Summary

Voorbereiding van celextracten door Cryogrinding in een geautomatiseerde vriesmolen

Published: January 29, 2021
doi:

Summary

We beschrijven een betrouwbare methode voor de bereiding van hele celextracten uit gist of andere cellen met behulp van een cryogene vriesmolen die afbraak en denaturatie van eiwitten minimaliseert. De celextracten zijn geschikt voor zuivering van functionele eiwitcomplexen, proteomische analyses, co-immunoprecipitatiestudies en detectie van labiele eiwitmodificaties.

Abstract

Het gemak van genetische manipulatie en de sterke evolutionaire instandhouding van eukaryotische cellulaire machines in de ontluikende gist Saccharomyces cerevisiae heeft het een vooraanstaande genetische model organisme. Aangezien een efficiënte eiwitisolatie echter afhankelijk is van een optimale verstoring van cellen, wordt het gebruik van gist voor biochemische analyse van cellulaire eiwitten belemmerd door de celwand, die duur is om enzymatisch te verteren (met behulp van lyticase of zymolyase), en moeilijk mechanisch te verstoren (met behulp van een traditionele kraalklopper, een Franse pers of een koffiemolen) zonder verwarming van monsters te veroorzaken, wat op zijn beurt eiwitdenaturatie en afbraak veroorzaakt. Hoewel het handmatig slijpen van gistcellen onder vloeibare stikstof (LN2) met behulp van een mortel en stamper oververhitting van monsters voorkomt, is het arbeidsintensief en onderhevig aan variabiliteit in cellyse tussen operatoren. Al vele jaren bereiden we met succes gistextracten van hoge kwaliteit met cryogrinding van cellen in een geautomatiseerde vriesfabriek. De temperatuur van -196 °C bereikt met het gebruik van LN2 beschermt het biologische materiaal tegen afbraak door proteasen en nucleases, waardoor het ophalen van intacte eiwitten, nucleïnezuren en andere macromoleculen mogelijk is. Hier beschrijven we deze techniek in detail voor ontluikende gistcellen waarbij eerst een suspensie van cellen in een lysebuffer wordt bevroren inbeslagneming in LN2 om bevroren druppels cellen te genereren die bekend staan als “popcorn”. Deze popcorn wordt vervolgens verpulverd onder LN2 in een vriesmolen om een bevroren “poeder” extract dat langzaam ontdooid en verduidelijkt door centrifugatie te verwijderen onoplosbare puin te genereren. De resulterende extracten zijn klaar voor downstream toepassingen, zoals eiwit- of nucleïnezuurzuivering, proteomische analyses of co-immunoprecipitatiestudies. Deze techniek is op grote schaal toepasbaar voor celextractberedeiding uit verschillende micro-organismen, planten- en dierlijk weefsels, mariene specimens, waaronder koralen, en het isoleren van DNA/RNA uit forensische en permafrostfosiele specimens.

Introduction

Gist is een populair model organisme voor eiwitstudies, want het is een eenvoudig eukaryotisch organisme met een overvloed aan genetische en biochemische hulpmiddelen beschikbaar voor onderzoekers1. Door hun stevige celwand is een uitdaging waar onderzoekers voor staan om de cellen efficiënt te lyseren zonder de cellulaire inhoud te beschadigen. Er zijn verschillende methoden beschikbaar voor het verkrijgen van eiwitextracten door verstoring van gistcellen, waaronder enzymatische lyse (zymolyase)2,3, chemisch lysis4, fysisch lyse door vries-dooi5, drukgebaseerd (Franse pers)6,7, mechanisch (glazen kralen, koffiemolen)8,9, sonicatiegebaseerde10 en cryogene2,11. De efficiëntie van cellyse en de eiwitopbrengst kan sterk variëren afhankelijk van de gebruikte techniek, wat het eindresultaat of de geschiktheid voor de gewenste downstream-toepassing voor het lysaat beïnvloedt. Bij het bestuderen van eiwitten die instabiel zijn, vluchtige posttranslational wijzigingen hebben, of temperatuurgevoelig zijn, is het bijzonder belangrijk om een methode te gebruiken die monsterverlies of afbraak tijdens de voorbereiding minimaliseert.

Extractpreparaattechniek Details Voordelen Nadelen Downstream-analyse Verwijzing
Franse pers: Hogedrukhomogenisator (aka Microfluidizer) met enzymatische voorbehandeling met Zymolyase Zymolyase-20T, een Microfluidizer hogedrukhomogenisator. De disruptor bestaat uit een luchtaangedreven hogedrukpomp (verhouding 1:250; vereiste luchtdruk 0,6-l MPa) en een speciale storingskamer met een extra terugdrukeenheid. Voor de verwerking is een minimale steekproefgrootte van 20 mL vereist. De uiteindelijke totale verstoring die werd verkregen met behulp van het gecombineerde protocol naderde 100 % met 4 passen bij een druk van 95 MPa, in vergelijking met slechts 32 % verstoring met 4 passen op 95 MPa met alleen homogenisatie zonder de Zymolyase. Niet geschikt voor kleinschalige toepassingen. De enzymen kunnen duur worden voor grootschalige preparaten. Eiwitzuivering 6
Kraalklopper: Zymolyase behandelde cellen met glazen kralen in een fastprep-instrument Ongeveer een gelijk volume van koude, droge, zuur gewassen 0,5 mm glazen kralen wordt toegevoegd aan een bepaald volume van de cel pellet in lyse buffer en de cellen worden verstoord door krachtige handmatige agitatie. Het is vooral handig bij het maken van extracten uit veel verschillende kleine gistculturen voor testdoeleinden in plaats van voor eiwitzuivering. Tijdens de glaskraalprocedure worden eiwitten hard behandeld, waardoor uitgebreid schuimen leidt tot eiwitdenaturatie. De hoeveelheid celbreuk varieert, terwijl proteolyse en modificatie van de eiwitten het gevolg kunnen zijn van het verwarmen van het extract boven de 4°C tijdens de mechanische breuk. Meestal DNA & RNA-analyses, maar ook eiwitanalyse door het denatureren van gelelektrofe, met of zonder westerse blotting. 8
Zymolyase behandeling gevolgd door lyse met behulp van een combinatie van osmotische shock en Dounce homogenisatie Na enzymatische vertering van celwanden worden spheroplasten lysed met 15 tot 20 slagen van een nauwsluitende stamper (klaring 1 tot 3 μm) in een Dounce homogenisator. Voordelig om protease-deficiënte stammen zoals BJ926 of EJ101 te gebruiken. Dit is de zachtste manier om gistcellen te breken en daarom is het het meest geschikt voor het voorbereiden van extracten die complexe enzymatische functies kunnen uitvoeren (bijvoorbeeld vertaling, transcriptie, DNA-replicatie) en waarin de integriteit van macromoleculaire structuren (bijvoorbeeld ribosomen, splicesomen) moet worden gehandhaafd. Het is ook nuttig voor het isoleren van intacte kernen die kunnen worden gebruikt voor chromatinestudies (Bloom and Carbon, 1982) of voor nucleaire eiwitextracten (Lue en Kornberg, 1987). De belangrijkste nadelen van de spheroplast lyse procedure zijn dat het relatief vervelend en duur, vooral voor grootschalige preparaten (>10 liter), en de lange incubatieperioden kan leiden tot proteolyse of eiwit modificatie.  Voor chromatinepreparaten lijken ze van verschillende of lagere kwaliteit te zijn dan die welke door de differentiële centrifugatie worden geproduceerd (gebaseerd op nucleosoomladderintegriteit). Het isoleren van intacte kernen voor chromatinestudies, extracten die complexe enzymatische functies kunnen uitvoeren, extracten die de integriteit van
macromoleculaire structuren, nucleaire eiwitextracten.
2
Cel verstoring van flash bevroren cellen door slijpen in vloeibare stikstof met behulp van een mortier / stamper of een blender Cellen worden onmiddellijk ingevroren in vloeibare stikstof en vervolgens lysed door handmatig slijpen in een mortel met behulp van een stamper, of met behulp van een Waring blender in de aanwezigheid van vloeibare stikstof. Het protocol is snel en eenvoudig. Het is geschikt voor verschillende hoeveelheden gistcellen, waaronder zeer grote culturen. Het belangrijkste voordeel is dat cellen onmiddellijk uit de actief groeiende toestand in vloeibare stikstof (−196°C) worden genomen, afnemende degradatieve enzymactiviteiten zoals proteasen en nucleases, evenals activiteiten die eiwitten wijzigen (bijvoorbeeld fosforsataden en kinases). Het is bijzonder geschikt voor het maken van hele cel extracten uit een enkele gistcultuur voor grootschalige eiwitzuivering. Een beetje rommelig en potentieel gevaarlijk voor de onzorgvuldige onderzoeker. Kleine monsters (d.w.z. 10- tot 100-ml gistculturen) worden niet gemakkelijk verwerkt omdat er niet genoeg massa bevroren celklontjes zijn om effectief in de blender te breken. Het is tijdrovend om individuele monsters te verwerken en de apparatuur tussen het gebruik door schoon te maken. Hele cel extracten uit een enkele gistcultuur voor grootschalige eiwitzuivering. 2
Autolyse, Parelmolen pH 5,0, 50 °C, 24 uur, 200 tpm / Ø 0,5 mm, 5 × 3 min/3 min Snelle en efficiënte lysis, vooral voor kleinschalige extractvoorbereiding Warmteopwekking leidt tot denaturatie en afbraak van macromoleculen. Kraal slaan apparatuur vereist. Kleinschalige analyses. 10
Autolyse, Sonicatie pH 5.0, 50 °C, 24 h, 200 tpm, 4 × 5 min/2 min, pulser 80%, vermogen 80% Sonicatie apparatuur is meestal beschikbaar in de meeste instellingen. Warmteopwekking leidt tot denaturatie en afbraak van macromoleculen. Sonicatie-apparatuur vereist. Langzaam lysis kan meer dan 24 uur duren. Gistcelwandpreparaten.
Kokend en vriesdooiproces Geen gespecialiseerde apparatuur nodig, andere dan een standaard vriezer en een verwarmingsblok of warmwaterbad. Efficiënt, reproduceerbaar, eenvoudig en goedkoop. Warmteopwekking leidt tot denaturatie en afbraak van macromoleculen. DNA-analyses door PCR. 5

Tabel 1: Vergelijking van de beschikbare methoden voor de bereiding van gistextracten.

Cryogrinding (ook bekend als cryogene slijpen / cryogene frezen) wordt vaak gebruikt om nucleïnezuren, eiwitten of chemicaliën te halen uit temperatuurgevoelige monsters op een betrouwbare manier voor kwantitatieve of kwalitatieve analyses. Het is met succes gebruikt voor meerdere toepassingen op verschillende gebieden, waaronder biotechnologie, toxicologie, forensische wetenschap12,13, milieuwetenschappen, plantenbiologie14 en voedingswetenschap. Isolatie van intacte biologische macromoleculen is meestal van cruciaal belang voor de temperatuur. Extreem lage temperaturen zorgen ervoor dat de proteases en nucleases inactief blijven, wat resulteert in een betrouwbare isolatie van intacte eiwitten, nucleïnezuren en andere macromoleculen voor latere analyses. Een vriesfabriek houdt meestal een monstertemperatuur van -196 °C (het kookpunt van LN2),waardoor DNA/RNA of eiwitdenaturatie en -afbraak tot een minimalisering en afbraak worden geminimaliseerd.

De vriesmolen maakt gebruik van een elektromagnetische slijpkamer die snel een stevige metalen staaf of cilinder heen en weer beweegt in een flacon met het monster dat moet worden verpulverd tussen roestvrijstalen eindpluggen. Het instrument creëert en keert snel een magnetisch veld in de slijpkamer. Terwijl het magnetisch veld heen en weer verschuift, verplettert de magneet het monster tegen de pluggen en bereikt zo het ‘cryogrinding’ en de verpulvering van de popcorn. De vriesmolen vervangt de mortel en stamper en maakt de sequentiële verwerking van meerdere monsters (of tot 4 kleinere monsters tegelijk) met een hoge reproduceerbaarheid mogelijk en vermijdt de variabiliteit van gebruiker tot gebruiker in verband met handmatig slijpen. Zodra de monsters zijn verwerkt, kunnen de celextracten worden gebruikt voor een verscheidenheid aan downstream-toepassingen.

Protocol

1. Bereiding van gist popcorn Kweek gistcellen in 0,5 L YPD-media tot een dichtheid van 1 x 107 cellen/mL. Tel cellen met behulp van een Coulter Counter of een andere manier. Centrifugecellen gedurende 10 minuten bij 2.400 g en 4 °C. Was elk monster één keer met 500 mL ijskoud gedeïmiseerd 18 mega Ohm Milli-Q water. Resuspend pellets in 15 mL ijskoude Lyse Buffer [20 mM HEPES-KOH pH 7.5, 110 mM KCl, 0,1% Tween, 10% glycerol, met vers toegevoegde reduceermiddel 10 mM …

Representative Results

We vergeleken twee verschillende methoden voor gistcellyse, namelijk glaskraalfrezen bij 4 °C en een geautomatiseerde cryogrindingmethode bij -196 °C, om de relatieve hersteleiwitten in de celextracten te beoordelen die met beide methoden zijn bereid. Voor deze studie hebben we ervoor gekozen om een ontluikende giststam YAG 1177 te gebruiken (MAT a lys2-810 leu2-3,-112 ura3-52 his3-Δ200 trp1-1[am] ubi1-Δ1::TRP1 ubi2-Δ2::ura3 ura3 ura3ubi3-Δub-2 ubi4-Δ2::LEU2 [pUB39] [pUB221])<sup c…

Discussion

Een beperking van het bestuderen van inheemse eiwitten uit gist is de inefficiënte lyse van gistcellen als gevolg van hun taaie celwand. Hoewel verschillende methoden zijn ontwikkeld, de meest consistente en efficiënte methode in onze handen is de cryogrinding van gistcellen flash bevroren als popcorn. Deze methode maakt de betrouwbare voorbereiding van hoogwaardige hele cel extracten uit ontluikende gist in vergelijking met andere lyse methoden. De representatieve resultaten toonden aan dat cryogrinding superieur is a…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Onderzoek in het Gunjan lab wordt ondersteund door financiering van de National Institutes of Health, National Science Foundation en het Florida Department of Health. Wij danken student John Parker voor technische bijstand.

Materials

50 mL polycarbonate tubes with screw caps Beckman 357002 Centrifuge tubes
BD Bacto Peptone BD Biosiences 211677 Yeast YPD media component
BD Bacto Yeast Extract BD Biosiences 212750 Yeast YPD media component
Beckman Avanti centrifuge Beckman B38624 High speed centrifuge
Beckman JLA-9.1000 Beckman 366754 Rotor
D-(+)-Dextrose Anhydrous MP Biomedicals 901521 Yeast YPD media component
Eppendorf A-4-44 Eppendorf 22637461 Swinging bucket rotor
Eppendorf refrigerated centrifuge 5810 R Eppendorf 22625101 Refrigerated centrifuge
Glycerol SIGMA-ALDRICH G5150-1GA Volume excluder and cryoprotectant
HEPES FisherBiotech BP310-100 Buffer
HIS6 antibody Novagen 70796 Antibody for HIS tag
KCl SIGMA-ALDRICH P9541-1KG Salt for maintaining ionic strength
MG-132 CALBIOCHEM 474790 Proteasome Inhibitor
Phosphatase inhibitor cocktail ThermoFisher Scientific A32957 Phosphatase inhibitor cocktail
Ponceau S SIGMA P7170-1L Protein Stain
Protease inhibitor cocktail ThermoFisher Scientific A32963 Protease inhibitor cocktail
Rotor JLA 25.500 Beckman JLA 25.500 Rotor
Sodium Butyrate EM Science BX2165-1 Histone Deacetylase Inhibitor
Sodium Fluoride Sigma-Aldrich S6521 Phosphatase Inhibitor
Sodium Vanadate MP Biomedicals 159664 Phosphatase Inhibitor
Sodium β-glycerophosphate Alfa Aesar 13408-09-8 Phosphatase Inhibitor
Spex Certiprep 6850 freezer mill SPEX Sample Prep 6850 Freezer Mill
TALON Metal Affinity Resin BD Biosiences 635502 For pulling down HIS tagged proteins
Tween 20 VWR International VW1521-07 Non-ionic detergent
β-Mercaptoethanol AMRESCO M131-250ML Reducing agent

References

  1. Botstein, D., Chervitz, S. A., Cherry, J. M. Yeast as a model organism. Science. 277 (5330), 1259-1260 (1997).
  2. Dunn, B., Wobbe, C. R. Preparation of protein extracts from yeast. Current Protocols in Molecular Biology. , (2001).
  3. Holm, C., Meeks-Wagner, D. W., Fangman, W. L., Botstein, D. A rapid, efficient method for isolating DNA from yeast. Gene. 42 (2), 169-173 (1986).
  4. Nandakumar, M. P., Marten, M. R. Comparison of lysis methods and preparation protocols for one- and two-dimensional electrophoresis of Aspergillus oryzae intracellular proteins. Electrophoresis. 23 (14), 2216-2222 (2002).
  5. Silva, G. A. D., Bernardi, T. L., Schaker, P. D. C., Menegotto, M., Valente, P. Rapid yeast DNA extraction by boiling and freeze-thawing without using chemical reagents and DNA purification. Brazilian Archives of Biology and Technology. 55, 319-327 (2012).
  6. Baldwin, C., Robinson, C. W. Disruption of Saccharomyces cerevisiae using enzymatic lysis combined with high-pressure homogenization. Biotechnology Techniques. 4 (5), 329-334 (1990).
  7. Rigaut, G., et al. A generic protein purification method for protein complex characterization and proteome exploration. Nature Biotechnology. 17 (10), 1030-1032 (1999).
  8. Hudspeth, M. E., Shumard, D. S., Tatti, K. M., Grossman, L. I. Rapid purification of yeast mitochondrial DNA in high yield. Biochimica et Biophysica Acta. 610 (2), 221-228 (1980).
  9. Szymanski, E. P., Kerscher, O. Budding yeast protein extraction and purification for the study of function, interactions, and post-translational modifications. Journal of Visualized Experiments. (80), e50921 (2013).
  10. Bzducha-Wróbel, A., et al. Evaluation of the efficiency of different disruption methods on yeast cell wall preparation for β-glucan isolation. Molecules. 19 (12), 20941-20961 (2014).
  11. Umen, J. G., Guthrie, C. A novel role for a U5 snRNP protein in 3′ splice site selection. Genes & Development. 9 (7), 855-868 (1995).
  12. Smith, B. C., Fisher, D. L., Weedn, V. W., Warnock, G. R., Holland, M. M. A systematic approach to the sampling of dental DNA. Journal of Forensic Sciences. 38 (5), 1194-1209 (1993).
  13. Sweet, D., Hildebrand, D. Recovery of DNA from human teeth by cryogenic grinding. Journal of Forensic Sciences. 43 (6), 1199-1202 (1998).
  14. Lorenz, W. W., Yu, Y. S., Dean, J. F. An improved method of RNA isolation from loblolly pine (P. taeda L.) and other conifer species. Journal of Visualized Experiments. (36), e1751 (2010).
  15. Singh, M. R., Roy, S., Bellare, J. R. Influence of Cryogenic Grinding on Release of Protein and DNA from Saccharomyces cerevisiae. International Journal of Food Engineering. 5 (1), (2009).
  16. Singh, R. K., Kabbaj, M. H., Paik, J., Gunjan, A. Histone levels are regulated by phosphorylation and ubiquitylation-dependent proteolysis. Nature Cell Biology. 11 (8), 925-933 (2009).
  17. Liang, D., Burkhart, S. L., Singh, R. K., Kabbaj, M. H., Gunjan, A. Histone dosage regulates DNA damage sensitivity in a checkpoint-independent manner by the homologous recombination pathway. Nucleic Acids Research. 40 (19), 9604-9620 (2012).
  18. Singh, R. K., Gonzalez, M., Kabbaj, M. H., Gunjan, A. Novel E3 ubiquitin ligases that regulate histone protein levels in the budding yeast Saccharomyces cerevisiae. PLoS One. 7 (5), 36295 (2012).
  19. Gunjan, A., Verreault, A. A Rad53 kinase-dependent surveillance mechanism that regulates histone protein levels in S. cerevisiae. Cell. 115 (5), 537-549 (2003).
  20. Gill, P., et al. Identification of the remains of the Romanov family by DNA analysis. Nature Genetics. 6 (2), 130-135 (1994).
  21. Alain, K., et al. DNA extractions from deep subseafloor sediments: novel cryogenic-mill-based procedure and comparison to existing protocols. Journal of Microbiological Methods. 87 (3), 355-362 (2011).
  22. Mohammad, F., Buskirk, A. Protocol for Ribosome Profiling in Bacteria. Bio-Protocol. 9 (24), 3468 (2019).
  23. Liew, Y. J., et al. Identification of microRNAs in the coral Stylophora pistillata. PLoS One. 9 (3), 91101 (2014).
  24. Lopez de Heredia, M., Jansen, R. P. RNA integrity as a quality indicator during the first steps of RNP purifications: a comparison of yeast lysis methods. BMC Biochem. 5 (14), (2004).
  25. Grant, L. J., et al. Purified plant cell walls with adsorbed polyphenols alter porcine faecal bacterial communities during in vitro fermentation. Food & Function. 11 (1), 834-845 (2020).
  26. Lolo, M., et al. Cryogenic grinding pre-treatment improves extraction efficiency of fluoroquinolones for HPLC-MS/MS determination in animal tissue. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 387 (5), 1933-1937 (2007).
  27. Santos, D., et al. Determination of Cd and Pb in food slurries by GFAAS using cryogenic grinding for sample preparation. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 373 (3), 183-189 (2002).
  28. da Silva, E. G. P., et al. Fast method for the determination of copper, manganese and iron in seafood samples. Journal of Food Composition and Analysis. 21 (3), 259-263 (2008).
  29. Kamogawa, M. Y., Nogueira, A. R. A., Costa, L. M., Garcia, E. E., Nobrega, J. A. A new strategy for preparation of hair slurries using cryogenic grinding and water-soluble tertiary-amines medium. Spectrochimica Acta Part B-Atomic Spectroscopy. 56 (10), 1973-1980 (2001).
  30. Sillen, A., Hall, G., Richardson, S., Armstrong, R. Sr-87/Sr-86 ratios in modern and fossil food-webs of the Sterkfontein Valley: Implications for early hominid habitat preference. Geochimica Et Cosmochimica Acta. 62 (14), 2463-2473 (1998).
  31. Nielsen-Marsh, C. M., et al. Sequence preservation of osteocalcin protein and mitochondrial DNA in bison bones older than 55 ka. Geology. 30 (12), 1099-1102 (2002).

Play Video

Cite This Article
Phillips, E. O. N., Giovinazzi, S., Menz, S. L., Son, Y., Gunjan, A. Preparation of Cell Extracts by Cryogrinding in an Automated Freezer Mill. J. Vis. Exp. (167), e61164, doi:10.3791/61164 (2021).

View Video