Summary

הערכה של הפלישה התא, תהליך ההעברה: השוואה של השריטה מבוסס-מיקרוסקופ וידאו פצע Assay ואת וזמינותו קאמרית בוידן

Published: November 17, 2017
doi:

Summary

המחקר מדווח על שתי שיטות שונות לניתוח של הפלישה תא והעברה: וזמינותו קאמרית בוידן, במבחנה וידאו מבוסס-מיקרוסקופ ריפוי פצע וזמינותו. הפרוטוקולים עבור שני ניסויים אלה מתוארים, היתרונות והחסרונות שלהם מושווים.

Abstract

היכולות הפלישה והעברה של תאים סרטניים הם התורמים העיקריים התקדמות סרטן, מופע חוזר. מחקרים רבים בחנו את יכולות העברה ופלישה להבין איך להפיץ תאים סרטניים, במטרה לפתח אסטרטגיות טיפול חדשות. ניתוח של הבסיס תאית ומולקולרית של היכולות הללו הוביל אפיון תא ניידות ואת המאפיינים physicochemical של שלד התא, microenvironment הסלולר. במשך שנים רבות, וזמינותו קאמרית בוידן ואת וזמינותו פצע שריטה כבר הטכניקות רגיל ללמוד תא הפלישה והעברה. עם זאת, אלה שתי טכניקות יש מגבלות. וזמינותו קאמרית בוידן קשה וצורכת זמן, ויש וזמינותו פצע שריטה הפארמצבטית נמוכה. התפתחות הטכנולוגיות המודרניות, במיוחד במיקרוסקופ, הגבירה את הפארמצבטית של פצע שריטה וזמינותו. באמצעות מערכות ניתוח רב-עוצמה, מיקרוסקופ וידאו “בחממה” יכול לשמש כדי לספק וניתוח אוטומטי בזמן אמת של נדידת תאים, הפלישה. מטרת מאמר זה היא לדווח ולהשוות את מבחני שני חקר התא הפלישה והעברה: וזמינותו קאמרית בוידן וטיוטה אופטימיזציה במבחנה וידאו מבוסס-מיקרוסקופ פצע וזמינותו.

Introduction

תא הפלישה והעברה מעורבים להפצת תאים סרטניים, אשר מהווה את הגורם העיקרי של התנגדות טיפול1 והוא יכול להוביל locoregional או הישנות גרורתי לאחר סרטן טיפול2. המעבר אפיתל-mesenchymal (החובשים) הוא התהליך הראשוני של הפלישה-נדידת תאים שבה סרטן תאים להחליף בין אפיתל הפנוטיפ mesenchymal. E-קדהרין הוא סמן חוץ-תאי של פנוטיפ אפיתל3, ביטוי מוגבר של N-קדהרין, vimentin היא תכונה של פנוטיפ mesenchymal4. ההעברה תלויה גם הקיבולת מהותי של תאים סרטניים לפלוש מטריצות (ECM) דרך הפעולה של מטריקס metalloproteases5.

מנגנון ההעברה – הפלישה זה תואר לסרטן במקומות רבים, בפרט סרטן הראש והצוואר6. חוקרים רבים התמקדו תהליכי ההעברה ופלישה כדי להבין טוב יותר כיצד תאים סרטניים להפיץ בתקווה כי הידע הזה יוביל אסטרטגיות טיפול חדשות. זה הכרחי כי מחקרים אלה מבוצעות באמצעות מבחני לשחזור ואמין.

ניתוח במבחנה של תנועתיות התא יכול להיות מאתגר. שפותחה לפני שנים רבות, וזמינותו קאמרית בוידן נחשב להיות הסטנדרט עבור ניתוח הפלישה – הגירה7. עם זאת, זהו זמן רב והוא לעיתים קרובות לא מדויק. בדיקה נוספת היא ריפוי פצע assay8, אשר כרוך ביצוע שריטה על תרבות חד שכבתי תא לכידת תמונות של תא הפלישה והעברה במרווחי זמן קבועים. טכניקה זו ביקורת נרחב בגלל הווריאציות גדול בין התוצאות של שתי בדיקות רצופות. עם זאת, היישום של טכנולוגיות מודרניות, במיוחד במיקרוסקופ, השתפרה את הפארמצבטית של פצע שריטה וזמינותו. מיקרוסקופ וידאו יכול להיות בקלות הציג חממות, ניתן להפיק תמונות בזמן אמת של נדידת תאים. התקנים אלה להקליט נתונים מיקרוסקופיים, מספקים ניתוח אוטומטי של הפצע תא זרימה לאורך זמן. מטרת המאמר היא לתאר וזמינותו קאמרית בוידן ואת וזמינותו פצע שריטה ממוטבת, כדי לדון את היתרונות והחסרונות של כל גישה.

Protocol

הערה: מבחני לשכת ולגרד בוידן ללא הכללת ECM מכונים וזמינותו ההעברה, מבחני אותו באמצעות ECM נחשבת וזמינותו הפלישה. 1. בוידן קאמרית Assay הערה: פרוטוקול זה הוא מותאם הקו תא SQ20B, אשר נגזר חוזרים ונשנים הראש, הצוואר קרצינומה של תאים קשקשיים (HNSCC) סרטן בגרון היה המתקבלים ג’ון …

Representative Results

. מדווחים כאן שתי שיטות שונות כדי לנתח תא הפלישה והעברה. איור 1 מציג בוידן קאמרית הניסוי. התוספות ממוקמים בתוך צלחת לוויה chemoattractant בינונית, התאים הם נזרע בס מ. הקרום יכול להיות ניטראלית (העברה assay) או מצופה (הפלישה assay). התאים הם נזרע לתא העליון ב- s-ס”מ. תא תחתון …

Discussion

. מדווחים כאן שתי שיטות שונות ללמוד הפלישה תא את תהליך ההעברה. הניתוח של תהליך זה חשוב להבנת הגורמים המעורבים הישנות גרורתי, אשר יכול להיות מוסבר על ידי תנועתיות מוגברת subpopulation של תאים סרטניים נקרא סרטן בתאי גזע10,11.

הניסוי קאמרית בוידן היא אחת …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

טכניקות אלה פותחו עם התמיכה של LabEx הראשוניים (ANR-11-LABX-0063), תוכנית Contrat-הינוממוקם-אזור (CPER) במסגרת מדעי אטואל (CPER 2009-2013), לירית גרנט האינקה-DGOS-4664.

Materials

Fetal Calf Serum Gold GE Healthcare A15-151
Hydrocortisone water soluble Sigma-Aldrich H0396-100MG
Penicillin/Streptomycin 100 X Dominique Dutscher L0022-100
DMEM Gibco 61965-026
F12 Nut Mix (1X) + GlutaMAX-I Gibco 31765-027
EGF Promega G5021 The solution must be prepared just before use because it is very unstable
Z1 coulter particle Beckman Coulter 6605698
Optical microscope Olympus  CKX31
SQ20B cell line Gift from the John Little’s Laboratory
Wound Maker Essen Bioscience 4494 Store in safe and dry place
96-well ImageLock Plate Essen Bioscience 4379
CoolBox 96F System with CoolSink 96F Essen Bioscience 1500-0078-A00
CoolBox with M30 System Essen Bioscience 1500-0078-A00
Boyden Insert Dominique Dutcher 353097
Boyden Coated Insert Dominique Dutcher 354483 Store at -20 °C
Companion 24-well Plate Dominique Dutcher 353504
BD Matrigel standard BD BioScience BD 354234 Store at -20°C. 
RAL 555 Staining Kit RAL Diagnostics  361550 Store in safe and dry place
Microcentrifuge tubes Eppendorf 33511

References

  1. Friedl, P., Wolf, K. Tumour-cell invasion and migration: diversity and escape mechanisms. Nat Rev Cancer. 3 (5), 362-374 (2003).
  2. Moncharmont, C., et al. Radiation-enhanced cell migration/invasion process: A review. Crit Rev Oncol Hematol. , (2014).
  3. Burdsal, C. A., Damsky, C. H., Pedersen, R. A. The role of E-cadherin and integrins in mesoderm differentiation and migration at the mammalian primitive streak. Development. 118 (3), 829-844 (1993).
  4. Chen, C., Zimmermann, M., Tinhofer, I., Kaufmann, A. M., Albers, A. E. Epithelial-to-mesenchymal transition and cancer stem(-like) cells in head and neck squamous cell carcinoma. Cancer Lett. 338 (1), 47-56 (2013).
  5. Nelson, A. R., Fingleton, B., Rothenberg, M. L., Matrisian, L. M. Matrix metalloproteinases: biologic activity and clinical implications. J Clin Oncol. 18 (5), 1135-1149 (2000).
  6. Smith, A., Teknos, T. N., Pan, Q. Epithelial to mesenchymal transition in head and neck squamous cell carcinoma. Oral Oncol. 49 (4), 287-292 (2013).
  7. Chen, H. -. C. Boyden chamber assay. Meth Mol Biol. 294, 15-22 (2005).
  8. Rodriguez, L. G., Wu, X., Guan, J. -. L. Wound-healing assay. Meth Mol Biol. 294, 23-29 (2005).
  9. Piaton, E., et al. Technical recommendations and best practice guidelines for May-Grünwald-Giemsa staining: literature review and insights from the quality assurance. Ann Path. 35 (4), 294-305 (2015).
  10. Moncharmont, C., et al. Targeting a cornerstone of radiation resistance: cancer stem cell. Cancer lett. 322 (2), 139-147 (2012).
  11. Moncharmont, C., et al. Carbon ion irradiation withstands cancer stem cells’ migration/invasion process in Head and Neck Squamous Cell Carcinoma (HNSCC). Oncotarget. 7 (30), 47738-47749 (2016).
  12. Gilormini, M., Wozny, A. -. S., Battiston-Montagne, P., Ardail, D., Alphonse, G., Rodriguez-Lafrasse, C. Isolation and Characterization of a Head and Neck Squamous Cell Carcinoma Subpopulation Having Stem Cell Characteristics. J Vis Exp: JoVE. (111), (2016).

Play Video

Cite This Article
Guy, J., Espenel, S., Vallard, A., Battiston-Montagne, P., Wozny, A., Ardail, D., Alphonse, G., Rancoule, C., Rodriguez-Lafrasse, C., Magne, N. Evaluation of the Cell Invasion and Migration Process: A Comparison of the Video Microscope-based Scratch Wound Assay and the Boyden Chamber Assay. J. Vis. Exp. (129), e56337, doi:10.3791/56337 (2017).

View Video