Fluorescence Biomembrane la Force Probe: quantification simultanée de Kinetics récepteur-ligand et induits Reliure-signalisation intracellulaire sur une cellule unique
Summary
We describe a technique for concurrently measuring force-regulated single receptor-ligand binding kinetics and real-time imaging of calcium signaling in a single T lymphocyte.
Abstract
Interactions récepteur-ligand à membrane médiation de nombreuses fonctions cellulaires. Cinétique de liaison et la signalisation en aval déclenchée par ces interactions moléculaires sont probablement affectés par l'environnement mécanique dans lequel la liaison et de signalisation ont lieu. Une étude récente a montré que la force mécanique peut réguler reconnaissance de l'antigène et par le déclenchement du récepteur des cellules T (TCR). Ceci a été rendu possible grâce à une nouvelle technologie développée et la fluorescence Qualifié de sonde de force de biomembrane (FBFP), qui combine la spectroscopie de force seule molécule avec la microscopie de fluorescence. Utiliser une cellule ultra-doux rouge sang humain comme le capteur de force sensible, une caméra à haute vitesse et en temps réel des techniques de suivi de l'imagerie, l'FBFP est de ~ 1 PN (10 -12 N), ~ 3 nm et ~ 0,5 ms en vigueur, la résolution spatiale et temporelle. Avec la FBFP, on peut mesurer précisément la cinétique simples de liaison récepteur-ligand en vertu du règlement de la force et cal intracellulaire simultanément l'image-liaison déclenchécium de signalisation sur une seule cellule vivante. Cette nouvelle technologie peut être utilisée pour étudier une autre interaction et la signalisation du récepteur-ligand membrane dans d'autres cellules sous régulation mécanique.
Introduction
Cellule à cellule et cellule-matrice extracellulaire à (ECM) est médiée par l'adhérence de liaison entre les récepteurs de surface cellulaire, des protéines de l'ECM, et / ou des lipides 1. Reliure permet cellules pour former des structures fonctionnelles 1, ainsi que de reconnaître, de communiquer, et réagissent à l'environnement 1-3. Contrairement aux protéines solubles (par exemple, cytokines et facteurs de croissance) qui se lient à partir d'un à trois dimensions (3D) en phase liquide sur les récepteurs de surface cellulaire, des récepteurs d'adhésion cellulaire forment des liaisons avec leurs ligands à travers une fente de jonction étroit pour combler deux surfaces opposées qui limitent moléculaire diffusion dans une dimensions (2D) Interface 7.4 deux. Contrairement à la cinétique 3D qui sont couramment mesurée par des tests de liaison traditionnels (par exemple, la résonance plasmonique de surface ou SPR), la cinétique 2D ont être quantifiés avec des techniques spécialisées telles que la microscopie à force atomique (AFM) 8-10, chambre 11,12 couler, 13,14 micropipette, optiquepincettes 15 et sonde de force de biomembrane (BFP) 16-21.
Plus que de simplement fournir liaison physique pour la cohésion cellulaire, des molécules d'adhésion sont une composante majeure de la machinerie de signalisation de la cellule pour communiquer avec son environnement. Il ya eu un intérêt croissant pour comprendre comment l'engagement ligand de molécules d'adhésion initie la signalisation intracellulaire et comment le signal initial est transduit intérieur de la cellule. Intuitivement, propriétés de liaison récepteur-ligand peut influer sur les signaux qu'il induit. Cependant, il est difficile de disséquer les relations mécanistes entre l'interaction extracellulaire et des événements de signalisation intracellulaire utilisant ensemble traditionnel des essais biochimiques en raison de leurs nombreuses limites, par exemple, une résolution temporelle pauvres et l'absence totale de la résolution spatiale. Des méthodes qui permettent à la fois biophysique (2D cinétique liaison récepteur-ligand) et biochimiques (signalisation) des observations sur direct existantcellules comprennent des substrats de rigidité accordable 22, élastomère tableaux pilier 23 et dispositifs chambre d'écoulement / microfluidiques intégrés avec une capacité de fluorescence 24-26. Cependant, des lectures de signalisation et de liaison au récepteur-ligand doivent être obtenus séparément (le plus souvent par des méthodes différentes), ce qui rend difficile de disséquer les relations temporelles et spatiales des caractéristiques d'adhérence avec les événements de signalisation.
BFP classique est une spectroscopie de force à la résolution spatio-temporelle ultrasensible haute 17. Il utilise une cellule souple rouge sang (RBC) comme un capteur de force, ce qui permet la mesure de la cinétique d'une seule molécule 2D, les propriétés mécaniques et les changements de conformation 14,16,19-21,27-29. Un BFP basée imagerie de fluorescence (FBFP) corrèle la cinétique de liaison récepteur-ligand avec la signalisation cellulaire de liaison déclenché à l'échelle de molécule unique. Avec cette configuration, à des activités de signalisation de cellule in situ dans le cadre de méca de surfacecal stimulation a été observée dans les lymphocytes T 27. Le FBFP est polyvalent et peut être utilisé pour des études de l'adhésion cellulaire et de la signalisation à médiation par d'autres molécules dans d'autres cellules.
Protocol
Representative Results
Discussion
Une expérience réussie FBFP implique quelques considérations critiques. Tout d'abord, pour le calcul de la force pour être fiable, la micropipette, la RBC, et le cordon de la sonde doivent être alignées aussi près que possible coaxial. La projection de l'intérieur de la pipette RBC devrait être d'environ une sonde de diamètre de la pipette de sorte que le frottement entre le RBC et la pipette est négligeable. Pour une RBC humain typique, le diamètre de la pipette est optimal de 2,0 à 2,4 um, ce …
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Research related to this paper and the development of the fBFP technology in the Zhu lab were supported by NIH grants AI044902, AI077343, AI038282, HL093723, HL091020, GM096187, and TW008753. We thank Evan Evans for inventing this empowering experimental tool, and members of the Evans lab, Andrew Leung, Koji Kinoshita, Wesley Wong, and Ken Halvorsen, for helping us to build the BFP. We also thank other Zhu lab members, Fang Kong, Chenghao Ge and Kaitao Li, for their helps in the instrumentation development.
Materials
| Table 1: Reagents/Equipment | |||
| Name of Material/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
| Sodium Phosphate Monobasic Monohydrate (NaH2PO4•H2O) | Sigma-Aldrich | S9638 | Phosphate buffer preparation |
| Anhy. Sodium Phosphate Dibasic (Na2HPO4) | Sigma-Aldrich | S7907 | Phosphate buffer preparation |
| Sodium Carbonate (Na2CO3) | Sigma-Aldrich | S2127 | Carbonate/bicarbonate buffer preparation |
| Sodium Bicarbonate (NaHCO3) | Sigma-Aldrich | S5761 | Carbonate/bicarbonate buffer preparation |
| Sodium chloride (NaCl) | Sigma-Aldrich | S7653 | N2-5% buffer preparation |
| Potassium chloride (KCl) | Sigma-Aldrich | P9541 | N2-5% buffer preparation |
| Potassium phosphate monobasic (KH2PO4) | Sigma-Aldrich | P5655 | N2-5% buffer preparation |
| Sucrose | Sigma-Aldrich | S0389 | N2-5% buffer preparation |
| MAL-PEG3500-NHS | JenKem | A5002-1 | Bead functionalization |
| Biotin-PEG3500-NHS | JenKem | A5026-1 | RBC biotinylation |
| Nystatin | Sigma-Aldrich | N6261 | RBC osmolarity adjustment |
| Ammonium Hydroxide (NH4OH) | Sigma-Aldrich | A-6899 | Glass bead silanization |
| Methanol | BDH | 67-56-1 | Glass bead silanization |
| 30% Hydrogen Peroxide (H2O2) | J. T. Barker | Jan-86 | Glass bead silanization |
| Acetic Acid (Glacial) | Sigma-Aldrich | ARK2183 | Glass bead silanization |
| 3-MERCAPTOPROPYLTRIMETHOXYSILANE(MPTMS) | Uct Specialties, llc | 4420-74-0 | Glass bead functionalization |
| Borosilicate Glass beads | Distrilab Particle Technology | 9002 | Glass bead functionalization |
| Streptavidin−Maleimide | Sigma-Aldrich | S9415 | Glass bead functionalization |
| BSA | Sigma-Aldrich | A0336 | Ligand functionalizing |
| Fura2-AM | Life Technologies | F-1201 | Intracellular calcium fluorescence dye loading |
| Dimethyl sulfoxide (DMSO) | Sigma-Aldrich | D2650 | Intracellular calcium fluorescence dye loading |
| Quantibrite PE Beads | BD Biosciences | 340495 | Density quantification |
| Flow Cytometer | BD Biosciences | BD LSR II | Density quantification |
| Capillary Tube 0.7-1.0mm x 30" | Kimble Chase | 46485-1 | Micropipette making |
| Flaming/Brown Micropipette Puller | sutter instrument | P-97 | Micropipette making |
| Pipette microforce | Narishige | MF-900 | Micropipette making |
| Mineral Oil | Fisher Scientific | BP2629-1 | Chamber assembly |
| Microscope Cover Glass | Fisher Scientific | 12-544-G | Chamber assembly |
| Micro-injector | World Precision Instruments | MF34G-5 | Chamber assembly |
| 1ml Syringe | BD | 309602 | Chamber assembly |
| Micropipette holder | Narishige | HI-7 | Chamber assembly |
| Home-designed mechanical parts and adaptors fabrications using CNC machining. | Biophysics Instrument | All parts are customized according to the CAD designs. | BFP system |
| Microscope (TiE inverted) | Nikon | MEA53100 | BFP system |
| Objective CFI Plan Fluor 40x (NA 0.75, WD 0.72mm, Spg) | Nikon | MRH00401 | BFP system |
| Camera, GE680, 640×480, GigE, 1/3" CCD, mono | Graftek Imaging | 02-2020C | BFP system |
| Prosilica GC1290 – ICX445, 1/3", C-Mount, 1280×960, Mono., CCD, 12 Bit ADC | Graftek Imaging | 02-2185A | BFP system |
| Manual submicron probehead with high resolution remote control | Karl Suss | PH400 | BFP system |
| Anti-vibration table (5’ x 3’) | TMC | 77049089 | BFP system |
| 3D manual translational stage | Newport | 462-XYZ-M | |
| SolidWorks 3D CAD software | SOLIDWORKS Corp. | Version 2012 SP5 | BFP system |
| LabVIEW software | National Instruments | Version 2009 | BFP system, BFP program |
| 3D piezo translational stage | Physik Instrumente | M-105.3P | BFP system |
| Linear piezo accuator | Physik Instrumente | P-753.1CD | BFP system |
| Micromanager software | Version 1.4 | fBFP system, fluorescence imaging program | |
| Dual Cam (DC-2) | Photometrics | 77054724 | fBFP system |
| Dual Cam emission filter (T565LPXR) | Photometrics | 77054725 | fBFP system |
| Fluorescence Camera | Hamamatsu | ORCA-R2 C10600-10B | fBFP system |
| Plastic paraffin film (Parafilm) | Bemis Company, Inc | PM996 | bottle sealing |
| Table 2: Buffer solutions | |||
| Carbonate/bicarbonate buffer (pH 8.5) | |||
| Sodium Carbonate (Na2CO3) | 8.4g/L | ||
| Sodium Bicarbonate (NaHCO3) | 10.6g/L | ||
| Phosphate buffer (pH 6.5-6.8) | |||
| NaPhosphate monobasic NaH2PO4•H2O | 27.6g/L | ||
| Anhy. NaPhosphate dibasic Na2HPO4 | 28.4g/L | ||
| N2-5% buffer (pH 7.2) | |||
| Potassium chloride (KCl) | 20.77g/L | ||
| Sodium chloride (NaCl) | 2.38g/L | ||
| Potassium phosphate monobasic (KH2PO4) | 0.13g/L | ||
| Anhy. Sodium Phosphate Dibasic (Na2HPO4) | 0.71g/L | ||
| Sucrose | 9.70g/L | ||
References
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