Summary

Différenciation neuronale efficace à l'aide de la culture monocellulaire des cellules souches embryonnaires humaines

Published: January 18, 2020
doi:

Summary

Présenté ici est un protocole pour la génération d’une culture unicellulaire des cellules souches embryonnaires humaines et leur différenciation ultérieure en cellules progénitrices neurales. Le protocole est simple, robuste, évolutif et adapté aux applications de dépistage des médicaments et de médecine régénérative.

Abstract

La différenciation in vitro des cellules souches embryonnaires humaines (HESC) a transformé la capacité d’étudier le développement humain à la fois aux niveaux biologique et moléculaire et a fourni des cellules pour une utilisation dans des applications régénératrices. Les approches standard pour la culture hESC utilisant la culture de type colonie pour maintenir les HESC indifférenciés et le corps embryonnaire (EB) et la formation de rosette pour la différenciation en différentes couches germinales sont inefficaces et prennent du temps. Présenté ici est une méthode de culture unicellulaire en utilisant hESCs au lieu d’une culture de type colonie. Cette méthode permet le maintien des caractéristiques des HESC indifférenciés, y compris l’expression de marqueurs hESC à des niveaux comparables aux HESC de type colonie. En outre, le protocole présente une méthode efficace pour la génération de cellules progénitrices neurales (NPC) à partir de hESCs de type unicellulaire qui produit des PNJ dans un délai de 1 semaine. Ces cellules expriment fortement plusieurs gènes de marqueur de PNJ et peuvent se différencier en divers types de cellules neurales, y compris les neurones dopaminergiques et les astrocytes. Ce système de culture unicellulaire pour les HESC sera utile pour étudier les mécanismes moléculaires de ces processus, les études de certaines maladies et les écrans de découverte de médicaments.

Introduction

Les cellules souches embryonnaires humaines (HESC) ont le potentiel de se différencier en trois couches germinales primaires, qui se différencient ensuite en diverses lignées cellulaires progénitrices multipotentes. Ces lignées donnent par la suite naissance à tous les types de cellules dans le corps humain. Les systèmes de culture hESC in vitro ont transformé la capacité d’étudier le développement embryonnaire humain et ont servi d’outil précieux pour obtenir de nouvelles connaissances sur la façon dont ces processus sont réglementés aux niveaux biologique et moléculaire. De même, les études sur les cellules souches pluripotentes induites (iPSC) générées par la reprogrammation de cellules somatiques isolées de patients humains fournissent de nouvelles informations sur diverses maladies. En outre, l’ancêtre et les cellules différenciées dérivées des HESC peuvent être utiles pour la recherche impliquant la thérapie de cellules souches et le dépistage de drogue1,2,3,4.

Les hESC peuvent être induits pour se différencier en cellules progénitrices neurales (PNJ), qui sont des cellules multipotentielles avec une capacité d’auto-renouvellement étendue. Par la suite, ces cellules peuvent être différenciées en neurones, astrocytes, et oligodendrocytes5,6. Les PNJ offrent également un système cellulaire pour les études in vitro de la biologie neurodéveloppementale et de diverses maladies neurologiques. Cependant, les méthodes actuelles de culture de type colonie impliquant les HESC et leur différenciation en PNJ sont inefficaces et impliquent souvent la coculture ainsi que le corps embryonnaire (EB) et la formation de rosette5,7,8,9. Ces protocoles présentent des taux de survie plus faibles et une différenciation spontanée et prennent plus de temps.

Présenté ici est un système de culture amélioré et robuste qui est facilement évolutif et utilise la culture de type unicellulaire de haute densité de hESCs10. L’inclusion de l’inhibiteur de Roh-kinase (ROCK) a contribué à l’efficacité de survie sensiblement améliorée pendant la culture de type de cellule simple de hESC10,11,12,13,14. Dans ce système de culture, les HESC peuvent être facilement entretenus et étendus. En outre, le protocole présente une méthode efficace pour générer des PNJ à partir de la culture de type unicellulaire des HESC, qui permet la production de PNJ très purs. Inhibition des voies de signalisation BMP/TGMD/activine avec des inhibiteurs ALK induisent efficacement la différenciation des HCES de type unicellulaire en PNJ15,16, qui peuvent alors être induits à se différencier en lignées neuronales fonctionnelles, telles que les neurones dopaminergiques et les astrocytes.

En résumé, le protocole de culture de type unicellulaire utilisant les CSSH offre un modèle attrayant pour étudier la différenciation de ces cellules en différentes lignées, y compris les PNJ. Ce protocole est facilement évolutif et donc adapté pour générer des cellules pour la recherche impliquant la thérapie régénérative et le dépistage des médicaments.

Protocol

1. Préparation des plaques enduites de matrice de membrane de sous-sol hESC-qualifiées Décongeler lentement la membrane de membrane du sous-sol qualifiée par le HESC (voir Table of Materials)solution à 4 oC pendant au moins 2 à 3 h ou pendant la nuit pour éviter la formation d’un gel. Pour préparer les plaques recouvertes de matrice de membrane de sous-sol, diluez la matrice dans le DMEM/F12 froid à une concentration finale de 2%. Bien mélanger et enrober chaque puits d’une …

Representative Results

Présenté ici est un protocole amélioré pour le maintien et l’expansion de la culture de type unicellulaire des HESC et leur différenciation efficace en cellules progénitrices neurales, qui se différencie par la suite en diverses lignées neuronales en aval, y compris les neurones dopaminergiques et les astrocytes. Les images de contraste de phase représentative montrent la morphologie cellulaire à différentes étapes au cours de l’adaptation des HESC de type colonie à la culture de …

Discussion

Des méthodes évolutives et efficaces pour la différenciation des HESC en diverses lignées et la génération d’un nombre suffisant de cellules différenciées sont des critères importants pour le dépistage des médicaments et la thérapie par cellules souches. Diverses méthodes de passage unicellulaire ont été publiées, dans lesquelles les cellules sont cultivées en présence d’inhibiteur syUP Ou d’autres petites molécules pour améliorer la survie, mais les produits finaux de ces méthodes de culture sont le…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous remercions le Dr Carl D. Bortner (NIEHS) pour son aide dans l’analyse du FACS. Cette recherche a été soutenue par le Programme de recherche intra-muros de l’Institut national des sciences de la santé environnementale, les National Institutes of Health, Z01-ES-101585 à amJ.

Materials

35 mm m-dishes ibidi 81156 Cell culture dish
6-well plates Corning 3516
Accutase Innovative Cell Technologies AT104-500 Cell detachment solution
Activin A R&D system 338-AC-050
Ascorbic Acid Sigma Aldrich A4403
B27 supplement Thermo Fisher 17504044
B27 supplement (-Vit A) Thermo Fisher 12587010
BDNF Applied Biological Materials Z100065
bFGF Peprotech 100-18C
Centrifuge DAMON/ICE 428-6759
CO2 incubator Thermo Fisher 4110
Corning hESC-qulified Matrix (Magrigel) Corning 354277 Basement membrane matrix (used for most of the protocol here)
Cryostor CS 10 Stemcell Technologies 7930 Cell freezing solution
Dispase Stemcell Technologies 7923
DMEM Thermo Fisher 10569-010
DMEM/F12 Thermo Fisher 10565-018
Dorsomorphin Tocris 3093
EGF Peprotech AF-100-16A
Fetal Bovine Serum Fisher Scientific SH3007003HI
FGF8 Applied Biological Materials Z101705
GDNF Applied Biological Materials Z101057
Geltrex matrix Thermo Fisher A1569601 Basement membrane matrix
GlutaMax Thermo Fisher 35050061 Glutamine supplement, 100X
H9 (WA09) human embryonic stem cell line WiCell WA09
Heregulin b-1 Peprotech 100-3
IGF Peprotech 100-11
Knockout DMEM Thermo Fisher 10829018
Knockout Serum Replacement Thermo Fisher 10828028
Laminin Sigma Aldrich L2020
mTeSR1 Stemcell Technologies 85850 hESC culture medium
N2 supplement Thermo Fisher 17502001
NEAA Thermo Fisher 11140050
Neurobasal Thermo Fisher 21103049
Poly-L-ornithine Sigma Aldrich P3655
ROCK inhibitor Tocris 1254
SB431542 Tocris 1614
SHH Applied Biological Materials Z200617
Stemdiff Neural Progenitor medium Stemcell Technologies 5833 NPC expansion medium

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Cite This Article
Jeon, K., Park, K., Jetten, A. M. Efficient Neural Differentiation using Single-Cell Culture of Human Embryonic Stem Cells. J. Vis. Exp. (155), e60571, doi:10.3791/60571 (2020).

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