmx10 mm</td><td>BD Falcon</td><td>351008</td><td></td></tr><tr><td>Ultrapure Low Melting Point (LMP) Agarosio</td><td>Invitrogen</td><td>15517022</td><td></td></tr><tr><td>Lab Tek 2 Chamber SlideSystem </td><td>LabTek</td><td>154453</td><td></td></tr><tr><td>Microloader 200/conf</td><td>Fisher</td><td>E5242956003</td><td></td></tr><tr><td>Nikon A1R Si Confocal serie Ti</td><td>Nikon</td><td>No Numero di catalogo</td><td></td></tr><tr><td>NIS Elements Software AR3.2 64-bit</td><td>Nikon</td><td>No Numero di catalogo</td><td></td></tr></tbody></table>

visualizzazione di sviluppo craniofacciale nei sox10: kaede transgenici zebrafish line utilizzando time-lapse microscopia confocale

Visualization of Craniofacial Development in the sox10: kaede Transgenic Zebrafish Line Using Time-lapse Confocal Microscopy

Vertebrato palatogenesis è un processo di sviluppo altamente coreografica e complesso, che coinvolge la migrazione di cranica cresta neurale (CNC), le cellule, la convergenza e l&#39;estensione delle protuberanze facciali, e la maturazione dello scheletro cranio-facciale. Per studiare il contributo della cresta neurale cranica a specifiche regioni del palato zebrafish una SOX10: Kaede linea zebrafish transgenico è stato generato. Sox10 prevede la restrizione lignaggio della proteina Kaede giornalista alla cresta neurale, rendendo in tal modo la cella etichettare un processo più preciso di tintura tradizionale o giornalista iniezione di mRNA. Kaede è una proteina foto-convertibile che passa dal verde al rosso dopo l&#39;attivazione foto e permette di seguire con precisione le cellule. I SOX10: Kaede linea transgenica è stato utilizzato per eseguire l&#39;analisi lignaggio di delineare popolazioni di cellule del CNC che danno luogo a mascellare contro elementi mandibolari e illustrano omologia di protuberanze facciali per amnioti. Questo protocollo è descritto il passaggios per generare un time-lapse video live di una SOX10: Kaede zebrafish. Sviluppo della piastra etmoide servirà come esempio pratico. Questo protocollo può essere applicato a una registrazione confocale time-lapse di qualsiasi Kaede o simile proteina reporter fotoconvertibile in zebrafish transgenico. Inoltre, può essere utilizzato per catturare non solo normale, ma anche anormale sviluppo di strutture craniofacciali nei mutanti di zebrafish.

Nel SOX10: CNCCs Kaede linea transgenica, migratori e post-migratori sono etichettati fluorescente verde. Le cellule CNCC etichettati con Kaede fluorescente verde ricapitolano endogena espressione SOX10 mRNA 5. Tra le altre applicazioni, questo modello animale è stato usato per visualizzare meglio lo sviluppo di CNCC strutture craniofacciali dipendenti. Il normale sviluppo di strutture specifiche e anche lo sviluppo patologico di malformazioni cranio-facciali, in particolare il la...

Visualizzazione dei dati sperimentali è diventata un elemento chiave per la presentazione dei risultati alla comunità scientifica. Generazione di live time-lapse di embrioni in crescita contribuisce a una migliore presentazione e la comprensione dei processi di sviluppo complessi. Questo protocollo è una guida passo-passo per l&#39;etichettatura cellulare tramite fotoconversione di proteine ​​Kaede in zebrafish.

Visualizzazione di sviluppo craniofacciale nei SOX10: Kaede transgenici Zebrafish line utilizzando Time-lapse Microscopia confocale

Vertebrate palatogenesis is a highly choreographed and complex developmental process, which involves migration of cranial neural crest (CNC) cells, ...

L'obiettivo generale del seguente esperimento è generare una registrazione in time-lapse in tempo reale della migrazione delle cellule della cresta neurale, al fine di mostrare la formazione delle strutture craniofacciali in via di sviluppo. Questo risultato si ottiene innanzitutto montando un pesce zebra transgenico SOX 10 KD anestetizzato in agarosio, per minimizzare i movimenti durante l'esperimento. Successivamente, sotto un microscopio confocale, viene effettuata un'attivazione fotochimica con luce UV per convertire il segnale da verde a rosso nelle cellule della cresta neurale.Quindi ci si concentra sulle cellule della cresta neurale fotoconvertite. Viene generato un Zack della struttura in via di sviluppo prima di registrare un video in time-lapse. I risultati ottenuti mostrano lo sviluppo delle cellule della cresta neurale craniali nel palato primario del pesce zebra in un embrione di pesce zebra transgenico SOX 10 KD.Il principale vantaggio di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti, come l'imaging statico, è che processi complessi di sviluppo come la migrazione cellulare possono essere visualizzati in tempo reale. Ciò rende i risultati più accessibili alla comunità sc

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Time-lapse imaging confocale è una tecnica potente utile per caratterizzare sviluppo embrionale. Qui, descriviamo la metodologia e caratterizzare morfogenesi craniofacciale wild-type, così come PDGFRA, smad5, e SMO embrioni mutanti.

Analizzando craniofacciale morfogenesi in Zebrafish Uso 4D Microscopia confocale

Organizzazione delle cellule di ossa cranio-facciali è stato a lungo ipotizzato ma mai visualizzato direttamente. Marcatura delle cellule Multi-spettrale e in vivo vivo   l'imaging consente di visualizzare il comportamento delle cellule dinamica mandibola zebrafish. Qui, abbiamo dettaglio il protocollo di manipolare Zebrabow pesci transgenici e osservare direttamente intercalazione cellulare e cambiamenti morfologici di condrociti nella cartilagine di Meckel.

Visualizzazione di condrociti intercalazione e direzionale proliferazione via Zebrabow Analisi cellulare clonale nella cartilagine del Embryonic Meckel

Il metodo descritto qui permette l'analisi time-lapse di sviluppo degli organi in embrioni di zebrafish utilizzando un microscopio a fluorescenza dissezione in grado di eseguire sezionamento ottico e semplici strategie di riadattamento per correggere la deriva focale e planare.

Analisi dello sviluppo del rene Zebrafish con time-lapse imaging Utilizzando una dissezione microscopio dotato di sezionamento ottico

La microscopia a fluorescenza a foglio luminoso è uno strumento eccellente per l'imaging dello sviluppo embrionale. Consente la registrazione di lunghi filmati time-lapse di embrioni vivi in condizioni quasi fisiologiche. Dimostriamo la sua applicazione per l'imaging dello sviluppo dell'occhio di zebrafish su ampie scale spazio-temporali e presentiamo una pipeline per la fusione e la deconvoluzione di set di dati multiview.

Utilizzando tecnica LUCE microscopia a fluorescenza all&#39;Immagine sviluppo Zebrafish Eye

Qui, presentiamo un metodo di montaggio versatile che consente l'imaging time-lapse a lungo termine dello sviluppo posteriore del corpo di embrioni vivi di pesce zebra senza perturbare il normale sviluppo.

Un metodo di montaggio versatile per il lungo termine Imaging di sviluppo Zebrafish

Una combinazione delle tecniche ottiche avanzate di scansione microscopia con lungo l'eccitazione di fluorescenza multi-fotone lunghezza d'onda del laser è stata implementata per catturare immagini ad alta risoluzione, tridimensionale, in tempo reale della migrazione dalla cresta neurale in embrioni di zebrafish di Tg (foxd3:GFP) e Tg (sox10:EGFP).

Multi-fotone Time Lapse Imaging per visualizzare lo sviluppo in tempo reale: visualizzazione della migrazione di cellule neurali della cresta negli embrioni di Zebrafish

Qui, presentiamo una serie standardizzata dei protocolli per osservare il solco superiore oculare, una struttura recentemente identificato, evolutivamente conservata nell'occhio dei vertebrati. Utilizzando larve di zebrafish, dimostriamo le tecniche necessarie per identificare i fattori che contribuiscono alla formazione e alla chiusura del solco superiore oculare.

Visualizzazione del solco superiore oculare durante l'embriogenesi Danio rerio

Questo articolo descrive un metodo per montare fragili embrioni di pesce zebra per la microscopia confocale time-lapse estesa. Questo metodo a basso costo è facile da eseguire utilizzando normali piatti di microscopia con fondo di vetro per l'imaging su qualsiasi microscopio invertito. Il montaggio viene eseguito in strati di agarose a diverse concentrazioni.

Un metodo di montaggio a strati per la microscopia confocale Time-Lapse estesa di embrioni di pesci zebra interi

L'imaging in vivo è un potente strumento che può essere utilizzato per studiare i meccanismi cellulari alla base dello sviluppo del sistema nervoso. Qui descriviamo una tecnica per l'utilizzo della microscopia confocale time-lapse per visualizzare un gran numero di cellule multicolore etichettate Brainbow in tempo reale all'interno del sistema nervoso del pesce zebra in via di sviluppo.

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Imaging a 4 dimensioni della morfogenesi della coppa ottica zebrafish

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Visualizzazione della morfogenesi oculare mediante microscopia Lightsheet utilizzando rx3:GFP Transgenic Zebrafish

Impara a visualizzare la migrazione delle cellule della cresta neurale in Danio rerio utilizzando la fotoconversione Kaede e la microscopia confocale time-lapse. Questo metodo permette di studiare in vivo lo sviluppo craniofaciale.

Visualizzazione di sviluppo craniofacciale nei SOX10: Kaede transgenici Zebrafish line utilizzando Time-lapse Microscopia confocale (Video) | JoVE Journal

Visualizzazione di sviluppo craniofacciale nei SOX10: Kaede transgenici Zebrafish line utilizzando Time-lapse Microscopia confocale

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