Summary

التحقيق في الاستقطاب البلاعم عن طريق نخاع العظم الضامة المشتقة

Published: June 23, 2013
doi:

Summary

توضح هذه المقالة على التكيف السهل بسهولة<em> في المختبر</em> نموذج للتحقيق الاستقطاب البلاعم. في حضور GM-CSF/M-CSF، يتم توجيه الخلايا الجذعية المكونة للدم / السلف من نخاع العظام إلى التمايز الوحيدات، تليها التحفيز M1 أو M2. يمكن تتبع حالة التنشيط من خلال التغييرات في مستضدات سطح الخلية، التعبير الجيني ومسارات إشارات الخلية.

Abstract

توضح هذه المقالة على التكيف بسهولة سهلة في نموذج المختبر للتحقيق الاستقطاب البلاعم. في حضور GM-CSF/M-CSF، يتم توجيه الخلايا الجذعية المكونة للدم / السلف من نخاع العظام إلى التمايز الوحيدات، تليها التحفيز M1 أو M2. يمكن تتبع حالة التنشيط من خلال التغييرات في مستضدات سطح الخلية، التعبير الجيني ومسارات إشارات الخلية.

Introduction

متميزة من الاستجابات الالتهابية الكلاسيكية، الضامة التي تتسلل الأنسجة كثيرا ما عرض حالة التنشيط الاستقطاب التي تلعب دورا حاسما في تنظيم الوظائف الفسيولوجية الأنسجة المضيفة 1-8. على التحفيز، يمكن فرز تنشيط البلاعم إلى الكلاسيكية (M1) والبديلة (M2) التنشيط 2، 4، 9. M1 تنشيط البلاعم يعتمد على تول مثل مستقبلات (TLRs) وتفعيل العامل النووي كابا B (NFκB) / ج يونيو N-محطة كيناز 1 (JNK1)، مما يؤدي إلى إنتاج السيتوكينات الالتهابية، مثل TNF-α و IL- 1β وتفعيل iNOS أن يؤدي إلى زيادة إنتاج أنواع الاكسجين التفاعلية مثل أكسيد نيتريد (NO) 10، 11. في المقابل، M2 بلعم المجندين تفعيل PPARγ، PPARδ، أو IL-4-STAT6 مسارات، مما يؤدي إلى بديل، المضادة للالتهابات (M2) التنشيط مقترن upregulation من مستقبلات المانوز CD206، وأرجيناز 1 (ARG1) 6، 12 – 14 </ سوب>.

نخاع العظام المستمدة الضامة (BMDM) تقديم نموذج مثالي في المختبر لفهم آليات السيطرة على الاستقطاب من الضامة المنشط 15. على وجه التحديد، وتفعيل الضامة M1 يمكن أن يتسبب بواسطة lipopolysaccharides (LPS) التحفيز، في حين الاستقطاب الضامة M2 يمكن أن يتسبب بواسطة IL-4 و / أو IL-13. ويمكن تحديد الناضجة نخاع العظام المستمدة الضامة والضامة تفعيلها من خلال تحليل التدفق الخلوي للتعبير عن المستضدات السطحية، بما في ذلك CD11b، F4/80، CD11c و، CD206، CD69، CD80 CD86 و 9 و 16 و 17. وبالإضافة إلى ذلك، يمكن قياس التغيرات في إنتاج السيتوكينات ومسارات إشارات الخلية المرتبطة الاستقطاب البلاعم التي كتبها الكمي RT-PCR والغربية النشاف، على التوالي. وباختصار، يمكن الماوس نخاع العظام المستمدة الضامة نموذجا ذات الصلة لدراسة الاستقطاب البلاعم في المختبر.

Protocol

1. عزل خلايا نخاع العظام عزل عظم الفخذ وعظام الساق 6-8 الفئران منذ أسبوع، وشطف الشعر ثم قطع مفتوحة العظام. استخدام إبرة 21G و 10 مل حقنة لطرد نخاع في برنامج تلفزيوني الباردة +2٪ الحرارة المعطل مصل …

Representative Results

ويرد وصف تخطيطي لإجراء الجيل BMDM (الشكل 1). ويمكن ملاحظة نقاء عالية من الضامة ناضجة في يوم 7 عندما تمثل 95-99٪ من CD11b + F4/80 + الخلايا (الشكل 2). يمكن فحص الضامة الاستقطاب باستخدام الأجسام المضادة ضد CD11b، F4/80، وCD11c وCD206 تليها تحليل التدفق الخلوي. كما هو مبين في <st…

Discussion

نفيدكم هنا إجراء بسيط وقابلة للتكيف بسهولة في المختبر للحث على تفعيل الضامة المستمدة من الخلايا الاصلية نخاع العظام. هذا الإجراء يمكن أن تستخدم للتحقيق في الآليات المسؤولة عن استقطاب الضامة. نقاء الضامة ناضجة تم الحصول عليها باستخدام هذا البروتوكول المتوسطات 9…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وأيد هذا العمل من قبل جمعية القلب الأمريكية (BGIA 7850037 للدكتور Beiyan تشو).

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalog Number Comments
IMDM Thermo Scientific SH30259.01
Fetal bovine serum Invitrogen 10438-026
Murine GM-CSF PeproTech 315-03
NH4Cl StemCell Technologies 7850
L-929 ATCC CCL-1
70 μm cell strainer BD Biosciences 352350
10 x PBS Thermo Scientific AP-9009-10
Anti-mouse CD11b-APC eBioscience 17-0112-81
Anti-mouse F4/80-FITC eBioscience 11-4801-81
Anti-mouse CD69-PE eBioscience 12-0691-81
Anti-mouse CD86-PE eBioscience 12-0862-81
Propidium Iodine Invitrogen P3566

References

  1. Meng, Z. X., Wang, G. X., Lin, J. D. A microrna circuitry links macrophage polarization to metabolic homeostasis. Circulation. , (2012).
  2. Lumeng, C. N., Bodzin, J. L., Saltiel, A. R. Obesity induces a phenotypic switch in adipose tissue macrophage polarization. J. Clin. Invest. 117, 175-184 (2007).
  3. Gordon, S., Taylor, P. R. Monocyte and macrophage heterogeneity. Nat. Rev. Immunol. 5, 953-964 (2005).
  4. Gordon, S. Alternative activation of macrophages. Nat. Rev. Immunol. 3, 23-35 (2003).
  5. Tabas, I. Macrophage death and defective inflammation resolution in atherosclerosis. Nat. Rev. Immunol. 10, 36-46 (2010).
  6. Odegaard, J. I., Ricardo-Gonzalez, R. R., Goforth, M. H., Morel, C. R., Subramanian, V., Mukundan, L., Eagle, A. R., Vats, D., Brombacher, F., Ferrante, A. W., Chawla, A. Macrophage-specific pparg controls alternative activation and improves insulin resistance. Nature. 447, 1116-1120 (2007).
  7. Odegaard, J. I., Ricardo-Gonzalez, R. R., Red Eagle, A., Vats, D., Morel, C. R., Goforth, M. H., Subramanian, V., Mukundan, L., Ferrante, A. W., Chawla, A. Alternative m2 activation of kupffer cells by ppard ameliorates obesity-induced insulin resistance. Cell Metabolism. 7, 496-507 (2008).
  8. Vats, D., Mukundan, L., Odegaard, J. I., Zhang, L., Smith, K. L., Morel, C. R., Greaves, D. R., Murray, P. J., Chawla, A. Oxidative metabolism and pgc-1[beta] attenuate macrophage-mediated inflammation. Cell Metabolism. 4, 13-24 (2006).
  9. Mosser, D. M., Edwards, J. P. Exploring the full spectrum of macrophage activation. Nat Rev Immunol. 8, 958-969 (2008).
  10. Arkan, M. C., Hevener, A. L., Greten, F. R., Maeda, S., Li, Z. -. W., Long, J. M., Wynshaw-Boris, A., Poli, G., Olefsky, J., Karin, M. Ikk-b links inflammation to obesity-induced insulin resistance. Nat. Med. 11, 191-198 (2005).
  11. Saberi, M., Woods, N. -. B., de Luca, C., Schenk, S., Lu, J. C., Bandyopadhyay, G., Verma, I. M., Olefsky, J. M. Hematopoietic cell-specific deletion of toll-like receptor 4 ameliorates hepatic and adipose tissue insulin resistance in high-fat-fed mice. Cell Metab. 10, 419-429 (2009).
  12. Kang, K., Reilly, S. M., Karabacak, V., Gangl, M. R., Fitzgerald, K., Hatano, B., Lee, C. -. H. Adipocyte-derived th2 cytokines and myeloid ppard regulate macrophage polarization and insulin sensitivity. Cell Metabolism. 7, 485-495 (2008).
  13. Bouhlel, M. A., Derudas, B., Rigamonti, E., Dievart, R., Brozek, J., Haulon, S., Zawadzki, C., Jude, B., Torpier, G., Marx, N., Staels, B., Chinetti-Gbaguidi, G. Pparg activation primes human monocytes into alternative m2 macrophages with anti-inflammatory properties. Cell Metabolism. 6, 137-143 (2007).
  14. Bronte, V., Zanovello, P. Regulation of immune responses by l-arginine metabolism. Nat. Rev. Immunol. 5, 641-654 (2005).
  15. Zhuang, G., Meng, C., Guo, X., Cheruku, P. S., Shi, L., Xu, H., Li, H., Wang, G., Evans, A. R., Safe, S., Wu, C., Zhou, B. A novel regulator of macrophage activation: Mir-223 in obesity-associated adipose tissue inflammation. Circulation. 125, 2892-2903 (2012).
  16. Kradin, R. L., McCarthy, K. M., Preffer, F. I., Schneeberger, E. E. Flow-cytometric and ultrastructural analysis of alveolar macrophage maturation. J. Leukoc. Biol. 40, 407-417 (1986).
  17. Stein, M., Keshav, S., Harris, N., Gordon, S. Interleukin 4 potently enhances murine macrophage mannose receptor activity: A marker of alternative immunologic macrophage activation. J. Exp. Med. 176, 287-292 (1992).
  18. Strassmann, G., Bertolini, D. R., Kerby, S. B., Fong, M. Regulation of murine mononuclear phagocyte inflammatory products by macrophage colony-stimulating factor. Lack of il-1 and prostaglandin e2 production and generation of a specific il-1 inhibitor. J. Immunol. 147, 1279-1285 (1991).
  19. Biswas, S. K., Mantovani, A. Macrophage plasticity and interaction with lymphocyte subsets: Cancer as a paradigm. Nat. Immunol. 11, 889-896 (2010).
  20. Sica, A., Mantovani, A. Macrophage plasticity and polarization: In vivo veritas. J. Clin. Invest. 122, 787-795 (2012).

Play Video

Cite This Article
Ying, W., Cheruku, P. S., Bazer, F. W., Safe, S. H., Zhou, B. Investigation of Macrophage Polarization Using Bone Marrow Derived Macrophages. J. Vis. Exp. (76), e50323, doi:10.3791/50323 (2013).

View Video