Schweine als ein Trainingsmodul für Kopf und Nacken mikrovaskuläre Wiederaufbau
Summary
Hier präsentieren wir ein Protokoll für die Verwendung von dem Schwein überlegene epigastrischen Arterie Perforatorlappen als ein Lernmodul für Kopf und Nacken mikrovaskuläre Wiederaufbau.
Abstract
Live-Models, die chirurgische Bedingungen des Menschen ähneln sind Training frei-Klappe Ernte-und Anastomose erforderlich. Tiermodelle für Schulungszwecke sind seit Jahren in vielen chirurgischen Bereichen zur Verfügung. Wir verwendeten das Weibchen (weil sie für das Verfahren einfach zu handhaben sind) Yorkshire Schweine für den Kopf und Hals Wiederaufbau durch das Ernten der Perforator tief minderwertigen epigastrischen Arterie oder die überlegene epigastrischen Arterie Perforatorlappen. Die Anastomose Website (Hals Hautdefekt oder Trachealkanüle Wand defekt) war bereit, über die Zerlegung des gemeinsamen Halsschlagader und die innere Halsschlagader, welche 3,5 × Lupe Vergrößerung für Anastomose verwendet wurde, wie wir auf Fälle beim Menschen im wirklichen Leben. Dieses Verfahren zeigt eine neue Trainingsmethode, die mit einem zuverlässigen Lernmodell und bietet eine detaillierte Anatomie in einem live-Szenario. Wir konzentrieren auf die Ischämie-Zeit Ernte, Schiff Anastomose und entwerfen die Klappe defekt Website passen. Dieses Modell verbessert das Gewebe Handling und mit dem Einsatz der richtigen Instrumente kann werden viele Male wiederholt, dass der Chirurg davon überzeugt ist, vor Beginn der Operation am Menschen.
Introduction
Wiederaufbau nach der Operation für den Kopf und Hals bösartigen Tumorerkrankungen ist ein schwieriges Verfahren, die mit erheblicher Morbidität verbunden. Mikrovaskuläre freie Klappe Rekonstruktion hat als die Standardmethode zum Wiederaufbau für mehr als 20 Jahren1,2,3gut etabliert. Gratis-Klappe Transfer spielt eine bedeutende Rolle bei der Verbesserung der Kopf und Hals Management bei Krebspatienten und in Post-traumatische Verletzungen, die dabei die Grenzen der chirurgische Ausrottung der Krankheit über die bisherigen Techniken, was zu mehr Patienten Lebensqualität und längeres Überleben Preise1,2,3. Die verschiedenen Klappen für den Wiederaufbau gehören Rotations-, veredeln und kostenfreies Klappen.
Die Rolle der freien Klappen in den Kopf und Hals Wiederaufbau erweitert. Es ist die schwierigste Klappe zu arbeiten, erfordern qualifizierte und zarte Behandlung. Klappe Scheitern ist ein schwerwiegendes Ereignis, mit erheblicher Morbidität4,5. So ist erheblicher Einarbeitungszeit erforderlich, um die Präzision notwendig für die erfolgreiche chirurgische Ergebnisse3,4,5,6,7,8zu entwickeln, 9. Die steile Lernkurve verbunden mit einer solchen Operation können Einfluss auf den Ausgang für Patienten und Behandlung Management3,4,5,6,7beeinflussen, 8,9. Die Trainingszeit und Lernkurve für neue Chirurgen, ein Ausbildungsmodell ist notwendig, die imitiert menschliche Biologie und bietet ähnliche Operationsfeld Bedingungen8.
Das Ziel dieser Studie ist es, die Sichtbarkeit der Schweine als gutes Trainingsmodul für den Kopf und Hals mikrovaskuläre Wiederaufbau ähnelt des menschlichen Fall mit verbesserten Fähigkeiten auf aktive Weise zu zeigen.
Diese Studie untersuchte die Verwendung von porcinen Modell für Training neue Kolleginnen und Kollegen in den Kopf und Hals mikrovaskuläre Wiederaufbau für frei-Klappe Transfer ermöglichen eine kostengünstige und weniger stressig für den klinischen Bereich Ausbildung mit zuverlässig ergänzen ähnliche Funktionen für gratis-Klappe Verfahren. Schweine sind für viele Studien und als Lehrmittel Modelle für verschiedene chirurgische Rekonstruktionen, z.B. Brustrekonstruktion benutzt worden; 5 Schweine haben jedoch nie für Kopf und Hals Wiederaufbau außer in unserer Studie für den trachealen Wiederaufbau durch trachealen Stenosen10verwendet wurde.
Die Idee begann nach Frederic Bodin7, die das ähnliche Flap zur Brustrekonstruktion zu beschreiben. Der größte Vorteil für die Studie über das andere Modul mikrovaskuläre Ausbildung ist die aktive livening Modul mit einem echten unmittelbaren Ergebnis des Verfahrens.
Protocol
Representative Results
Discussion
Erheblicher Morbidität und Mängel können auftreten in Kopf und Nacken Malignität Patienten während der OP Management. Mikrovaskuläre freie Gewebe Transfer ist für den Wiederaufbau in den meisten Fällen unverzichtbar geworden. Die Lebensfähigkeit der Klappe ist ein kritisches Thema, Stetigkeit, präzises handling des pedikels, taktile Empfindung, zentralnervöse Fähigkeit und ausgezeichneten operativen Flow vom Chirurgen8erfordern. Um diese Fähigkeiten zu entwickeln, braucht man umfangre…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Diese Arbeit wurde finanziert und unterstützt durch die grundlegende Wissenschaft Forschungsprogramm durch die National Research Foundation von Korea (NRF) gefördert durch das Ministerium für Wissenschaft, IKT und Zukunft planen (2015R1C1A1A01051907). Diese Arbeit wurde auch durch die grundlegende Wissenschaft Forschungsprogramm durch die National Research Foundation von Korea (NRF) finanziert durch das Ministerium für Wissenschaft, ICT & Zukunft planen (NRF-2016M3A9E9941746) unterstützt.
Materials
| Pigs XP Bio, Seoul, South Korea | |||
| Surgical Hair Removal shaver | 3M | ||
| 22 gage catheter | B.BRAUN | ||
| syring with needle size 18 | Jung Rim Medical | ||
| Intramuscular alfaxan | Careside | 10ml/VAL | |
| Intramuscularxylazine | Bayer | ||
| Intramuscular azaperone | Sigma-aldrich | 34223 | |
| Intramuscular atropine | Daewon | 0.5mg/A | |
| Intramuscular cefazolin | Yuhan | 1g | |
| intravenous Ketorolac | Hana Pharm | 30mg | |
| Swine ansthesia mask | DRE | 1392 | |
| endotracheal cuff tube 6.5 mm | SMITH medical | 100/150/065 | |
| ansthesia Machine | Dräger | PRIMUS IE | |
| 2% lidocaine topical solution | Taejoon | ||
| vet ointment | Pfizer | terramycin |
|
| eye cover patch | Innomed | S-universal010S | |
| betadine solution 1%. | Korea Pharma | ||
| gauze 4*4 | First Medical | 22*30CM 320S | |
| blade No. 23 | Paragon | 23 | |
| lahey retractor | V.Mueller | SU3960 | |
| kelly tissue scissors | SOLCO | 05-1990 | |
| blade No. 11 | Paragon | 11 | |
| surgical marking pen | Aspen Surgical | Regular #2750 | |
| allis | V.Mueller | SU4055 | |
| tie suture | Covidein | non-needle | |
| 3.5× surgical loupe | zeiss | eyemag smart | |
| double clamp without frame | V.Mueller | CH7155 | |
| microscissors | AESCULAP | FD038R | |
| Ringer's lactate | Daehan | 500ml/1bag | |
| amoxicillin–clavulanate | Ilsung | 0.6g/V | |
| Meloxicam | Samil | 7.5mg | |
| propofol | Dong Kook | 120mg/V | |
| intravenous KCl solution | Daehan | 20ml/50P | |
| mosquito curved | SOLCO | 013-0111 | |
| mosquito straight | SOLCO | 05-1050 | |
| ethilone 10-0 suture | ethicone | 10/0W1756 | |
| Vicryl 3-0. | ethicone | 3/0W9890 | |
| buprenorphine | Hanlim | 0.3mg |
References
- Chen, C. L., Zenga, J., Roland, L. T., Pipkorn, P. Complications of double free flap and free flap combined with locoregional flap in head and neck reconstruction: A systematic review. Head & Neck journal of the Science and Specialties of the Head and Neck. 40 (3), 632-646 (2018).
- Smith, R. K., Wykes, J., Martin, D. T., Niles, N. Perforator variability in the anterolateral thigh free flap: a systematic review. Surgical and Radiologic Anatomy. 39 (7), 779-789 (2017).
- Bauer, F., Koerdt, S., Hölzle, F., Mitchell, D. A., Wolff, K. D. Eight free flaps in 24 hours: a training concept for postgraduate teaching of how to raise microvascular free flaps. British Journal of Oral and Maxillofacial. 54 (1), 35-39 (2016).
- Schoeff, S., Hernandez, B., Robinson, D. J., Jameson, M. J., Shonka, D. C. Microvascular Anastomosis Simulation Using a Chicken Thigh Model: Interval Versus Massed Training. The Laryngoscope. 127 (11), 2490-2494 (2017).
- Bodin, F., Diana, M., Koutsomanis, A., Robert, E., Marescaux, J., Bruant-Rodier, C. Porcine model for free-flap breast reconstruction training. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 68 (10), 1402-1409 (2015).
- Rodriguez, J. R., Yañez, R., Cifuentes, I., Varas, J., Dagnino, B. Microsurgery Workout: A Novel Simulation Training Curriculum Based on Nonliving Models. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 138 (4), 739e-747e (2016).
- Carey, J. N., et al. Simulation of plastic surgery and microvascular procedures using perfused fresh human cadavers. Plastic and Reconstructive Surgery journal. 67 (2), e42-e48 (2014).
- Chan, W., Niranjan, N., Ramakrishnan, V. Structured assessment of microsurgery skills in the clinical setting. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 63 (8), 1329-1334 (2010).
- Matsumura, N. A newly designed training tool for microvascular anastomosis techniques: Microvascular Practice Card. Surgical Neurology Journal. 71 (5), 616-620 (2010).
- Kim, W. S., et al. Tracheal reconstruction with a free vascularized myofascial flap: preclinical investigation in a porcine model to human clinical application. Scientific Reports. 7 (1), 10022 (2017).
