Summary

Lesão Balloon Vascular e Administração Intraluminal em Rat Carótida

Published: December 23, 2014
doi:

Summary

Este protocolo utiliza um cateter balão para causar uma lesão intraluminal na artéria carótida de rato e, doravante, provocar hiperplasia neointimal. Este é um modelo bem estabelecido para o estudo dos mecanismos de remodelação vascular em resposta a lesão. É também amplamente utilizada para determinar a validade de potenciais abordagens terapêuticas.

Abstract

O modelo de lesão por balão da artéria carótida em ratos tem sido bem estabelecida há mais de duas décadas. Mantém-se um método importante para estudar os mecanismos moleculares e celulares envolvidos na desdiferenciação do músculo liso vascular, a formação da neoíntima e remodelação vascular. Ratos machos Sprague-Dawley são os animais mais utilizados para este modelo. Ratas não são preferidos como hormônios femininos protegem contra doenças vasculares e, assim, apresentar uma variação para este procedimento. A carótida esquerda é tipicamente feridos com o carótida direita que serve como um controlo negativo. Lesão carótida esquerda é causada pelo balão insuflado que desnuda o endotélio e distender s parede do vaso. Após lesão, potenciais estratégias terapêuticas tais como a utilização de compostos farmacológicos e qualquer gene ou shRNA transferência pode ser avaliada. Tipicamente para gene ou transferência shRNA, a seção de feridos do lúmen do vaso é transduced localmente por 30 min com vIRAL partículas que codificam uma proteína ou shRNA ou para a entrega e expressão na parede do vaso lesionado. Espessamento neointimal que representa as células musculares lisas vasculares proliferativas normalmente picos a 2 semanas após a lesão. Os vasos são principalmente colhidas neste ponto de tempo para análise celular e molecular de vias de sinalização celular, bem como a expressão do gene e proteína. As embarcações também podem ser colhidas a pontos de tempo anteriores para determinar o início da expressão e / ou activação de uma proteína ou via específica, de acordo com os objectivos pretendidos experimentais. Os navios podem ser caracterizadas e avaliadas por meio da coloração histológica, imunohistoquímica, ensaios de proteína / mRNA, e ensaios de atividade. A artéria carótida direita intacto do mesmo animal é um controle interno ideal. Mudanças induzidas pelo prejuízo, em parâmetros moleculares e celulares pode ser avaliada comparando a artéria ferido à artéria controle direito interno. Da mesma forma, as modalidades terapêuticas pode ser avaliada comparando a firad e tratado artéria para o controle lesionado só artéria.

Introduction

Os cateteres de balão são dispositivos médicos utilizados no procedimento da angioplastia, com a finalidade de alargamento local obstruído (s) de ateroma ou trombo num vaso sanguíneo. Os lúmen do vaso estreitadas é forçado a abrir pelo balão inflado e fornecimento de sangue seria restaurada sequencialmente para aliviar os sintomas de isquemia a jusante, tais como angina, infarto do miocárdio e dor na perna. No entanto, o grande sucesso da angioplastia foi diminuída por complicações pós-operatórias, tais como resultados de força causando barotrauma vascular (lesão por balão), nomeadamente a remodelação da parede do vaso e, em muitos casos re-estreitamento da luz do vaso (reestenose) 1.

Uma série de modelos animais têm sido desenvolvidas imitando o procedimento de angioplastia para ajudar os investigadores a compreender os mecanismos subjacentes a embarcação remodelação parede relacionados com o balão-lesão 2. Entre todas as espécies de animais utilizados para a modelagem, o rato é o mais utilizado. Compared a coelhos, cães e porcos, as vantagens de os ratos são seu baixo custo, sua relativa facilidade de uso e o conhecimento atual da fisiologia rato. Embora os ratos têm uma vantagem adicional em uma ampla gama de estirpes geneticamente manipuladas, o navio ratinhos é muito pequeno para inserir um cateter balão. Ao longo das últimas três décadas, os ratos experimentais têm permitido aos pesquisadores obter uma melhor compreensão dos mecanismos moleculares e celulares que sustentam a formação da neoíntima e remodelação vascular 3-6. Além da lesão do balão, o remodelamento vascular também estão envolvidos na maioria das doenças vasculares importantes, como a aterosclerose 7,8, hipertensão 9 e 10 de aneurisma. Assim, o conhecimento adquirido através do modelo de lesão balão é, em geral, benéfica para estudos globais da doença parede vascular.

O objectivo geral do modelo de lesão por balão de rato não é apenas de compreender ainda as doenças vasculares, mas também para testar a potência de novos agentes parao controle da doença 11,12. Tratamento medicamentoso clínico atual para reestenose é aplicado por stents farmacológicos efectuadas através do lúmen do vaso logo após a angioplastia. Em modelos animais, uma forma eficiente ainda mais econômica para novos testes agente é um método de perfusão intraluminal locais bem desenvolvida. Os agentes candidatos que foram testados através deste método incluem drogas de moléculas pequenas 13,14, citocinas ou factores de crescimento 15,16, agentes de manipulação de genes (clones de cDNA, siRNA, etc.), 17-20, e novas formulações farmacêuticas 21,22.

Até agora, o modelo de lesão balão rato continua sendo um dos modelos mais úteis para o estudo de doenças / distúrbios vasculares. É o passo fundamental da bancada de cabeceira, geralmente como o primeiro passo, no sentido de in vitro para in vivo, mas não deve ser o último. O resultado de experiências com ratos precisa ser deliberado e ainda caracterizado antes tradução humanautilização clínica, devido à diferença de leitos vasculares e a anatomia do vaso, bem como as diferenças intrínsecas entre as espécies humana e de rato 23-26. No entanto, ainda é uma ferramenta essencial na investigação médica translacional. Embora essa pesquisa utilizou a ser limitada pela falta de ratos geneticamente modificados, que deixou de ser um problema desde abordagens genômicas inéditas, como zinc-finger nucleases 27, 28 e TALENS CRISPR-Cas 29 fizeram ratos knockout facilmente acessível.

Protocol

NOTA: O uso de animais para os seguintes experimentos tem sido revisado e aprovado pelo cuidado e uso Comitê Institucional Animal (IACUC). 1. Procedimentos pré-operatórios Esterilizar instrumentos cirúrgicos antes de usar. Autoclave todos os instrumentos cirúrgicos 24 horas ou menos antes da cirurgia. Se várias cirurgias são realizadas no mesmo dia, esterilizar os instrumentos por um esterilizador talão seca entre cirurgias. Filtro-esteri…

Representative Results

Duas semanas após a lesão, artérias carótidas são colhidas, seccionados e sujeitos a análise morfológica. As artérias são cross-seccionados e corados com H & E (Figuras 1, 2B, C e 3). Da parede da artéria carótida de rato contém quatro camadas de lâmina elástica, que aparecem como linhas de rosa. A área entre a lâmina externa, lâmina elástica externa (EEL) e a lâmina mais interior, da lâmina elástica interna (IEL) é a camada de músculo liso meios (Figura 1). A…

Discussion

O rato da lesão do balão carótida foi bem descrito por Tulis em 2007 34. Tem sido exaustivamente discutido todos os detalhes deste procedimento pelo Dr. Tulis. Os leitores que estão interessados ​​em realizar este procedimento são altamente recomendados para ler protocolo Tulis '. No entanto, há uma coisa que não está concordando com o Dr. Tulis: Em vez de inflar o balão com soro fisiológico ou qualquer tipo de líquido, sugerimos para inflá-lo com o ar. De acordo com nossa experiência pessoal, inflando com l?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We are grateful to Dr. Clowes for first developing and describing this method. We are also thankful to Dr. Tulis for his detailed protocol which has been fundamentally helpful to our previous, current and future work. This work was supported by grants R01HL097111 and R01HL123364 from the NIH to M.T., and by American Heart Association grant 14GRNT18880008 to M.T.

We would like to thank Rachel Newton for her expert technical support and for her valuable help during the filming process.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Fogarty balloon embolectomy catheters, 2 French  Edwards Lifesciences, Germany  120602F
Deltaphase Operating Board – Includes 2 Pads & 2 Insulators Braintree Scientific, Inc. 39OP
 LED light source Fisher Scientific 12-563-501 
Hartmann Mosquito Forceps 4” curved Apiary Medical, Inc. San Diego, CA gS 22.1670
Crile Retractor 4” double ended Apiary Medical, Inc. gS 34.1934
Other surgical instruments Roboz Surgical Instrument Company, Inc., Gaithersburg, MD
Peripheral Intravenous (I.V.) Cannula, 24G BD 381312
Ketamine HCl, 100mg/mL, 10mL Ketaset- Patterson Vet 07-803-6637 
Xylazine (AnaSed),20mg/mL,20mL Ketaset- Patterson Vet 07-808-1947
Buprenex, 0.3mg/1ml (5 Ampules/Box) Ketaset- Patterson Vet 07-850-2280
Nair Baby Oil Hair Removal Lotion-9 oz Amazon/Walmart/CVS N/A
Inflation Device Demax Medical DID30
D300 3-way Stopcock B.Braun Medical Inc. 4599543
Artificial Tears Ointment  Rugby Laboratories, Duluth, GA N/A

References

  1. Landzberg, B. R., Frishman, W. H., Lerrick, K. Pathophysiology and pharmacological approaches for prevention of coronary artery restenosis following coronary artery balloon angioplasty and related procedures. Progress in Cardiovascular Diseases. 39, 361-398 (1997).
  2. Muller, D. W., Ellis, S. G., Topol, E. J. Experimental models of coronary artery restenosis. J. Am. Coll. Cardiol. 19, 418-432 (1992).
  3. Clowes, A. W., Reidy, M. A., Clowes, M. M. Kinetics of cellular proliferation after arterial injury. I. Smooth muscle growth in the absence of endothelium. Laboratory Investigation: A Journal of Technical Methods and Pathology. 49, 327-333 (1983).
  4. Clowes, A. W., Reidy, M. A., Clowes, M. M. Mechanisms of stenosis after arterial injury. Laboratory Investigation: A Journal of Technical Methods and Pathology. 49, 208-215 (1983).
  5. Clowes, A. W., Clowes, M. M. Kinetics of cellular proliferation after arterial injury. IV. Heparin inhibits rat smooth muscle mitogenesis and migration. Circulation Research. 58, 839-845 (1986).
  6. Li, G., Chen, S. J., Oparil, S., Chen, Y. F., Thompson, J. A. Direct in vivo evidence demonstrating neointimal migration of adventitial fibroblasts after balloon injury of rat carotid arteries. Circulation. 101, 1362-1365 (2000).
  7. Kiechl, S., Willeit, J. The natural course of atherosclerosis. Part II: vascular remodeling. Bruneck Study Group. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 19, 1491-1498 (1999).
  8. Yamamoto, S., et al. Derivation of rat embryonic stem cells and generation of protease-activated receptor-2 knockout rats. Transgenic Research. 21, 743-755 (2012).
  9. Intengan, H. D., Schiffrin, E. L. Vascular remodeling in hypertension: roles of apoptosis, inflammation, and fibrosis. Hypertension. 38, 581-587 (2001).
  10. Meng, H., et al. Complex hemodynamics at the apex of an arterial bifurcation induces vascular remodeling resembling cerebral aneurysm initiation. Stroke. 38, 1924-1931 (2007).
  11. Sun, C. K., Shao, P. L., Wang, C. J., Yip, H. K. Study of vascular injuries using endothelial denudation model and the therapeutic application of shock wave: a review. American Journal of Rranslational Research. 3, 259-268 (2011).
  12. Zhang, W., et al. Orai1-mediated I (CRAC) is essential for neointima formation after vascular injury. Circulation Research. 109, 534-542 (2011).
  13. Ollinger, R., et al. Bilirubin: a natural inhibitor of vascular smooth muscle cell proliferation. Circulation. 112, 1030-1039 (2005).
  14. Levitzki, A. PDGF receptor kinase inhibitors for the treatment of restenosis. Cardiovascular Research. 65, 581-586 (2005).
  15. Asahara, T., et al. Local delivery of vascular endothelial growth factor accelerates reendothelialization and attenuates intimal hyperplasia in balloon-injured rat carotid artery. Circulation. 91, 2793-2801 (1995).
  16. Lee, K. M., et al. Alpha-lipoic acid inhibits fractalkine expression and prevents neointimal hyperplasia after balloon injury in rat carotid artery. Atherosclerosis. 189, 106-114 (2006).
  17. Ji, R., et al. MicroRNA expression signature and antisense-mediated depletion reveal an essential role of MicroRNA in vascular neointimal lesion formation. Circulation Research. 100, 1579-1588 (2007).
  18. Merlet, E., et al. miR-424/322 regulates vascular smooth muscle cell phenotype and neointimal formation in the rat. Cardiovascular Research. 98, 458-468 (2013).
  19. Huang, J., Niu, X. L., Pippen, A. M., Annex, B. H., Kontos, C. D. Adenovirus-mediated intraarterial delivery of PTEN inhibits neointimal hyperplasia. Arteriosclerosis, Thrombosis, And Vascular Biology. 25, 354-358 (2005).
  20. Gonzalez-Cobos, J. C., et al. Store-independent Orai1/3 channels activated by intracrine leukotriene C4: role in neointimal hyperplasia. Circulation Research. 112, 1013-1025 (2013).
  21. Guzman, L. A., et al. Local intraluminal infusion of biodegradable polymeric nanoparticles. A novel approach for prolonged drug delivery after balloon angioplasty. Circulation. 94, 1441-1448 (1996).
  22. Lipke, E. A., West, J. L. Localized delivery of nitric oxide from hydrogels inhibits neointima formation in a rat carotid balloon injury model. Acta Biomaterialia. 1, 597-606 (2005).
  23. Osterrieder, W., et al. Role of angiotensin II in injury-induced neointima formation in rats. Hypertension. 18, II60-II64 (1991).
  24. Powell, J. S., et al. Inhibitors of angiotensin-converting enzyme prevent myointimal proliferation after vascular injury. Science. 245, 186-188 (1989).
  25. . Does the new angiotensin converting enzyme inhibitor cilazapril prevent restenosis after percutaneous transluminal coronary angioplasty? Results of the MERCATOR study: a multicenter, randomized, double-blind placebo-controlled trial. Multicenter European Research Trial with Cilazapril after Angioplasty to Prevent Transluminal Coronary Obstruction and Restenosis (MERCATOR) Study Group. Circulation. 86, 100-110 (1992).
  26. Faxon, D. P. Effect of high dose angiotensin-converting enzyme inhibition on restenosis: final results of the MARCATOR Study, a multicenter, double-blind, placebo-controlled trial of cilazapril. The Multicenter American Research Trial With Cilazapril After Angioplasty to Prevent Transluminal Coronary Obstruction and Restenosis (MARCATOR) Study Group. J Am Coll Cardiol. 25, 362-369 (1995).
  27. Geurts, A. M., et al. Knockout rats via embryo microinjection of zinc-finger nucleases. Science. 325, 433 (2009).
  28. Tesson, L., et al. Knockout rats generated by embryo microinjection of TALENs. Nature Biotechnology. 29, 695-696 (2011).
  29. Li, D., et al. Heritable gene targeting in the mouse and rat using a CRISPR-Cas system. Nature Biotechnology. 31, 681-683 (2013).
  30. Potier, M., et al. Evidence for STIM1- and Orai1-dependent store-operated calcium influx through ICRAC in vascular smooth muscle cells: role in proliferation and migration. FASEB Journal : Official Publication Of The Federation Of American Societies For Experimental Biology. 23, 2425-2437 (2009).
  31. Aubart, F. C., et al. RNA interference targeting STIM1 suppresses vascular smooth muscle cell proliferation and neointima formation in the rat. Molecular Therapy. The Journal Of The American Society Of Gene Therapy. 17, 455-462 (2009).
  32. Berra-Romani, R., Mazzocco-Spezzia, A., Pulina, M. V., Golovina, V. A. Ca2+ handling is altered when arterial myocytes progress from a contractile to a proliferative phenotype in culture. American journal of physiology. Cell Physiology. 295, C779-C790 (2008).
  33. Bisaillon, J. M., et al. Essential role for STIM1/Orai1-mediated calcium influx in PDGF-induced smooth muscle migration. American journal of physiology. Cell Physiology. 298, C993-C1005 (2010).
  34. Tulis, D. A. Rat carotid artery balloon injury model. Methods In Molecular Medicine. 139, 1-30 (2007).
  35. Zhang, W., Trebak, M., Szallasi, A., Bíró, T. Balloon Injury in Rats as a Model for Studying TRP Channel Contribution to Vascular Smooth Muscle Remodeling. T TRP Channels in Drug DiscoveryMethods in Pharmacology and Toxicology. , 101-111 (2012).
  36. Tulis, D. A. Histological and morphometric analyses for rat carotid balloon injury model). Methods In Molecular Medicine. 139, 31-66 (2007).
check_url/cn/52045?article_type=t

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Cite This Article
Zhang, W., Trebak, M. Vascular Balloon Injury and Intraluminal Administration in Rat Carotid Artery. J. Vis. Exp. (94), e52045, doi:10.3791/52045 (2014).

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