Summary

Мониторинг системных и печени параметров гемодинамики у мышей

Published: October 04, 2014
doi:

Summary

Этот фильм показывает, как приобрести системные и печеночные гемодинамики у мышей. Весь мониторинг включает приобретение жизненно важных параметров, системного артериального давления, центрального венозного давления, общего расхода артерии печени, и портал давления вены, а также скорость потока портал у мышей.

Abstract

Использование моделей мыши в экспериментальных исследованиях имеет огромное значение для изучения печени физиологии и патофизиологии нарушений. Однако в связи с небольшим размером мыши, технические детали процедуры интраоперационного мониторинга, подходящей для мыши редко описано. Ранее мы уже сообщали процедуру мониторинга для получения гемодинамики у крыс. Теперь, мы адаптировали процедуру приобретения системных и печеночные показатели гемодинамики у мышей, вид в десять раз меньше, чем у крыс. Этот фильм демонстрирует приборов животных, а также процесс сбора данных, необходимых для оценки системных и печеночные гемодинамики у мышей. Жизненные параметры, в том числе температуры тела, частоты дыхания и частоты сердечных сокращений были записаны в течение всей процедуры. Системной гемодинамики состоят из давления сонной артерии (CAP) и центрального венозного давления (ЦВД). Печеночные показатели перфузии включают портал VEin давление (ПВП), скорость потока портала, а также скорость потока общей печеночной артерии (таблица 1). И средств сбора данных для записи нормальные значения был завершен в течение 1,5 часов. Системные и печеночные показатели гемодинамики оставались в пределах нормы во время этой процедуры.

Эта процедура является сложной задачей, но выполнимая. Мы уже подали эту процедуру для оценки печеночной гемодинамики у нормальных мышей, а также при 70% и частичной гепатэктомии в доле печени зажима экспериментов. Средний PVP после резекции (п = 20), был 11,41 ± 2,94 КМЗ 2 O, который был значительно выше (Р <0,05), чем раньше резекции (6,87 ± 2,39 КМЗ 2 O). Результаты доли печени зажимного эксперимент показал, что эта процедура мониторинга является чувствительным и пригодны для обнаружения небольших изменений в портального давления и скорости потока портала. В заключение, эта процедура является надежным в руках опытного микро-хирурга, но должно быть ограничено ехрeriments где мышей абсолютно необходимы.

Introduction

Общая цель этого видео было продемонстрировать процедуру мониторинга в режиме реального времени для получения системных и печеночные показатели гемодинамики. Причиной разработки этой процедуры является ее большое значение для экспериментальных вмешательств у мышей, которые требуют получения системных и печеночные показатели гемодинамики. Эта процедура может быть применена к наивных животных и во время или после заданного гепато-билиарной экспериментальной хирургического вмешательства, таких как частичной гепатэктомии воротной вены, лигирование и трансплантации печени.

Приобретение печеночных гемодинамики данных у грызунов требуется предложенную инвазивные процедуры. Печени перфузии не может быть получена неинвазивным. Тем не менее, есть альтернативы для приобретения системного артериального давления. Техника мониторинга, такие как техники хвост манжеты 8 были использованы для приобретения кровяное давление в обоих крыс и мышей. Методика хвост манжеты могут быть применены в consciOUS животных. При измерении кровяного давления, животное должно быть размещены и закреплены в определенном неудобном положении. В руководстве по эксплуатации хвост манжеты устройства, производитель заявляет, что мыши могут стать нервным и подчеркнул, которое может снизить циркуляцию в хвосте. В соответствии с этим обстоятельством, периферической крови, приобретенный в хвосте давление может быть намного ниже, чем в центральной артериального давления.

Процедура полный мониторинг проводили с интегрированным монитором многоканальным используя серию датчиков для сбора данных. Давление крови была получена путем введения катетера в соответствующем сосуде после тщательного микрохирургической вскрытия и воздействия под микроскопом. Скорость потока была измерена путем размещения трансзвуковой зонд потока вокруг каждого судна.

Мы уже сообщали об аналогичном интраоперационной процедуру мониторинга для крыс приводит к всеобъемлющей серии физиологических гемодинамики данных, сопоставимых с одданные по сообщениям из других групп 7. Поэтому мы считали эту процедуру, чтобы представлять хорошую основу для адаптации к мыши, вида 10 раз меньше, чем у крыс. Основное различие с процедурой, крысы является использование катетеров Миллар для получения данных артериального давления, вместо системы катетера на основе текучей среды. Поток данных были также приобретены с околозвуковых зондов потока, всего много мелких, чем за соответствующий крысы сосудов.

В связи с небольшим размером животного, приборы мышей технически сложным, но возможным. После того, как приборы завершена, сбора данных и первичный анализ данных жизнь проста, так как предопределенный файл настройки могут использоваться. Файл параметр должен быть определен один раз в начале серии экспериментов, и могут быть сохранены и использоваться для всех последующих экспериментах.

До сих пор мы применяли эту процедуру для оценки печеночные гемодинамические эффекты в острых опытах. Мы измерили CAP и ПВП до и сразу после 70% частичной гепатэктомии (PH) и в зажимные / де-зажима эксперименты. Мы зажат гепато-перстной связки правой доли составляет 20% от печени масса последующим кратким (5 минут) зажима медианы и левого бокового лепестка, представляющей совершенно 90% массы печени. Де-зажима начал с освобождения зажим с правой доле последующим освобождая средней и левой боковой лепесток. Максимальное время зажима был ниже 10 мин.

Protocol

Корпус и все процедуры, проводимые были в соответствии с немецким защиты животных законодательства. 1 Датчики Калибровка (Следуйте инструкциям производителя для датчиков калибровки) 1.1) Миллар катетер калибровки. Предварительно замочить кончик катетера в ?…

Representative Results

Жизненно важные параметры, такие как мышей частоты дыхания и частоты сердечных сокращений, очевидно, значительно выше, чем у крыс. Среднее системное артериальное давление и яремной вены давление аналогичны значений крыс и даже похожи на человеческие данных. Печеночные …

Discussion

Мониторинг печеночных гемодинамики является важным инструментом исследования в гепатологии и гепатобилиарной хирургии. Приобретение печени гемодинамических данных помогает охарактеризовать действие гепатобилиарных процедур на сердечно-сосудистой системы. Приобретение печеночн?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Это исследование было поддержано немецким Федеральным МИНИСТЕРСТВО образования и научных исследований (BMBF), финансируемого "Виртуальный Печень сети". Я хотел бы поблагодарить Фрэнка Шуберта и Рене Gumpert от медиа-центра Йенского университета больницы за оказанную помощь в производстве видео и создания анимации и Изабель Jank для записи звука.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
PowerLab 16/30  ADInstruments PL3516
Quad Bridge Amp ADInstruments  FE224 Bridge amplifier 
Animal Bio Amp ADInstruments  FE136
Needle Electrodes for FE136 (3 pk) ADInstruments  MLA1213
Perivascular Flowmeter Module Transonic TS420 
Flowprobe MA0.5PSB/MA1PSB Transonic MA0.5PSB/MA1PSB
SPR-1000 Mouse Pressure Catheter Millar instruments 841-0001
fluid filled catheter  Terumo SR+DU2619PX 26G, 0.64×19mm
micro scissors F·S·L No. 14058-09
micro serrefine F·S·L No.18055-05
Micro clamps applicator F·S·L No. 18057-14
Straight micro forceps F·S·L No. 00632-11
Curved micro forceps F·S·L No. 00649-11
needle-holder F·S·L No. 12061-01
6-0 silk ethicon
6-0 prolene ethicon
7-0 prolene ethicon
10-0 prolene ethicon
Tail cut-off device  Kent Scientific www.kentscientific.com
LabChart7 ADInstruments data  analysis software 

References

  1. Albuszies, G., et al. Effect of increased cardiac output on hepatic and intestinal microcirculatory blood flow, oxygenation, and metabolism in hyperdynamic murine septic shock. Crit Care Med. 33 (10), 2332-2338 (2005).
  2. Bernhard, W., et al. Phosphatidylcholine molecular species in lung surfactant: composition in relation to respiratory rate and lung development. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 25 (6), 725-731 (2001).
  3. Cheever, A. W., Warren, K. S. Portal vein ligation in mice: portal hypertension, collateral circulation, and blood flow. 18, 405-407 (1963).
  4. Costa, G., Aguiar, B. G., Coelho, P. M., Cunha-Melo, J. R. On the increase of portal pressure during the acute and chronic phases of murine schistosomiasis mansoni and its reversibility after treatment with oxamniquine. Acta Trop. 89 (1), 13-16 (2003).
  5. Cui, S., Shibamoto, T., Zhang, W., Takano, H., Kurata, Y. Venous resistance increases during rat anaphylactic shock. Shock. 29 (6), 733-739 (2008).
  6. Geerts, A. M., et al. Comparison of three research models of portal hypertension in mice: macroscopic, histological and portal pressure evaluation. Int. J. Exp. Pathol. 89 (4), 251-263 (2008).
  7. Huang, H., Deng, M., Jin, H., Dirsch, O., Dahmen, U. Intraoperative vital and haemodynamic monitoring using an integrated multiple-channel monitor in rats. Lab Anim. 44 (3), 254-263 (2010).
  8. Krege, J. H., Hodgin, J. B., Hagaman, J. R., Smithies, O. A noninvasive computerized tail-cuff system for measuring blood pressure in mice. Hypertension. 25 (5), 1111-1115 (1995).
  9. Kuga, N., et al. Rapid and local autoregulation of cerebrovascular blood flow: a deep-brain imaging study in the mouse. J. Physiol.. 587 (Pt 4), 745-752 (2009).
  10. Muraki, T., Strain Kato, R. difference in the effects of morphine on the rectal temperature and respiratory rate in male mice. Psychopharmacology (Berl). 89 (1), 60-64 (1986).
  11. Nielsen, J. M., et al. Left ventricular volume measurement in mice by conductance catheter: evaluation and optimization of calibration. Am. J. Physiol Heart Circ. Physiol. 293 (1), H534-H540 (2007).
  12. Sakamoto, M., et al. Improvement of portal hypertension and hepatic blood flow in cirrhotic rats by oestrogen. Eur. J. Clin. Invest. 35 (3), 220-225 (2005).
  13. Reverter, E., et al. Impact of deep sedation on the accuracy of hepatic and portal venous pressure measurements in patients with cirrhosis. Liver Int. 34 (1), 16-25 (2014).

Play Video

Cite This Article
Xie, C., Wei, W., Zhang, T., Dirsch, O., Dahmen, U. Monitoring of Systemic and Hepatic Hemodynamic Parameters in Mice. J. Vis. Exp. (92), e51955, doi:10.3791/51955 (2014).

View Video