اقتران التقاط الكربون من محطة توليد الكهرباء مع أحواض السباق المفتوحة شبه الآلية لزراعة الطحالب الدقيقة
Summary
تم وصف بروتوكول لاستخدام ثاني أكسيد الكربون في غاز مداخن محطة توليد الطاقة بالغاز الطبيعي لزراعة الطحالب الدقيقة في أحواض السباق المفتوحة. يتم التحكم في حقن غاز المداخن باستخدام مستشعر الأس الهيدروجيني ، ويتم مراقبة نمو الطحالب الدقيقة من خلال قياسات الكثافة البصرية في الوقت الفعلي.
Abstract
في الولايات المتحدة ، يأتي 35٪ من إجمالي انبعاثات ثاني أكسيد الكربون (CO2) من صناعة الطاقة الكهربائية ، والتي يمثل 30٪ منها توليد الكهرباء بالغاز الطبيعي. يمكن للطحالب الدقيقة إصلاح ثاني أكسيد الكربون2 10 إلى 15 مرة أسرع من النباتات وتحويل الكتلة الحيوية للطحالب إلى منتجات ذات أهمية ، مثل الوقود الحيوي. وبالتالي ، تقدم هذه الدراسة بروتوكولا يوضح أوجه التآزر المحتملة لزراعة الطحالب الدقيقة مع محطة لتوليد الطاقة بالغاز الطبيعي تقع في جنوب غرب الولايات المتحدة في مناخ حار شبه جاف. وتستخدم أحدث التكنولوجيات لتعزيز احتجاز الكربون واستخدامه عن طريق أنواع الطحالب الخضراء شلوريلا سوروكينيانا، والتي يمكن معالجتها بشكل أكبر إلى وقود حيوي. نحن نصف بروتوكولا يتضمن بركة سباق مفتوحة شبه آلية ونناقش نتائج أدائها عندما تم اختبارها في محطة توكسون للطاقة الكهربائية ، في توكسون ، أريزونا. تم استخدام غاز المداخن كمصدر رئيسي للكربون للتحكم في درجة الحموضة ، وتم زراعة شلوريلا سوروكينيانا . تم استخدام وسط محسن لزراعة الطحالب. وجرى رصد كمية ثاني أكسيد الكربون2 المضافة إلى النظام كدالة للوقت عن كثب. بالإضافة إلى ذلك ، تم رصد العوامل الفيزيائية والكيميائية الأخرى التي تؤثر على معدل نمو الطحالب ، وإنتاجية الكتلة الحيوية ، وتثبيت الكربون ، بما في ذلك الكثافة البصرية ، والأكسجين المذاب (DO) ، والموصلية الكهربائية (EC) ، ودرجات حرارة الهواء والبركة. تشير النتائج إلى أنه يمكن تحقيق محصول من الطحالب الدقيقة يصل إلى 0.385 جم / لتر من الوزن الجاف الخالي من الرماد ، مع محتوى دهني بنسبة 24٪. ويمكن أن توفر الاستفادة من فرص التآزر بين الجهات المسببة لانبعاثات ثاني أكسيد الكربون2 ومزارعي الطحالب الموارد اللازمة لزيادة احتجاز الكربون مع دعم الإنتاج المستدام للوقود الحيوي للطحالب والمنتجات الحيوية.
Introduction
الاحترار العالمي هو واحد من أهم القضايا البيئية التي يواجهها العالم اليوم1. تشير الدراسات إلى أن السبب الرئيسي هو الزيادة في انبعاثات غازات الدفيئة (GHG) ، وخاصة ثاني أكسيد الكربون 2 ، في الغلاف الجوي بسبب الأنشطة البشرية2،3،4،5،6،7. في الولايات المتحدة ، تنشأ أكبر كثافة لانبعاثات ثاني أكسيد الكربون2 بشكل رئيسي من احتراق الوقود الأحفوري في قطاع الطاقة ، وتحديدا محطات توليد الطاقة الكهربائية3،7،8،9. وهكذا ، برزت تقنيات احتجاز الكربون واستخدامه (CCU) كواحدة من الاستراتيجيات الرئيسية للحد من انبعاثات غازات الدفيئة2،7،10. وتشمل هذه الأنظمة البيولوجية التي تستخدم أشعة الشمس لتحويل ثاني أكسيد الكربون2 والماء عن طريق التمثيل الضوئي ، في وجود العناصر الغذائية ، إلى كتلة حيوية. تم اقتراح استخدام الطحالب الدقيقة بسبب معدل النمو السريع ، والقدرة العالية على تثبيت ثاني أكسيد الكربون2 ، والقدرة الإنتاجية العالية. بالإضافة إلى ذلك ، تتمتع الطحالب الدقيقة بإمكانات طاقة حيوية واسعة لأن الكتلة الحيوية يمكن تحويلها إلى منتجات ذات أهمية ، مثل الوقود الحيوي الذي يمكن أن يحل محل الوقود الأحفوري7،9،10،11،12.
يمكن أن تنمو الطحالب الدقيقة وتحقق التحويل البيولوجي في مجموعة متنوعة من أنظمة الزراعة أو المفاعلات ، بما في ذلك أحواض المجاري المفتوحة والمفاعلات الحيوية الضوئية المغلقة13،14،15،16،17،18،19. درس الباحثون المزايا والقيود التي تحدد نجاح العملية الحيوية في كل من أنظمة الزراعة ، في ظل ظروف داخلية أو خارجية 5,6,16,20,21,22,23,24,25 . أحواض المجاري المفتوحة هي أنظمة الزراعة الأكثر شيوعا لالتقاط الكربون واستخدامه في الحالات التي يمكن فيها توزيع غاز المداخن مباشرة من المكدس. هذا النوع من أنظمة الزراعة غير مكلف نسبيا ، ويسهل توسيع نطاقه ، وله تكاليف طاقة منخفضة ، ولديه متطلبات طاقة منخفضة للخلط. بالإضافة إلى ذلك ، يمكن بسهولة وضع هذه الأنظمة في موقع مشترك مع محطة توليد الطاقة لجعل عملية CCU أكثر كفاءة. ومع ذلك ، هناك بعض العيوب التي يجب مراعاتها ، مثل الحد من نقل كتلة الغاز / السائل CO2. على الرغم من وجود قيود ، فقد تم اقتراح أحواض السباق المفتوحة باعتبارها النظام الأنسب لإنتاج الوقود الحيوي للطحالب الدقيقة في الهواء الطلق5،9،11،16،20.
في هذه المقالة ، نفصل طريقة لزراعة الطحالب الدقيقة في أحواض السباق المفتوحة التي تجمع بين التقاط الكربون من غاز المداخن في محطة توليد الطاقة بالغاز الطبيعي. تتكون الطريقة من نظام شبه آلي يتحكم في حقن غاز المداخن بناء على درجة الحموضة في الثقافة. يراقب النظام ويسجل حالة زراعة شلوريلا سوروكينيانا في الوقت الفعلي باستخدام الكثافة البصرية والأكسجين المذاب (DO) والموصلية الكهربائية (EC) وأجهزة استشعار درجة حرارة الهواء والبركة. يتم جمع بيانات الكتلة الحيوية للطحالب وحقن غاز المداخن بواسطة مسجل بيانات كل 10 دقائق في منشأة توكسون للطاقة الكهربائية. يتم إجراء صيانة سلالة الطحالب ، وتوسيع نطاقها ، وقياسات مراقبة الجودة ، وتوصيف الكتلة الحيوية (على سبيل المثال ، العلاقة بين الكثافة البصرية ، g / L ، ومحتوى الدهون) في بيئة مختبرية في جامعة أريزونا. حدد بروتوكول سابق طريقة لتحسين إعدادات غاز المداخن لتعزيز نمو الطحالب الدقيقة في المفاعلات الحيوية الضوئية عبر محاكاة الكمبيوتر26. البروتوكول المعروض هنا فريد من نوعه من حيث أنه يستخدم برك الممرات المفتوحة وهو مصمم ليتم تنفيذه في الموقع في محطة لتوليد الطاقة بالغاز الطبيعي من أجل الاستفادة المباشرة من غاز المداخن المنتج. بالإضافة إلى ذلك ، تعد قياسات الكثافة البصرية في الوقت الفعلي جزءا من البروتوكول. تم تحسين النظام كما هو موضح لمناخ شبه جاف حار (Köppen BSh) ، والذي يظهر هطول أمطار منخفض ، وتقلبا كبيرا في هطول الأمطار من سنة إلى أخرى ، ورطوبة نسبية منخفضة ، ومعدلات تبخر عالية ، وسماء صافية ، وإشعاع شمسي مكثف27.
Protocol
Representative Results
Discussion
في هذه الدراسة ، أثبتنا أن الاقتران التآزري بين احتجاز الكربون في غاز المداخن وزراعة الطحالب الدقيقة أمر ممكن في مناخ حار شبه جاف. يدمج البروتوكول التجريبي لنظام أحواض السباق شبه الآلية أحدث التقنيات لمراقبة المعلمات ذات الصلة في الوقت الفعلي والتي ترتبط بنمو الطحالب عند استخدام غاز الم?…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
تم دعم هذا العمل من خلال المشروع الإقليمي لاختبار المواد الأولية للطحالب ، وزارة الطاقة الأمريكية DE-EE0006269. كما نشكر إستيبان خيمينيز وجيسيكا بيبلز وفرانسيسكو أسيدو وخوسيه سيسنيروس وفريق RAFT ومارك مانسفيلد وموظفي محطة توليد الطاقة UA وموظفي محطة توليد الطاقة TEP على كل مساعدتهم.
Materials
| Adjustable speed motor (paddle wheel system) | Leeson | 174307 | Lesson 174307.00, type: SCR Voltage; Amps:10 |
| Aluminum weight boats | Fisher Scientific | 08-732-102 | Fisherbrand Aluminum Weighing Dishes |
| Ammonium Iron (III) (NH₄)₅[Fe(C₆H₄O₇)₂] | Fisher Scientific | 1185 – 57 – 5 | Medium preparation. Ammonium iron(III) citrate |
| Ammonium Phosphate | Sigma-Aldrich | 7722-76-1 | This chemical is used for the optimized medium |
| Ampicillin sodium salt | Sigma Aldrich | A9518-5G | This chemical is used for avoiding algae contamination |
| Autoclave | Amerex Instrument Inc | Hirayama HA300MII | |
| Bacto agar | Fisher Scientific | BP1423500 | Fisher BioReagents Granulated Agar |
| Bleach | Clorox | Germicidal Bleach, concentrated clorox | |
| Boric Acid (H3BO3) | Fisher Scientific | 10043-35-3 | Trace Elelements: Boric acid |
| Calcium chloride dihydrate (CaCl2*2H2O) | Sigma-Aldrich | 10035-04-8 | Medium preparation. Calcium chloride dihydrate |
| Carboys (20 L) | Nalgene – Thermo Fisher Scientific | 2250-0050PK | Polypropylene Carboy w/Handles |
| Centrifuge | Beckman Coulter, Inc | J2-21 | |
| Chloroform | Sigma-Aldrich | 67-66-3 | This chemical is used for lipid extraction |
| Citraplex 20% Iron | Loveland Products | SDS No. 1000595582 -17-LPI | https://www.fbn.com/direct/product/Citraplex-20-Iron#product_info |
| Cobalt (II) nitrate hexahydrate (Co(NO3)2*6H2O) | Sigma-Aldrich | 10026-22-9 | Trace Elements: Cobalt (II) nitrate hexahydrate |
| Compressor | Makita | MAC700 | This equipment is used for the injection CO2 system |
| Control Valve | Sierra Instruments | SmartTrak 100 | This item needs to be customized for your application. In our case, it was used a 5% CO2 and 95% air mixture. |
| Copper (II) Sulfate Pentahydrate (CuSO4*5H2O) | Sigma-Aldrich | 7758-99-8 | Trace Elements: Copper (II) Sulfate Pentahydrate |
| Data Logger: Campbell unit CR3000 | Scientific Campbell | CR3000 | This equipment is used for controlling all the system, motoring and recording data |
| Dissolvde Oxygen Solution | Campbell Scientific | 14055 | Dissolved oxygen electrolyte solution DO6002 – Lot No. 211085 |
| Dissolved Oxygen probe | Sensorex | | DO6400/T Dissolved Oxygen Sensor with Digital Communication |
| Electroconductivity calibration solution | Ricca Chemical Company | 2245 – 32 ( R2245000-1A ) | Conductivity Standard, 5000 uS/cm at 25C (2620 ppm TDS as NaCl) |
| Electroconductivity probe sensor | Hanna Instruments | HI3003/D | Flow-thru Conductivity Probe – NTC Sensor, DIN Connector, 3m Cable |
| Ethylenediaminetetraacetic acid disodium salt dihydrate (Na2EDTA*2H2O) | Sigma-Aldrich | 6381-92-6 | Medium Preparation: Ethylenediaminetetraacetic acid disodium salt dihydrate |
| Filters | Fisher Scientific | 09-874-48 | Whatman Binder-Free Glass Microfiber Filters |
| Flasks | Fisher scientific | 09-552-40 | Pyrex Fernbach Flasks |
| Furnace | Hogentogler | Model: F6020C-80 | Thermo Sicentific Thermolyne F6020C – 80 Muffle Furnace |
| Glass dessicator | VWR International LLC | 75871-430 | Type 150, 140 mm of diameter |
| Glass funnel | Fisher Scientific | FB6005865 | Fisherbrand Reusable Glass Long-Stem Funnels |
| Laminar flow hood | Fisher Hamilton Safeair | Fisher Hamilton Stainless Safeair hume hood | |
| Magnesium sulfate heptahydrate (MgSO4*7H2O) | Fisher Scientific | 10034 – 99 – 8 | Medium Preparation: Magnesium sulfate heptahydrate |
| Methanol | Sigma-Aldrich | 67-56-1 | Lipid extraction solvent |
| Micro bubble Diffuser | Pentair Aquatic Eco-Systems | 1PMBD075 | This equipment is used for the injection CO2 system |
| Microalgae: Chlorella Sorokiniana | NAABB | DOE 1412 | |
| Microoscope | Carl Zeiss 4291097 | ||
| Microwave assistant extraction | MARS, CEM Corportation | CEM Mars 5 Xtraction 230/60 Microwave Accelerated Reaction System. Model: 907601 | |
| MnCl2*4H2O | Sigma-Aldrich | 13446-34-9 | Manganese(II) chloride tetrahydrate |
| Mortars | Fisher Scientific | FB961B | Fisherbrand porcelein mortars |
| Nitrogen evaporator | Organomation | N-EVAP 112 Nitrogen Evaporatpr (OA-SYS Heating System) | |
| Oven | VWR International LLC | 89511-410 | Forced Air Oven |
| Paddle Wheel | 8-blade horizontal axis propeller. This usually comes as part of the paddlewheel reactor. | ||
| Paddle wheel motor | Leeson | M1135042.00 | Leeson, Model: CM34025Nz10C; 1/4 HP; Volts 90; FR 34; 62 RPM. |
| Pestles | Fisher Scientific | FB961M | Fisherbrand porcelein pestles |
| pH and EC Transmitter | Hanna Instruments | HI98143 | Hanna Instruments HI98143-04 pH and EC Transmitter with Galvanic isolated 0-4V. |
| pH calibration solutions | Fisher Scientific | 13-643-003 | Thermo Scientific Orion pH Buffer Bottles |
| pH probe sensor | Hanna Instruments | HI1006-2005 | Hanna Instruments HI1006-2005 Teflon pH Electrode with matching pin 5m. |
| Pippete tips | Fisher Scientific | 1111-2821 | 1000 ul TipOne graduated blue tip in racks |
| Pippetter | Fisher Scientific | 13-690-032 | Eppendorf Reserch plus Variable Adjustable Volume Pipettes: Single-channel |
| Plastic cuvettes | Fisher scientific | 14377017 | BrandTech BRAND Plastic Cuvettes |
| Plates | Fisher scientific | 08-757-100D | Corning Falcon Bacteriological Petri Dishes with Lid |
| Potash | This chemical is used for the optimazed medium preparation. It was bought in a fertilizer local company | ||
| Potassium phosphate dibasic (K2HPO4) | Sigma-Aldrich | 7758 -11 – 4 | Medium Preparation: Potassium phosphate dibasic |
| Pyrex reusable Media Storage Bottles | Fisher scientific | 06-414-2A | 1 L and 2 L bottels – PYREX GL45 Screw Caps with Plug Seals |
| Raceway Pond | Similar equipment can be bought at https://microbioengineering.com/products | ||
| Real Time Optical Density Sensor | University of Arizona | This equipment was design and build by a member of the group | |
| RS232 Cable | Sabrent | Sabrent USB 2.0 to Serial (9-Pin) DB-9 RS-232 Converter Cable, Prolific Chipset, Hexnuts, [Windows 10/8.1/8/7/VISTA/XP, Mac OS X 10.6 and Above] 2.5 Feet (CB-DB9P) | |
| Shaker Table | Algae agitation 150 rpm | ||
| Sodium Carbonate (Na2CO3) | Sigma-Aldrich | 497-19-8 | Sodium carbonate |
| Sodium molybdate dihydrate (Na2MoO4*2H2O) | Sigma-Aldrich | 10102-40-6 | Medium Preparation: Sodium molybdate dihydrate |
| Sodium nitrate (NaNO3) | Sigma-Aldrich | 7631-99-4 | Medium Preparation: Sodium nitrate |
| Spectophotometer | Fisher Scientific Company | 14-385-400 | Thermo Fisher Scientific – 10S UV-Vis GENESTYS Spectrophotometer cylindrical Longpath cell holder; internal reference dectector, Xenon flash lamp; dual silicon photodiode; 240V, 50 to 60Hz selected automatically. |
| Test tubes | Fisher Scientific | 14-961-27 | Fisherbrand Disposable Borosilicate Glass Tubes with Plain End (10 ml) |
| Thermocouples type K | Omega | KMQXL-125G-6 | |
| Urea | Sigma-Aldrich | 2067-80-3 | Urea |
| Vacuum filtration system | Fisher Scientific | XX1514700 | MilliporeSigma Glass Vacuum Filter Holder, 47 mm. The system includes: Ground glass flask attachment, coarse-frit glass filter support, and flask |
| Vacuum pump | Grainger | Marathon Electric AC Motor Thermally protected G588DX – MOD 5KH36KNA510X. HP 1/4. RPM 1725/1425 | |
| Zinc sulfate heptahydrate (ZnSO4*7H2O) | Sigma-Aldrich | 7446-20-0 | Zinc sulfate heptahydrate |
References
- . The Intergovernmental Panel on Climate Change Available from: https://www.ipcc.ch/ (2018)
- Songolzadeh, M., Soleimani, M., Ravanchi, M., Songolzadeh, R. Carbon Dioxide Separation from Flue Gases: A Technological, Review Emphasizing Reduction in Greenhouse Gas Emissions. The Scientific World Journal. 2014, 1-34 (2014).
- Litynski, J., Klara, S., McIlvried, H., Srivastava, R. The United States Department of Energy’s Regional Carbon Sequestration Partnerships program: A collaborative approach to carbon management. Environ International. 32 (1), 128-144 (2006).
- Cuellar-Bermudez, S., Garcia-Perez, J., Rittmann, B., Parra-Saldivar, R. Photosynthetic Bioenergy Utilizing CO2: an Approach on Flue Gases Utilization for Third Generation Biofuels. Journal of Clean Production. 98, 53-65 (2014).
- Cheah, W., Show, P., Chang, J., Ling, T., Juan, J. Biosequestration of Atmospheric CO2 and Flue Gas-Containing CO2 by Microalgae. Bioresource Technology. 184, 190-201 (2014).
- Kao, C., et al. Utilization of Carbon Dioxide in Industrial Flue Gases for the Cultivation of Microalga Chlorella sp. Bioresource Technology. 166, 485-493 (2014).
- White, C., Strazisar, B., Granite, E., Hoffman, S., Pennline, H. Separation and Capture of CO2 from Large Stationary Sources and Sequestration in Geological Formations. Journal of the Air and Waste Management Association. 53 (10), 1172-1182 (2003).
- Benemann, J. CO2 Mitigation with Microalgae Systems. Pergamon Energy Conversion Management Journal. 38, 475-479 (1997).
- U.S.Department of Energy. The Capture , Utilization and Disposal of Carbon Dioxide from Fossil Fuel-Fired Power Plants. Energy. 2, (1993).
- Granite, E., O’Brien, T. Review of Novel Methods for Carbon Dioxide Separation from Flue and Fuel Gases. Fuel Processesing Technology. 86 (14-15), 1423-1434 (2005).
- Benemann, J. Utilization of Carbon Dioxide from Fossil Fuel-Burning Power Plants with Biological Systems. Energy Conversion and Management. 34 (9-11), 999-1004 (1993).
- Joshi, C., Nookaraju, A. New Avenues of Bioenergy Production from Plants: Green Alternatives to Petroleum. Journal of Petroleum & Environmental Biotechnology. 03 (07), 3 (2012).
- Chisti, Y. Constraints to commercialization of algal fuels. Journal of Biotechnology. 22, 166-186 (2013).
- Han, S., Jin, W., Tu, R., Wu, W. Biofuel production from microalgae as feedstock: current status and potential. Critical Reviews in Biotechnology. 35 (2), 255-268 (2015).
- Lam, M., Lee, K. Potential of using organic fertilizer to cultivate Chlorella vulgaris for biodiesel production. Applied Energy. 94, 303-308 (2012).
- de Godos, I., et al. Evaluation of carbon dioxide mass transfer in raceway reactors for microalgae culture using flue gases. Bioresource Technology. 153, 307-314 (2014).
- Posten, C., Schaub, G. Microalgae and terrestrial biomass as source for fuels a process view. Journal of Biotechnology. 142 (1), 64-69 (2009).
- Demirbas, M. Biofuels from algae for sustainable development. Applied Energy. 88 (10), 3473-3480 (2011).
- Shelef, G., Sukenik, A., Green, M. . Microalgae Harvesting and Processing A Literature Review. , (1984).
- Pawlowski, A., Mendoza, J., Guzmán, J., Berenguel, J., Acién, F., Dormido, S. Effective utilization of flue gases in raceway reactor with event-based pH control for microalgae culture. Bioresource Technology. 170, 1-9 (2014).
- Zhu, B., Sun, F., Yang, M., Lu, L., Yang, G., Pan, K. Large-scale biodiesel production using flue gas from coal-fired power plants with Nannochloropsis microalgal biomass in open raceway ponds. Bioresource Technology. 174, 53-59 (2014).
- Kaštánek, F., et al. In-field experimental verification of cultivation of microalgae Chlorella sp. using the flue gas from a cogeneration unit as a source of carbon dioxide. Waste Management & Research. 28 (11), 961-966 (2010).
- Yadav, G., Karemore, A., Dash, S., Sen, R. Performance evaluation of a green process for microalgal CO2 sequestration in closed photobioreactor using flue gas generated in-situ. Bioresource Technology. 191, 399-406 (2015).
- Zhao, B., Su, Y., Zhang, Y., Cui, G. Carbon dioxide fixation and biomass production from combustion flue gas using energy microalgae. Energy. 89, 347-357 (2015).
- He, L., Chen, A., Yu, Y., Kucera, L., Tang, Y. Optimize Flue Gas Settings to Promote Microalgae Growth in Photobioreactors via Computer Simulations. Journal of Visualized Experiments. (80), e50718 (2013).
- He, L., Subramanian, V., Tang, Y. Experimental analysis and model-based optimization of microalgae growth in photo-bioreactors using flue gas. Biomass and Bioenergy. 41, 131-138 (2012).
- Pidwirny, M. . Fundamentals of Physical Geography, 2nd ed. , (2006).
- Van Den Hende, S., Vervaeren, H., Boon, N. Flue gas compounds and microalgae: (Bio-) chemical interactions leading to biotechnological opportunities. Biotechnology Advances. 30 (2012), 1405-1424 (2012).
- Jia, F., Kacira, M., Ogden, K. Multi-wavelength based optical density sensor for autonomous monitoring of microalgae. Sensors (Switzerland). 15 (9), 22234-22248 (2015).
- Unkefer, C., et al. Review of the algal biology program within the National Alliance for Advanced Biofuels and Bioproducts. Algal Research. 22, 187-215 (2017).
- Neofotis, P., et al. Characterization and classification of highly productive microalgae strains discovered for biofuel and bioproduct generation. Algal Research. 15, 164-178 (2016).
- Huesemann, M., Van Wagenen, J., Miller, T., Chavis, A., Hobbs, S., Crowe, B. A screening model to predict microalgae biomass growth in photobioreactors and raceway ponds. Biotechnology Bioengineering. 110 (6), 1583-1594 (2013).
- Huesemann, M., et al. Estimating the Maximum Achievable Productivity in Outdoor Ponds: Microalgae Biomass Growth Modeling and Climate Simulated Culturing. Microalgal Production for Biomass and High-Value Products. 28 (2016), 113-137 (2016).
- Ramezan, M., Skone, T., Nsakala, N., Lilijedahl, G. . Carbon Dioxide Capture from Existing Coal-Fired Power Plants. , 268 (2007).
- Huesemann, M., et al. A validated model to predict microalgae growth in outdoor pond cultures subjected to fluctuating light intensities and water temperatures. Algal Research. 13, 195-206 (2016).
- Mendoza, J., et al. Fluid-dynamic characterization of real-scale raceway reactors for microalgae production. Biomass and Bioenergy. 54, 267-275 (2013).
- Algae Cultivation for Carbon Capture and Utilization Workshop. . Algae Cultivation for Carbon Capture and Utilization Workshop. , (2017).
- Park, J., Craggs, R., Shilton, A. Wastewater treatment high rate algal ponds for biofuel production. Bioresource Technology. 102 (1), 35-42 (2011).
- Mata, T., Martins, A., Caetano, N. Microalgae for biodiesel production and other applications: A review. Renewewable and Sustainable Energy Reviews. 14 (1), 217-232 (2010).
- Qiu, R., Gao, S., Lopez, P., Ogden, K. Effects of pH on cell growth, lipid production and CO2 addition of microalgae Chlorella sorokiniana. Algal Research. 28, 192-199 (2017).
- Molina Grima, E., Fernández, F., Garcıa Camacho, F., Chisti, Y. Photobioreactors: light regime, mass transfer, and scaleup. Journal of Biotechnology. 70 (1-3), 231-247 (1999).
- Padmanabhan, Y. P. Technical insight on the requirements for CO2-saturated growth of microalgae in photobioreactors. 3 Biotech. 7 (2), 1-7 (2017).
- Vonshak, A., Torzillo, G. Environmental Stress Physiology. Handbook of Microalgal Culture. 4 (2007), 57-82 (2007).
- Morales, M., Sánchez, L., Revah, S. The impact of environmental factors on carbon dioxide fixation by microalgae. Federation of European Microbiological Society Microbiology Letters. 365 (3), 1-11 (2018).
- Cuaresma, M., Janssen, M., Vílchez, C., Wijffels, R. Horizontal or vertical photobioreactors? How to improve microalgae photosynthetic efficiency. Bioresource Technology. 102 (8), 5129-5137 (2011).
- Richmond, A., Zou, N. Efficient utilisation of high photon irradiance for mass production of photoautotrophic micro-organisms. Journal of Applied Phycology. 11 (1), 123-127 (1999).
- Kurpan, D., Silva, A., Araújo, O., Chaloub, R. Impact of temperature and light intensity on triacylglycerol accumulation in marine microalgae. Biomass and Bioenergy. 72, 280-287 (2015).
- Maedal, K., Owadai, M., Kimura, N., Karubd, I. CO2 fixation from the flue gas on coal-fired thermal power plant by microalgae To screen microalgac which arc suitable for direct CO2 fixation , microalgae were sampled from. Energy Conversion Managment. 36 (6-9), 717-720 (1995).
- Sakai, N., Sakamoto, Y., Kishimoto, N., Chihara, M., Karube, I. Strain from Hot Springs Tolerant to High Temperature and high CO2. Energy Conversion Managment. 36 (6-9), 693-696 (1995).
- Lam, M., Lee, K., Mohamed, A. Current status and challenges on microalgae-based carbon capture. International Journal of Greenhouse Gas Control. 10, 456-469 (2012).
- Raeesossadati, M., Ahmadzadeh, H., McHenry, M., Moheimani, N. CO2 Bioremediation by Microalgae in Photobioreactors: Impacts of Biomass and CO2 Concentrations, Light, and Temperature. Algal Research. 6, 78-85 (2014).
- Mendoza, J., et al. Oxygen transfer and evolution in microalgal culture in open raceways. Bioresource Technology. 137, 188-195 (2013).
- Carvalho, A., Malcata, F., Meireles, A. Microalgal Reactors A Review of Enclosed System Designs and Performances. Biotechnology Progress. 22 (6), 1490-1506 (2006).
- Pires, J., Alvim-Ferraz, M., Martins, F., Simões, M. Carbon dioxide capture from flue gases using microalgae: Engineering aspects and biorefinery concept. Renewable and Sustainable Energy Reviews. 16 (5), 3043-3053 (2012).
- Lam, M., Lee, K. Microalgae biofuels: A critical review of issues, problems and the way forward. Biotechnology Advances. 30 (3), 673-690 (2012).
- Chisti, Y. Biodiesel from microalgae beats bioethanol. Trends in Biotechnology. 26 (3), 126-131 (2008).
- K̈oppen, W., Volken, E., Brönnimann, S. The Thermal Zones of the Earth According to the duration of Hot, Moderate and Cold Periods and to the Impact of Heat on the Organic. Meteorologische Zeitschrift. 20 (3), 351-360 (2011).
- Lammers, P., et al. Review of the Cultivation Program within the National Alliance for Advanced Biofuels and Bioproducts. Algal Research. 22, 166-186 (2017).
