Summary

Valutazione delle presunte proprietà anticriptococco degli estratti grezzi e chiarificati dai molluschi

Published: December 02, 2022
doi:

Summary

Il patogeno fungino umano Cryptococcus neoformans produce una varietà di fattori di virulenza (ad esempio, peptidasi) per promuovere la sua sopravvivenza all’interno dell’ospite. Le nicchie ambientali rappresentano una fonte promettente di nuovi inibitori naturali della peptidasi. Questo protocollo delinea la preparazione di estratti di molluschi e la valutazione del loro effetto sulla produzione di fattori di virulenza fungini.

Abstract

Cryptococcus neoformans è un patogeno fungino umano incapsulato con una distribuzione globale che infetta principalmente individui immunocompromessi. L’uso diffuso di antifungini in ambito clinico, il loro uso in agricoltura e l’ibridazione del ceppo hanno portato ad una maggiore evoluzione della resistenza. Questo crescente tasso di resistenza contro gli antimicotici è una preoccupazione crescente tra i medici e gli scienziati di tutto il mondo, e vi è una maggiore urgenza di sviluppare nuove terapie antifungine. Ad esempio, C. neoformans produce diversi fattori di virulenza, inclusi enzimi intra ed extracellulari (ad esempio, peptidasi) con ruoli nella degradazione dei tessuti, nella regolazione cellulare e nell’acquisizione di nutrienti. L’interruzione di tale attività della peptidasi da parte degli inibitori perturba la crescita e la proliferazione dei funghi, suggerendo che questa potrebbe essere una strategia importante per combattere l’agente patogeno. È importante sottolineare che gli invertebrati come i molluschi producono inibitori della peptidasi con applicazioni biomediche e attività antimicrobica, ma sono poco esplorati in termini di utilizzo contro i patogeni fungini. In questo protocollo, è stata eseguita un’estrazione globale dai molluschi per isolare potenziali inibitori della peptidasi in estratti grezzi e chiarificati e sono stati valutati i loro effetti contro i classici fattori di virulenza criptococcica. Questo metodo supporta la prioritizzazione dei molluschi con proprietà antifungine e offre opportunità per la scoperta di agenti anti-virulenza sfruttando gli inibitori naturali presenti nei molluschi.

Introduction

Cryptococcus neoformans è un patogeno fungino umano che produce una malattia grave negli ospiti immunocompromessi, come gli individui che vivono con l’HIV / AIDS1, e porta a circa il 19% dei decessi correlati all’AIDS2. Il fungo è suscettibile a diverse classi di antimicotici, tra cui azoli, polieni e flucitosina, che esercitano attività fungicida e fungistatica utilizzando meccanismi distinti 3,4. Tuttavia, l’uso estensivo di antifungini in ambito clinico e agricolo combinato con l’ibridazione del ceppo ha amplificato l’evoluzione della resistenza in più specie fungine, tra cui C. neoformans5.

Per superare le sfide della resistenza antifungina e ridurre la prevalenza delle infezioni fungine su scala globale, un approccio promettente è quello di utilizzare i fattori di virulenza di Cryptococcus spp. (ad esempio, adattabilità alla temperatura, capsula di polisaccaridi, melanina ed enzimi extracellulari) come potenziali bersagli terapeutici 4,6 . Questo approccio ha diversi vantaggi, in quanto questi fattori di virulenza sono ben caratterizzati in letteratura e il targeting di questi fattori potrebbe potenzialmente ridurre i tassi di resistenza antifungina imponendo una pressione selettiva più debole attraverso la compromissione della virulenza piuttosto che mirare alla crescita cellulare6. In questo contesto, numerosi studi hanno valutato la possibilità di colpire enzimi extracellulari (ad esempio, proteasi, peptidasi) per ridurre o inibire la virulenza di Cryptococcus spp.7,8,9.

Organismi come invertebrati e piante non possiedono un sistema immunitario adattativo per proteggersi dagli agenti patogeni. Tuttavia, si basano su un forte sistema immunitario innato con una vasta gamma di composti chimici per affrontare microrganismi e predatori10. Queste molecole includono gli inibitori della peptidasi, che svolgono ruoli importanti in molti sistemi biologici, compresi i processi cellulari dell’immunità degli invertebrati, come la coagulazione dell’emolinfa, la sintesi di citochine e peptidi antimicrobici e la protezione degli ospiti inattivando direttamente le proteasi dei patogeni11. Pertanto, gli inibitori della peptidasi da invertebrati come i molluschi possiedono potenziali applicazioni biomediche, ma molti rimangono non caratterizzati10,12,13. In questo contesto, ci sono circa 34 specie di molluschi terrestri in Ontario e 180 molluschi d’acqua dolce in Canada14. Tuttavia, la loro profilazione approfondita e la caratterizzazione sono ancora limitate15. Questi organismi rappresentano un’opportunità per l’identificazione di nuovi composti con potenziale attività antifungina10.

In questo protocollo, vengono descritti metodi per isolare e chiarire estratti da invertebrati (ad esempio, molluschi) (Figura 1) seguiti dalla misurazione della presunta attività inibitoria della peptidasi. Le proprietà antifungine di questi estratti vengono quindi valutate misurando il loro impatto sulla produzione del fattore di virulenza di C. neoformans utilizzando saggi fenotipici (Figura 2). È importante notare che le differenze nelle proprietà antifungine tra estratti grezzi e chiarificati possono essere indicative di fattori microbici (ad esempio, metaboliti secondari o tossine prodotte dal microbioma ospite) del mollusco, che possono influenzare le osservazioni sperimentali. Tali risultati supportano la necessità che questo protocollo valuti sia gli estratti grezzi che quelli chiarificati in modo indipendente per svelare le modalità di azione. Inoltre, il processo di estrazione è imparziale e può consentire il rilevamento di proprietà antimicrobiche contro una pletora di agenti patogeni fungini e batterici. Pertanto, questo protocollo fornisce un punto di partenza per la prioritizzazione delle specie di molluschi con proprietà antifungine contro C. neoformans e l’opportunità di valutare le connessioni tra attività enzimatica e produzione di fattori di virulenza attraverso meccanismi inibitori putativi.

Protocol

1. Estrazione di proteine dai molluschi Raccogli molluschi da un’area naturale designata e approvata (ad esempio, Speed River, Guelph, Ontario). Per questo studio, sono state selezionate sia specie autoctone che invasive per valutare un’ampia gamma di potenziali effetti antifungini. Rompere delicatamente il guscio dei molluschi (ad esempio, Cepaea nemoralis, Planorbella pilsbryi e Cipangopaludina chinensis) usando un pestello e un mortaio e rimuovere i pezzi…

Representative Results

Il flusso di lavoro qui descritto consente l’isolamento di proteine e peptidi da molluschi con potenziali proprietà anti-virulenza contro C. neoformans. Allo stesso modo, la valutazione di diverse forme di estratti (cioè grezzi e chiarificati) consente la semi-purificazione dei potenziali composti attivi e supporta la valutazione a valle (ad esempio, proteomica basata sulla spettrometria di massa). Tipicamente, il flusso di lavoro di estrazione delle proteine produce soluzioni omogeneizzate con concentrazioni …

Discussion

Il protocollo di estrazione qui descritto delinea l’isolamento di composti da molluschi raccolti dall’Ontario, in Canada, e dimostra una nuova indagine sull’uso di estratti di molluschi contro il patogeno fungino umano, C. neoformans. Questo protocollo si aggiunge a un crescente corpo di ricerca che studia l’attività degli inibitori della peptidasi dagli invertebrati13. Durante l’estrazione, alcuni campioni di estratto erano difficili da filtrare-sterilizzare, probabilmente a causa della…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Gli autori ringraziano i membri del Geddes-McAlister Lab per il loro prezioso supporto durante questa indagine e il loro feedback manoscritto. Gli autori riconoscono il sostegno finanziario dell’Ontario Graduate Scholarship e dell’International Graduate Research Award – University of Guelph a D. G.-G e della Canadian Foundation of Innovation (JELF 38798) e dell’Ontario Ministry of Colleges and Universities – Early Researcher Award per J. G.-M.

Materials

0.2 μm Filters VWR 28145-477 (North America)
1.5 mL Tubes (Safe-Lock) Eppendorf 0030120086
2 mL Tubes (Safe-Lock) Eppendorf 0030120094
3,4-Dihydroxy-L-phenylalanine (L-DOPA) Sigma-Aldrich D9628-5G CAS #: 59-92-7
96-well plates Costar (Corning) 3370
Bullet Blender Storm 24 NEXT ADVANCE BBY24M
Centrifuge 5430R Eppendorf 5428000010
Chelex 100 Resin BioRad 142-1253
CO2 Incubator (Static) SANYO Not available
Cryptococcus neoformans H99 ATCC 208821
DIC Microscope Olympus
DIC Microscope software Zeiss
DMEM Corning 10-013-CV
Glucose (D-Glucose, Anhydrous, Reagent Grade) BioShop GLU501 CAS #: 50-99-7
Glycine Fisher Chemical G46-1 CAS #: 56-40-6
GraphPad Prism 9 Dotmatics
Hemocytometer VWR 15170-208
HEPES Sigma Aldrich H3375
Magnesium sulfate heptahydrate (MgSO4.7 H2O) Honeywell M1880-500G CAS #: 10034-99-8 
Peptone BioShop PEP403
Phosohate buffer salt pH 7.4 BioShop PBS408 SKU: PBS408.500
Plate reader (Synergy-H1) BioTek (Agilent) Not available
Potassium phosphate monobasic (KH2PO4) Fisher Chemical P285-500 CAS #: 7778-77-0
Subtilisin A Sigma-Aldrich P4860 CAS #: 9014-01-01
Succinyl-Ala-Ala-Pro-Phe-p-nitroanilide Sigma-Aldrich 573462 CAS #: 70967-97-4
Thermal bath VWR 76308-834
Thiamine Hydrochloride Fisher-Bioreagents BP892-100 CAS #: 67-03-8
Yeast extract BioShop YEX401 CAS #: 8013-01-2
Yeast nitrogen base (with Amino Acids) Sigma-Aldrich Y1250-250G YNB 

References

  1. Derek, J., Sloan, V. P. Cryptococcal meningitis: Epidemiology and therapeutic options. Clinical Epidemiology. 6, 169-182 (2014).
  2. Rajasingham, R., et al. The global burden of HIV-associated cryptococcal infection in adults in 2020: a modelling analysis. The Lancet Infectious Diseases. , (2022).
  3. Mourad, A., Perfect, J. R. Present and future therapy of Cryptococcus infections. Journal of Fungi. 4 (3), 79 (2018).
  4. Bermas, A., Geddes-McAlister, J. Combatting the evolution of antifungal resistance in Cryptococcus neoformans. Molecular Microbiology. 114 (5), 721-734 (2020).
  5. Geddes-McAlister, J., Shapiro, R. S. New pathogens, new tricks: Emerging, drug-resistant fungal pathogens and future prospects for antifungal therapeutics. Annals of the New York Academy of Sciences. 1435 (1), 57-78 (2019).
  6. Kronstad, J. W., Hu, G., Choi, J. The cAMP/protein kinase A pathway and virulence in Cryptococcus neoformans. Mycobiology. 39 (3), 143-150 (2018).
  7. Olszewski, M. A., et al. Urease expression by Cryptococcus neoformans promotes microvascular sequestration, thereby enhancing central nervous system invasion. The American Journal of Pathology. 164 (5), 1761-1771 (2004).
  8. Shi, M., et al. Real-time imaging of trapping and urease-dependent transmigration of Cryptococcus neoformans in mouse brain. The Journal of Clinical Investigation. 120 (5), 1683-1693 (2010).
  9. Vu, K., et al. Invasion of the central nervous system by Cryptococcus neoformans requires a secreted fungal metalloprotease. mBio. 5 (3), 01101-01114 (2014).
  10. Gutierrez-Gongora, D., Geddes-McAlister, J. From naturally-sourced protease inhibitors to new treatments for fungal infections. Journal of Fungi. 7 (12), 1016 (2021).
  11. Nakao, Y., Fusetani, N. Enzyme inhibitors from marine invertebrates. Journal of Natural Products. 70 (4), 689-710 (2007).
  12. Reytor, M. L., et al. Screening of protease inhibitory activity in extracts of five Ascidian species from Cuban coasts. Biotecnologia Aplicada. 28 (2), 77-82 (2011).
  13. González, L., et al. Screening of protease inhibitory activity in aqueous extracts of marine invertebrates from Cuban coast. American Journal of Analytical Chemistry. 7 (4), 319-331 (2016).
  14. Brown, D. S., Werger, M. J. A. Freshwater molluscs. Biogeography and Ecology of Southern Africa. , 1153-1180 (1978).
  15. Forsyth, R. G., Oldham, M. J. Terrestrial molluscs from the Ontario Far North. Check List. 12 (3), 1-51 (2016).
  16. Eigenheer, R. A., Lee, Y. J., Blumwald, E., Phinney, B. S., Gelli, A. Extracellular glycosylphosphatidylinositol-anchored mannoproteins and proteases of Cryptococcus neoformans. FEMS Yeast Research. 7 (4), 499-510 (2007).
  17. Homer, C. M., et al. Intracellular action of a secreted peptide required for fungal virulence. Cell Host & Microbe. 19 (6), 849-864 (2016).
  18. Clarke, S. C., et al. Integrated activity and genetic profiling of secreted peptidases in Cryptococcus neoformans reveals an aspartyl peptidase required for low pH survival and virulence. PLoS Pathogens. 12 (12), 1006051 (2016).
  19. Copeland, R. A. . Evaluation of Enzyme Inhibitors in Drug Discovery: A Guide for Medicinal Chemists and Pharmacologists. , (2013).
  20. Collins, T. J. ImageJ for microscopy. Biotechniques. 43, 25-30 (2007).
  21. Rawlings, N. D., et al. The MEROPS database of proteolytic enzymes, their substrates and inhibitors in 2017 and a comparison with peptidases in the PANTHER database. Nucleic Acids Research. 46, 624-632 (2018).
  22. Gutierrez-Gongora, D., Geddes-McAlister, J. Peptidases: Promising antifungal targets of the human fungal pathogen, Cryptococcus neoformans. Facets. 7 (1), 319-342 (2022).
  23. Martinez, L. R., Casadevall, A. Susceptibility of Cryptococcus neoformans biofilms to antifungal agents in vitro. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 50 (3), 1021-1033 (2006).
  24. Culp, E., Wright, G. D. Bacterial proteases, untapped antimicrobial drug targets. Journal of Antibiotics. 70 (4), 366-377 (2017).
  25. Ruocco, N., Costantini, S., Palumbo, F., Costantini, M. Marine sponges and bacteria as challenging sources of enzyme inhibitors for pharmacological applications. Mar Drugs. 15 (6), 173 (2017).
  26. Costa, H. P. S., et al. JcTI-I: A novel trypsin inhibitor from Jatropha curcas seed cake with potential for bacterial infection treatment. Frontiers in Microbiology. 5, 5 (2014).
check_url/cn/64540?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Gutierrez-Gongora, D., Raouf-Alkadhimi, F., Prosser, R. S., Geddes-McAlister, J. Assessing the Putative Anticryptococcal Properties of Crude and Clarified Extracts from Mollusks. J. Vis. Exp. (190), e64540, doi:10.3791/64540 (2022).

View Video